Журнал "Биология внутренних вод"

№ 3 за 2020 год

ГАРЕТОВА Л. А.1, ФИШЕР Н. К.1, КЛИМИН М. А.1

ИСТОЧНИКИ ОРГАНИЧЕСКОГО ВЕЩЕСТВА В ДОННЫХ ОТЛОЖЕНИЯХ ЭСТУАРИЕВ МАЛЫХ РЕК БАССЕЙНА ТАТАРСКОГО ПРОЛИВА

1 Институт водных и экологических проблем, Дальневосточное отделение Российской академии наук, Хабаровск, Россия

e-mail: -

В донных осадках внутренних эстуариев малых рек Мучке и Токи исследовали распределение органического вещества, углеводородов, фитопигментов и эколого-трофических групп бактериобентоса. Показано влияние морфолого-гидрологических характеристик эстуариев на формирование количественного и качественного состава органического вещества в донных отложениях. Исследование молекулярного и группового состава н-алканов в донных отложениях позволило выделить основные генетические типы органического вещества, тесно связанные со спецификой гидродинамики вод и осадконакопления в малых приливных эстуариях.

Ключевые слова: ЭСТУАРИИ, ДОННЫЕ ОТЛОЖЕНИЯ, ОРГАНИЧЕСКОЕ ВЕЩЕСТВО, УГЛЕВОДОРОДЫ, ФИТОПИГМЕНТЫ, ГЕТЕРОТРОФНЫЕ БАКТЕРИИ, МАРКЕРЫ, Н-АЛКАНЫ.

Показать список литературы

ГЕНКАЛ С. И.1, ГАБЫШЕВ В. А.2

ПЕННАТНЫЕ ДИАТОМОВЫЕ ВОДОРОСЛИ (BACILLARIOPHYTA, FRAGILARIOPHYCEAE, BACILLARIOPHYCEAE) ОЗ. БОЛЬШОЕ ТОКО (ЮЖНАЯ ЯКУТИЯ)

1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия
2 Институт биологических проблем криолитозоны Сибирское отделение Российской академии наук, Якутск, Россия

e-mail: -

Изучение фитопланктона в оз. Большое Токо (Якутия) с помощью сканирующей электронной микроскопии позволило получить первые данные по видовому составу Bacillariophyta. Выявлено 162 вида и разновидности из 47 родов, в том числе 96 таксонов – новые для бассейна р. Алдан, 67 – для Якутии, 6 (Сymbopleura cf. lura, Fragilaria perminuta, Gomphonemaparallelistriatum, Pinnularia cf. neomaior var. inflate, Pinnularia cf. stidolphii, Planothidium cf. distinctum) – для флоры России. Уточнено систематическое положение и авторство 22 таксонов из 5 родов Bacillariophyta (Fragilariophyceae, Bacillariophyceae), ранее обнаруженных в водоемах и водотоках бассейна р. Алдан.

Ключевые слова: ЯКУТИЯ, ОЗЕРО БОЛЬШОЕ ТОКО, ДИАТОМОВЫЕ ВОДОРОСЛИ, ЭЛЕКТРОННАЯ МИКРОСКОПИЯ.

Показать список литературы

ГАГАРИН В. Г.1, НГУЕН ДИНЬ ТЫ 2

СВОБОДНОЖИВУЩИЕ НЕМАТОДЫ ИСКУССТВЕННЫХ ВОДОЕМОВ ВЬЕТНАМА

1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия
2 Институт экологии и биологических ресурсов, Вьетнамская академия наук и технологий, Ханой, Вьетнам

e-mail: gagarin@ibiw.ru

В пробах из четырех искусственных водоемов во Вьетнаме обнаружено 62 вида свободноживущих нематод, из них один род и 11 видов – новые для науки. По численности доминировали Dichromadora geophila (de Man, 1876), Sabatieria foetida Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2008, Parodontophora fluviatilis Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2008 и Terschellingialongicaudata de Man, 1922. Приведены видовой состав нематод и иллюстрированное описание двух новых для науки видов из сем. Sphaerolaimidae: Parasphaerolaimus stagnalis sp. n. и Megalamphis vietnamicus sp. n.

Ключевые слова: ВЬЕТНАМ, ИСКУССТВЕННЫЕ ВОДОЕМЫ, СВОБОДНОЖИВУЩИЕ НЕМАТОДЫ,, PARASPHAEROLAIMUS STAGNALIS SP. N. И MEGALAMPHIS VIETNAMICUS SP. N..

Показать список литературы

РАДХАКРИШНАН Ч.1, КУЛИКОВСКИЙ М.2, ГЛУЩЕНКО А. 2, КУЗНЕЦОВА И.2, КАРТИК Б. 1

ПЕРВАЯ НАХОДКА И МОРФОЛОГИЯ МЕЛКОКЛЕТОЧНОГО РОДА PSEUDOSTAUROSIROPSIS ИЗ АНТРОПОГЕННО НАРУШЕННОГО ОЗЕРА В ИНДИИ

1 Лаборатория биоразнообразия и палеобиологии, Агхаркарский исследовательский институт, Пуна, Индия
2 Институт физиологии растений им. К.А. Тимирязева Российской академии наук, Москва, Россия

e-mail: karthickbala@aripune.org, max-kulikovsky@yandex.ru

Pseudostaurosiropsis geocollegarum (Witkowski) Morales впервые обнаружен в Индии. Это очень редкий и мелкоклеточный вид был найден в оз. Повай в Мумбаи, Махараштра, Индия. Вид был описан из Польши. P. geocollegarum отличается от трех других представителей рода Pseudostaurosiropsis формой створок, размером и числом штрихов в 10 мкм. В статье обсуждается первая находка в Азии Pseudostaurosiropsis с описанием морфологии. Работа подчеркивает необходимость изучения биоразнообразия городских экосистем. Предложена новая таксономическая комбинация Pseudostaurosiropsistriradiatum (Morales), Kulikovskiy, Glushchenko et B. Karthick stat. nov. на основе Pseudostaurosiropsis geocollegarum f. triradiatum Morales 2005.
Полностью статья опубликована в английской версии журнала.

Ключевые слова: ДИАТОМОВЫЕ ВОДОРОСЛИ, PSEUDOSTAUROSIROPSIS, МОРФОЛОГИЯ, ИНДИЯ, ГОРОДСКИЕ ЭКОСИСТЕМЫ, РАСПРОСТРАНЕНИЕ.

Показать список литературы

Cписок литературы

Aronson, M.F., La Sorte, F.A., Nilon, C.H., Katti, M., Goddard, M.A., Lepczyk, C.A., Warren, P.S., Williams, N.S., Cilliers, S., Clarkson, B. and Dobbs, C., A global analysis of the impacts of urbanization on bird and plant diversity reveals key anthropogenic drivers, Proc. R. Soc. B The Royal Society, 2014, vol. 281, No. 1780, p. 20133330. https://doi.org/10.1098/rspb.2013.3330
Desai, M., India Stats: Million plus cities in India as per Census 2011, https://pibmumbai.gov.in/scripts/detail.asp?releaseId=E2011IS3, accessed on 10 February 2018
Dobbs, C., Kendal, D. and Nitschke, C.R., Multiple ecosystem services and disservices of the urban forest establishing their connections with landscape structure and sociodemographics, 3. Ecological Indicators, 2014, vol. 43, pp. 44–55. https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2014.02.007
Fujimura, K.E., Demoor, T., Rauch, M., Faruqi, A.A., Jang, S., Johnson, C.C., Boushey, H.A., Zoratti, E., Ownby, D., Lukacs, N.W. and Lynch, S.V., House dust exposure mediates gut microbiome Lactobacillus enrichment and airway immune defense against allergens and virus infection, Proceedings of the National Academy of Sciences, 2014, vol. 111, pp. 805–810. https://doi.org/10.1073/pnas.1310750111
Gandhi, H.P., Notes on the Diatomaceae of Ahmedabad and its environs, Hydrobiologia, 1961, vol. 17, pp. 218–236. https://doi.org/10.1007/BF00028995
Gandhi, H.P., On the diatom flora of some ponds around Vasna village near Ahmedabad, Indian Botanical Society, 1960, vol. 39, pp. 558–567.
Glushchenko, A.M. and Kulikovskiy, M.S., Amphipleura vavilovii: a new diatom species of the family Amphipleuraceae from Laos, Inland Water Biology, 2017, vol. 10, no 1, pp. 17–21. https://doi.org/10.1134/S1995082916040064
Glushchenko, A.M., Genkal, S.I. and Kulikovskiy, M.S., Aulacoseira konstantinovii sp. nov. and Aulacoseira krylovii sp. nov. – two new centric diatoms from South east Asia, Diatom Research, 2016, vol. 31, no 4, pp. 367–378. https://doi.org/10.1080/0269249X.2016.1253617
Glushchenko, A.M., Kulikovskiy, M.S. and Kociolek, J.P., New and interesting species from the genus Luticola (Bacillariophyceae) in waterbodies of Southeastern Asia, Nova Hedwigia Beiheft, 2017, vol. 146, pp. 157–173. https://doi.org/10.1127/1438-9134/2017/157
Gonzalves, E.A. and Gandhi, H.P., A systematic account of the diatoms of Bombay and Salsette-I, Journal of the Indian Botanical Society, 1952, vol. 31, pp.117–115.
Gonzalves, E.A. and Gandhi, H.P., A systematic account of the Diatoms of Bombay and Salsette II. Pennales: Sub-order Biraphidineae (contd.), Journal of the Indian Botanical Society, 1954, vol. 32, pp. 239–263.
Gonzalves, E.A. and Gandhi, H.P., A Systematic account of the Diatoms of Bombay and Salsette III. Pennales: Sub-order Biraphidineae (contd.), Journal of the Indian Botanical Society, 1954, vol. 33, pp. 338–350.
Gupta, V. and Mythili, G., Willingness to pay for water quality improvement: a study of Powai Lake in India, Asian Journal of Water, Environment and Pollution, 2011, vol. 8, pp. 15–21.
Hahs, A. K. and Evans, K.L., Expanding fundamental ecological knowledge by studying urban ecosystems, Functional Ecology, 2015, vol. 29, pp. 863–867.
Hirota, M., Kihara, Y., Arita, S., and Ohtsuka, T., Periphytic diatom flora of Koyama-ike pond, Tottori Prefecture Japan. Diatom, 2013, vol. 31, pp. 18–44.
Kapustin, D.A., Kulikovskiy, M.S. and Kociolek, J.P., Celebesia gen. nov., a new cymbelloid diatom genus from the ancient Lake Matano (Sulawesi Island, Indonesia), Nova Hedwigia Beiheft, 2017, vol. 146, pp. 147–155. https://doi.org/10.1127/1438-9134/2017/147
Kociolek, J.P., Glushchenko, A.M. and Kulikovskiy, M.S., Typification, valve ultrastructure, and systematic position of Gomphonema gomphopleuroides Amosse ex Kociolek, Glushchenko & Kulikovskiy, an endemic diatom from Southeast Asia, Diatom Research, 2015, vol. 30, no 3, pp. 247–255. https://doi.org/10.1080/0269249X.2015.1072583
Kociolek, J.P., Hamsher, S.E., Kulikovskiy, M.S. and Bramburger, A.S., Are there species flocks in freshwater diatoms? A review of past reports and a look to the future, Hydrobiologia, 2017, vol. 792, pp. 17–35. https://doi.org/10.1007/s10750-016-3075-1
Koliyar, J.G. and Rokade, N.S., Water Quality in Powai Lake: Mumbai, Maharashtra, Proceedings of Taal 2007: The 12th World Lake Conference, 2008, vol. 1655, p. 1659.
Kulikovskiy M.S., New species of the genus Tabellaria Ehr. (Bacillariophyta) with tri-radial symmetry, Int. J. Algae, 2009, vol. 11, no 3, pp. 236–245. https://doi.org/10.1615/InterJAlgae.v11.i3.40
Kulikovskiy, M.S., Glushchenko, A.M. and Kociolek, J.P., The diatom genus Oricymba in Vietnam and Laos with description of one new species, and a consideration of its systematic placement, Phytotaxa, 2015a, vol. 227, no 2, pp. 120–134. https://dx.doi.org/10.11646/phytotaxa.227.2.2
Kulikovskiy, M.S., Lange-Bertalot, H. and Kuznetsova, I.V., Lake Baikal: hotspot of endemic diatoms II, Iconographia Diatomologica., 2015b, vol. 26, pp. 1–657.
Loseva, E.I., Atlas of the Late Pliocene Diatoms of River Kama Region for the XI Congress of INQUA, Leningrad: Nauka, 1982, pp. 1–204.
Meadow, J.F., Altrichter, A.E., Kembel, S.W., Kline, J., Mhuireach, G., Moriyama, M., Northcutt, D., O'connor, T.K., Womack, A.M., Brown, G.Z. and Green, J.L., Indoor airborne bacterial communities are influenced by ventilation, occupancy, and outdoor air source, Indoor Air, 2014, vol. 24, pp. 41–48. https://dx.doi.org/10.1111/ina.12047
Morales, E.A., Morphological studies in selected fragilarioid diatoms (Bacillariophyceae) from Connecticut waters (USA), Proceedings of the Academy of Natural Sciences of Philadelphia, 2001, vol. 151, pp. 105–120. https://doi.org/10.1635/0097-3157(2001)151[0105:MSISFD]2.0.CO;2
Morales, E.A., Observations of the morphology of some known and new fragilarioid diatoms (Bacillariophyceae), Phycological Research, 2005, vol. 53(2), pp. 113–133. https://doi.org/10.1111/j.1440-183.2005.00378.x
Morales, E.A., Studies in selected fragilarioid diatoms of potential indicator value from Florida (USA) with notes on the genus Opephora Petit (Bacillariophyceae), Limnologica, 2002, vol. 32, pp. 102–113. https://dx.doi.org/10.1016/S0075-9511(02)80002-0
Nagendra, H., Sudhira, H.S., Katti, M., Tengö, M. and Schewenius, M., Urbanization and its impacts on land use, biodiversity and ecosystems in India, INTERdisciplina, 2014, vol. 2, pp. 305–313.
Round, F.E., Crawford, R.M., and Mann, D.G., The Diatoms. Biology and Morphology of the Genera, Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1990, pp. 1–747.
Vigneshwaran, A., Kulikovskiy, M.S., Glushchenko, A.M., Kociolek, J.P. and Karthick, B., A new species of Cymbella (Bacillariophyceae, Cymbellaceae) from the Pavana River, Western Ghats, India, Phytotaxa, 2019, vol. 395, no 3, pp. 209–218. https://dx.doi.org/10.11646/phytotaxa.395.3.5
Witkowski, A., Lange-Bertalot, H. and Witak, M., Diatom taxa of unusual frustule structure belonging to the genus Fragilaria, Fragmenta Floristica et Geobotanica, 1995, vol. 40, no 2, pp. 729–741.

КРАВЦОВА Т. Р.1, ИЛЬИНСКИЙ В. В.1, ЛАЗЕБНАЯ И. В.2, ЛАЗЕБНЫЙ О. Е.3, АКУЛОВА А. Ю.1, МОШАРОВА И. В.1,4, КОКШАРОВА О. А.5

УГЛЕВОДОРОДОКИСЛЯЮЩИЕ БАКТЕРИИ ИЗ ГОРОДСКОГО ОЗЕРА: ИДЕНТИФИКАЦИЯ И ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ

1 Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
2 Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова Российской академии наук, Москва, Россия
3 Институт биологии развития им. Н.К. Кольцова Российской академии наук, Москва, Россия
4 Институт океанологии им. П.П. Ширшова Российской академии наук, Москва, Россия;Москва, Россия
5 Институт физико-химической биологии им. А.Н. Белозерского, МГУ, Москва, Россия

e-mail: skypoy-92@mail.ru

Впервые из бактериопланктона оз. Белое (г. Москва) выделены культивируемые углеводородокисляющие бактерии – штаммы 2012B и 2012С. Жирно-кислотный профиль штаммов 2012В и 2012C представлен в диапазоне C14:0–C19:0. Спектр наиболее представленных жирных кислот штамма 2012В включает в себя C15:0 (54%), C16:0 (17%), C17:0 (10%) и 10-метил С18:0 (3.5%), липидный спектр штамма 2012C представлен жирными кислотами C15:0 (45%), C16:0 (32%) и C17:0 (9%). По биохимическим и морфологическим характеристикам штамм 2012B наиболее сходен с представителями рода Rhodococcus spp. (Actinobacteria, Nocardiaceae). Проведенный филогенетический анализ с использованием нуклеотидных последовательностей генов 16S рРНК (KP779 654.1) и alkВ (KR422 620.1) показал, что штамм 2012B принадлежит к виду Rhodococcus qingshengii. Нуклеотидная последовательность гена 16S рРНК штамма 2012С (MG966 152) имеет наибольшее сходство (99.57%) с последовательностями Pseudomonas psychrotolerans и P. oryzihabitans.

Ключевые слова: УГЛЕВОДОРОДОКИСЛЯЮЩИЕ БАКТЕРИИ, ФИЛОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ, 16S РРНК, ALKB, ОЗЕРО БЕЛОЕ.

Показать список литературы

Cписок литературы

Акулова А.Ю., Ильинский В.В., Мошарова И.В. и др. 2014. Состояние гетеротрофного бактериопланктона прибрежья озер Святое и Белое природно-исторического парка “Косинский” (город Москва) в 2011 году // Известия Самарского научного центра РАН. Т. 16. № 1. С. 1185.
Кузнецов С.И. 1952. Роль микроорганизмов в круговороте веществ в озерах. Москва: Наука.
Кузнецов С.И. 1970. Микрофлора озер и ее геохимическая деятельность. Ленинград: Наука.
Россолимо Л.Л. 1925. Морфометрия Косинских озер // Труды лимнологической станции в Косине. № 2. С. 3.
Сафронова Н.А., Кокшарова О.А. 2018. Бактерия Rhodococcus sp. – потенциальный деструктор детонационных наноалмазов // Российские нанотехнологии. № 7–8. C. 88.
Чернявская М.И., Эльгаммуди А.А., Титок М.А. 2012. Первичная характеристика бактерий – деструкторов нефти // Вестник Белорусского государственного университета. Т. 2. № 3. С. 44.
Altschul S.F., Madden T.L., Schäffer A.A. et al. 1997. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs // Nucleic Acids Res. V. 25. № 17. P. 3389.
Bergey D.H., Krieg N.R. 1989. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. Baltimore, MD: Williams & Wilkins. V. 4. P. 2648.
Brooijmans R.J.W., Pastink M.I., Siezen R.J. 2009. Hydrocarbon-degrading bacteria: the oil-spill clean-up crew // Microb. Biotechnol. V. 2. № 6. P. 587.
Cameotra S.S., Singh P. 2008. Bioremediation of oil sludge using crude biosurfactants // Int. Biodeterior. Biodegrad. V. 62. P. 274.
Das N., Chandran P. 2011. Microbial degradation of petroleum hydrocarbon contaminants: an overview // Biotechnol. Res. Internat. V. 2011. Р. 1.
Felsenstein J. 1985. Confidence limits on phylogenies: An approach using the bootstrap // Evolution. V. 39. P. 783.
Fredriksson N.J., Hermansson M., Wilén Britt-Marie. 2013. The Choice of PCR Primers Has Great Impact on Assessments of Bacterial Community Diversity and Dynamics in a Wastewater Treatment Plant // PLоS One. V. 8. № 10.
Hansen J., Møller I. 1975. Percolation of starch and soluble carbohydrates from plant tissue for quantitative determination with anthrone // Anal. Biochem. V. 68. P. 87.
Huber T., Faulkner G., Hugenholtz P. 2004. Bellerophon: a program to detect chimeric sequences in multiple sequence alignments // Bioinformatics. V. 20. P. 2317.
Kimura M. 1980. A simple method for estimating evolutionary rate of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences // J. Mol. Evol. V. 16. P. 111.
Kohno T., Sugimoto Y., Sei K., Mori K. 2002. Design of PCR primers and gene probes for general detection alkane-degrading bacteria // Microbiol. Environ. V. 17. № 3. Р. 114.
Koksharova O., Shubert M., Shestakov S., Cerff R. 1998. Genetic and Biochemical Evidence for Distinct Key Functions of Two Highly Divergent GAPDH Genes in Catabolic and Anabolic Carbon Flow of the Cyanobacterium Synechocystis sp. // Plant Mol. Biol. V. 36. P. 183.
Kumar S., Stecher G., Li M. et al. 2018. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms // Mol. Biol. Evol. V. 35. P. 1547.
Long G.R., Ayers M.A., Callender E., Van Metre P.C. 2003. Trends in chemical concentration in sediment cores from three lakes in New Jersey and one lake on Long Island, New York. U.S // Geological Survey. Water-Res. Inv. Rep. V. 02-4272. P. 32.
Mills A.L., Breule C., Colwell R.R. 1978. Enumeration of petroleum – degrading marine and estuarine microorganisms by the most probable number method // Can. J. Microbiol. V. 24. P. 552.
Ravikumar P., Mehmood M.A., Somashekar R.K. 2013. Water quality index to determine the surface water quality of Sankey tank and Mallathahalli lake, Bangalore urban district, Karnataka, India // Appl. Water Sci. V. 3. № 1. P. 247.
Saitou N., Nei M. 1987. The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees // Mol. Biol. Evol. V. 4. P. 406.
Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. 1989. Molecular Cloning: a Laboratory Manual. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press.
Sasser M. 2001. Identification of bacteria by gas chromatography of cellular fatty acids // MIDI Technical Note 101.
Stackebrandt E. 2011. Molecular taxonomic parameters // Microbiol. V. 32. P. 59.
van Beilen J.B., Funhoff E.G. 2007. Alkane hydroxylases involved in microbial alkane degradation // Appl. Microbiol. Biotechnol. V. 74. P. 13.
Wang Z., Xu J., Li Y. et al. 2010. Rhodococcus jialingiae sp. nov., anactinobacterium isolated from sludge of a carbendazim wastewater treatment facility // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. V. 60. P. 378.
Widmer F., Seidler R.J., Gillevet P.M. et al. 1998. A Highly Selective PCR Protocol for Detecting 16S rRNA Genes of the Genus Pseudomonas (Sensu stricto) in Environmental Samples // Applied and Environmental Microbiology. V. 64. № 7. P. 2545.
Xu J.L., He J., Wang Z.C. et al. 2007. Rhodococcus qingshengii sp. nov., a carbendazim-degrading bacterium // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. V. 57. Р. 2754.

САВИНЫХ Н.П.1, КОНОВАЛОВА И.А.1, ШАКЛЕИНА М.Н.1, ЛЕЛЕКОВА Е.В.1

СТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ NELUMBO NUCIFERA (NELUMBONACEAE) НА СЕВЕРНОЙ ГРАНИЦЕ АРЕАЛА

1 Вятский государственный университет, Киров, Россия

e-mail: S-dulcamara@yandex.ru

На основе биоморфологического анализа описана структурная организация Nelumbo nucifera Gaertn. Побеговая система представлена полурозеточными поликарпическими вегетативно-генеративными осями; модель побегообразования – моноподиальная полурозеточная. Анатомическое строение стебля, черешка и цветоноса N. nucifera соответствует представителям однодольных растений.

Ключевые слова: NELUMBO NUCIFERA, МОДУЛЬНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ, ПОБЕГОВАЯ СИСТЕМА, МОДЕЛЬ ПОБЕГООБРАЗОВАНИЯ, МОНОПОДИЙ, ЦЕНТР ЗАКРЕПЛЕНИЯ, АНАТОМИЧЕСКОЕ СТРОЕНИЕ ОРГАНОВ,.

Показать список литературы

Cписок литературы

Барыкина Р.П., Веселова Т.Д., Девятов А.Г. и др. 2004. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. Москва: Изд-во МГУ.
Бобров Ю.А. 2008. Промежуточный модуль – вспомогательный уровень морфологического анализа // Вестник Тверского государственного университета. Сер. биология и экология. № 9. С. 16.
Гроссгейм А.А. 1940. Лотос в СССР // Бот. материалы Гербария Бот. ин-та АН СССР. Т. 8. Вып. 4–9. С. 130.
Грудзинская И.А. 1960. Летнее побегообразование у древесных растений и его классификация // Бот. журн. Т. 45. № 7. С. 968.
Качура Н.Н. 1981. Редкие виды растений советского Дальнего Востока и их охрана. Москва: Наука.
Красная книга Амурской области: Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды животных, растений и грибов. 2009. Благовещенск: Изд-во Белорус. гос. пед. ун-та.
Красная книга Астраханской области: Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения объекты животного и растительного мира. 2004. Астрахань: Нижневолжский центр экологического образования.
Красная книга Еврейской автономной области. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и грибов. 2006. Новосибирск: АРТА.
Красная книга Хабаровского края. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и животных. 2008. Хабаровск: Издательский дом “Приамурские ведомости”.
Крюкова М.В. 2000. Флористические находки на Среднеамурской низменности // Бот. журн. Т. 85. № 11. С. 122.
Крюкова М.В., Снигиревская Н.С. 2008. Семейство Лотосовые – Nelumbonaceae // Красная книга Российской Федерации (растения и грибы). Москва: Товарищество научных изданий КМК. С. 348.
Кудрин С.Г. 1990. Водные реликты Хинганского государственного заповедника // Бот. журн. Т. 75. № 10. С. 1461.
Кудрин С.Г. 2003.Динамика восстановления Nelumbo komarovii (Nelumbonaceae) на юго-востоке Амурской области // Бот. журн. Т. 88. № 8. С. 83.
Куприянова Н.Б. 2016. Краснодарский лотос: успешность интродукции и акклиматизации // Ресурсы региона: культурно-историческое развитие в контексте науки и образования. Славянск-на-Кубани: Кубанский государственный университет. С. 248.
Куренцова Г.Э. 1968. Реликтовые растения Приморья. Ленинград: Наука.
Лабутина И.А., Балдина Е.А. 2009. Мониторинг распространения лотоса в дельте Волги // Вестник Московского университета. Сер. 5: География. № 9. С. 27.
Лапиров А.Г. 2008. Явление квантированности роста в метамерной организации побега некоторых представителей семейства Аlismataceae Vent. // Вестник Тверского государственного университета. Серия “Биология и экология”. Вып. 9. С. 122.
Лисицына Л.И., Папченков В.Г. 2000. Флора водоёмов России: Определитель сосудистых растений. Москва: Наука.
Папченков В.Г. 1985. О классификации макрофитов водоёмов // Экология. № 6. С. 8.
Папченков В.Г. 2003. О классификации растений водоёмов и водотоков // Гидроботаника: методология, методы: Матер. Школы по гидроботанике. Рыбинск: Дом печати. С. 23.
Растения Красной книги России в коллекциях ботанических садов и дендрариев. 2005. Москва: Гл. бот. сад РАН; Тула: Гриф и К.
Савиных Н.П. 2002. Модули у растений // Тез. докл. II Междунар. конф. по анат. и морфол. растений. Санкт-Петербург: Ботанический ин-т им. В.Л. Комарова РАН. С. 95.
Серебряков И.Г. 1952. Морфология вегетативных органов высших растений. Москва: Сов. наука.
Серебряков И.Г. 1954. О методах изучения ритмики сезонного развития растений в стационарных геоботанических исследованиях // Уч. записки МГПИ им. В.П. Потемкина. Т. 37. Вып. 2. С. 3.
Серебряков И.Г. 1964. Жизненные формы высших растений и их изучение // Полевая геоботаника. Т. 3. Москва: Наука. С. 148.
Серебрякова Т.И. 1971. Морфогенез побегов и эволюция жизненных форм злаков. Москва: Наука.
Серебрякова Т.И. 1977. Об основных “архитектурных моделях” травянистых многолетников и модусах их преобразования // Бюл. МОИП. Отд. биол. Т. 82. № 5. С. 112.
Серебрякова Т.И. 1981. Жизненные формы и модели побегообразования наземно-ползучих многолетних трав // Жизненные формы, структура, спектры, эволюция. Москва: Наука. С. 161.
Снигиревская Н.С. 1988. Лотос орехоносный. Nelumbo nucifera Gaertn. // Красная книга РСФСР (растения). Москва: Росагропромиздат. С. 291.
Троицкий С.К. 1953. Лотос в Кубанских лиманах // Природа. № 9. С. 119.
Харкевич С.С., Старченко В.М., Дарман Г.Ф. и др. 1995. Редкие и исчезающие растения Амурской области. Благовещенск: Изд-во Амур. бот. сада НЦ ДВО РАН.
Чуйков Ю.С. 2013. Лотос орехоносный в дельте Волги – охрана и возможное использование // Астраханский Вестник экологического образования. № 3 (25). Астрахань: Нижневолжский экоцентр. С. 145.
Шехов А.Г. 1998. Интродукция лотосов на Кубани // Природа. № 6. Москва: Наука. С. 37.
Шилова Н.В. 1988. Ритмы роста и пути структурной адаптации тундровых растений. Ленинград: Наука.
Шмидт В.М. 1968. О квантированности роста и органогенеза у растений // Вестн. ЛГУ. Вып. 1. № 3. С. 99.
Ahn J.H., Kim S.B., Kim E.S. et al. 2014. A new flavolignan flom Nelumbo nucifera leaves // Chem. Nat. Compd. V. 50. № 6. P. 998.
Chaudhuri P.K., Singh D. 2013. A new triterpenoid from the rhizomes of Nelumbo nucifera // Natural Product Research. V. 27. № 6. P. 532.
Diao Y., Li G.L., Yu A.Q. et al. 2016. Cloning and characterization of the UBC gene from lotus (Nelumbo nucifera) // Genet. Mol. Res. V. 15. № 3. P. 1.
Ki H.K., Sang W.C., Shi Y.R. et al. 2009. Phytochemical constituents of Nelumbo nucifera // Nat. Prod. Sci. V. 15. № 2. P. 90.
Rho T., Yoon K.D. 2017. Chemical Constituents of Nelumbo nucifera Seeds // Nat. Prod. Sci. V. 23. № 4. P. 253.
Troll W. 1964. Die Infloreszenzen. B. 1. Jena: Fischer.

ЛАЗАРЕВА В. И.1

МНОГОЛЕТНИЕ ИЗМЕНЕНИЯ СОСТАВА И ОБИЛИЯ ЗООПЛАНКТОНА ВОДОХРАНИЛИЩ Р. КАМЫ

1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия

e-mail: lazareva_v57@mail.ru

В августе 2016 г. исследован пелагический зоопланктон (Cladocera, Copepoda, Rotifera) и меропланктон (велигеры моллюсков рода Dreissena) четырех водохранилищ р. Камы (Камского, Воткинского, Нижнекамского и камской части Куйбышевского). Обнаружено 108 видов, выявлено 14 новых для р. Камы, в том числе пять ракообразных – вселенцев из Каспийского моря. Три из них (Heterocope caspia, Eurytemora caspica и Cercopagis pengoi) продвинулись на север до Камского водохранилища, два (Cornigerius maeoticus и Calanipeda aquaedulcis) достигли верховьев Камского плеса Куйбышевского водохранилища. Установлено, что пять южных видов (Heterocope caspia, Diaphanosoma orghidani, Pompholyx sulcata, Conochiloides coenobasis и Asplanchna henrietta), впервые обнаруженных в р. Каме в 2016 г., локально формируют высокую численность. Летняя биомасса зоопланктона составляет в среднем 1.8 г/м3 в Камском водохранилище, 1.3 г/м3 в Нижнекамском, 1.0 г/м3 в Воткинском и 0.5 г/м3 в Куйбышевском, ее уровень близок к таковому в 2000-х гг. Обсуждаются смены видов, биоинвазии, особенности пространственного распределения и многолетние изменения биомассы зоопланктона.

Ключевые слова: РЕКА КАМА, ВОДОХРАНИЛИЩА, ЗООПЛАНКТОН, МЕРОПЛАНКТОН, СОСТАВ, СТРУКТУРА, ОБИЛИЕ, ВИДЫ-ВСЕЛЕНЦЫ,.

Показать список литературы

Cписок литературы

Алексевнина М.С., Преснова Е.В. 2017. Структура планкто- и бентоценозов центрального района Воткинского водохранилища и ее изменения в многолетнем аспекте // Современные проблемы водохранилищ и их водосборов: Тр. VI Междунар. науч.-практ. конф. Т. 3. Пермь: Пермский гос. нац. исслед. ун-т. С. 4.
Беляева П.Г., Минеева Н.М., Сигарева Л.Е. и др. 2018. Содержание растительных пигментов в воде и донных отложениях водохранилищ р. Камы // Тр. Ин-та биологии внутр. вод РАН. Вып. 81(84). С. 97.
Боруцкий Е.С., Степанова Л.А., Кос М.С. 1991. Определитель Calanoida пресных вод СССР. Ленинград: Наука.
Волга и ее жизнь. 1978. Ленинград: Наука.
Дзюбан Н.А. 1960. О районировании Куйбышевского водохранилища // Бюл. Ин-та биологии водохранилищ. № 8–9. С. 53.
Жихарев В.С., Гаврилко Д.Е., Шурганова Г.В. 2019. Находка тропического вида Thermocyclops taihokuensis Harada, 1931 (Copepoda: Cyclopoida) в европейской части России // Поволжский экологический журнал. № 2. С. 264. https://doi.org/10.35885/1684-7318-2019-2-264-270
Истомина А.М., Беляева П.Г., Истомин С.Г. и др. 2016. Современное состояние планктона бентоса и ихтиофауны Воткинского водохранилища // Современное состояние биоресурсов внутренних водоемов и пути их рационального использования: Матер. докл. Всерос. конф. с междунар. участием, посвященной 85-летию Татарского отделения Гос. науч.-исслед. ин-та озер. и реч. рыб. хоз-ва (Казань, 24–29 октября 2016 г.). Казань: Гос. науч.-исслед. ин-т озер. и реч. рыб. хоз-ва. С. 430.
Кортунова Т.А. 1983. Зоопланктон Камского водохранилища и его продукция // Комплексные исследования рек и водохранилищ Урала. Пермь: Пермск. гос. ун-т. С. 68.
Кортунова Т.А., Галанова А.А. 1988. Зоопланктон // Биология Воткинского водохранилища. Иркутск: Иркутск. гос. ун-т. С. 50.
Кузнецова Е.М. 2015. Зоопланктон Камского водохранилища в летний период 2013 г. // Фундаментальные и прикладные исследования в биологии и экологии: Матер. рег. студенческой науч. конф. 14–19 апр. 2014 г. Пермь: Пермский гос. нац. исслед. ун-т. С. 57.
Куйбышевское водохранилище. 1983. Ленинград: Наука.
Куйбышевское водохранилище (научно-информационный справочник). 2008. Тольятти: Ин-т экологии волжского бассейна РАН.
Лазарева В.И. 2007. Состав ракообразных и коловраток Рыбинского водохранилища // Экология водных беспозвоночных. Нижний Новгород: Вектор ТиС. С. 127.
Лазарева В.И., Сабитова Р.З., Соколова Е.А. 2018а. Особенности структуры и распределения позднелетнего (август) зоопланктона в водохранилищах Волги // Труды Ин-та биологии внутр. вод РАН. Вып. 82(85). С. 28.
Лазарева В.И., Сабитова Р.З., Быкова С.В. и др. 2018б. Распределение летнего зоопланктона в каскаде водохранилищ Волги и Камы // Тр. Ин-та биологии внутренних вод РАН. Вып. 83(86). С. 62.
Махотина М.К. 1985. Характеристика зоопланктона Нижнекамского водохранилища на первом этапе его формирования. Санкт-Петербург: Гос. науч.-исслед. ин-т озер. и реч. рыб. хоз-ва. Вып. 240. С. 112.
Мельникова А.В., Любина О.С., Гвоздарева М.А. и др. 2019. Оценка качества воды Нижнекамского водохранилища по гидробиологическим показателям // Вода: химия и экология. № 3‒6. С. 67.
Многолетние данные о режиме и ресурсах поверхностных вод суши. Бассейн реки Камы. 1988. Ленинград: Гидрометеоиздат. Т. 1. Вып. 25.
Печеркин И.А., Двинских С.А., Тихонов В.П., Китаев А.Б. 1980. Факторы загрязнения водных масс Камского водохранилища и пути его предотвращения // Биологические ресурсы водоемов Западного Урала. Пермь: Пермск. ун-т. С. 9.
Пидгайко М.Л. 1984. Зоопланктон водоемов Европейской части СССР. Москва: Наука.
Подшивалина В.Н., Яковлев В.А. 2012. Мониторинг состояния малых и средних рек лесостепного Заволжья по зоопланктону // Вода: химия и экология. № 1. С. 56.
Поскрякова Н.П. 1977. Зоопланктон Камы в августе 1975 г. // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Ленинград: Наука. № 36. С. 57.
Преснова Е.В., Хулапова А.В. 2015. Структура и распределение зоопланктона в центральном районе Воткинского водохранилища // Вестник Пермского ун-та. Биология. Вып. 4. С. 366.
Селеткова Е.Б. 2015. Зоопланктон Камского водохранилища // Биоценозы рек и водохранилищ Западного Урала. Санкт-Петербург: Гос. науч.-исслед. ин-т озер. и реч. рыб. хоз-ва. С. 136.
Сидоровский С.А., Каргапольцева И.А., Холмогорова Н.В. 2018. Каталог ракообразных (Arthropoda, Crustacea) республики Удмуртия // Амурский зоологический журнал. Т. 10. № 2. С. 101.
Сухих Н.М., Лазарева В.И., Алексеев В.Р. 2020. Копепода Eurytemora caspica Sukhikh et Alekseev, 2013 (Crustacea, Calanoida) в водохранилищах Волги и Камы // Биология внутр. вод. № 2. (В печати).
Тимохина А.Ф. 2000. Зоопланктон как компонент экосистемы Куйбышевского водохранилища. Тольятти: Ин-т экологии волж. бассейна РАН.
Фефилова Е.Б., Батурина М.А., Кононова О.Н. и др. 2014. Многолетние изменения в сообществах гидробионтов в Харбейских озерах // Журн. Сибирского фед. ун-та. Биология. № 7. С. 240.
Шакирова Ф.М., Говоркова Л.К., Анохина О.К. 2013. Современное состояние Нижнекамского водохранилища и возможности рационального освоения его рыбных ресурсов // Известия Самарского научного центра РАН. Т. 15. № 3(1). С. 518.
Эдельштейн К.К. 1998. Водохранилища России: экологические проблемы и пути их решения. Москва: ГЕОС.
Экологические проблемы Верхней Волги. 2001. Ярославль: Ярослав. гос.-техн. ун-т.
Adrian R., Wilhelm S., Gerten D. 2006. Life-history traits of lake plankton species may govern their phenological response to climate warming // Global Change Biology. V. 12. P. 1652. https://doi.org/10.1111/j.1365-2486.2006.01125.x
Korovchinsky N.M. 1987. A study of Diaphanosoma species (Crustacea: Cladocera) of the “mongolianum” group // Int. Rev. gesamt. Hydrobiol., Hydrogr. V. 72. № 6. P. 727.
Korovchinsky N.M. 2018. Further revision of the genus Bythotrephes Leydig (Crustacea: Cladocera: Onychopoda): redescription of B. brevimanus Lilljeborg, reevaluation of B. cederströmii Schödler, and description of a new species of the genus // Zootaxa. V. 4379. № 3. P. 347. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4379.3.2
Korovchinsky N.M. 2019. Morphological assessment of the North Eurasian interspecific hybrid forms of the genus Bythotrephes Leydig, 1860 (Crustacea: Cladocera: Cercopagididae) // Zootaxa. V. 4550. № 3. P. 340. https://doi.org/10.11646/zootaxa.4550.3.3
Krainev E.Yu., Tselishcheva E.M., Lazareva V.I. 2018. American rotifer Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) (Rotifera: Brachionidae) in the Kama Reservoir (Kama River, Russia) // Inland Water Biology. V. 11. № 1. P. 42. https://doi.org/10.1134/S199508291801008X
Lazareva V.I. 2019. Spreading of Alien Zooplankton Species of Ponto-Caspian Origin in the Reservoirs of the Volga and Kama Rivers // Russian Journal of Biological Invasions. № 4. P. 328. https://doi.org/10.1134/S2075111719040040
Lazareva V.I., Sokolova E.A. 2015. Metazooplankton of the Plain Reservoir during Climate Warming: Biomass and Production // Inland Water Biology. V. 8. № 3. P. 250. https://doi.org/10.1134/S1995082915030098
Popov A.I. 2011. Alien species of zooplankton in Saratov Reservoir (Russia, Volga River) // Rus. J. Biol. Invasions. V. 2. Issue 2–3. P. 126.
Sukhikh N.M., Alekseev V.R. 2013. Eurytemora caspica sp. nov. from the Caspian Sea – one more new species within the E. affinis complex (Copepoda: Calanoida, Temoridae) // Proceedings of the Zoological Institute RAS. V. 317. № 1. P. 85.

ЧЕРТОПРУД М. В.1, ПАЛАТОВ Д. М.1,2, ЧЕРТОПРУД Е. С.1,2

РЕОФИЛЬНЫЕ СООБЩЕСТВА МАКРОЗООБЕНТОСА ЗАПАДНОГО ТЯНЬ-ШАНЯ

1 Московский государственного университет им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
2 Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, Москва, Россия; Москва, Россия

e-mail: -

На материале 370 оригинальных количественных проб из водотоков Западного Тянь-Шаня на территории Киргизии описаны региональное разнообразие и особенности реофильных сообществ макрозообентоса. Выявлены различия в составе и структуре сообществ трех высотно-температурных зон региона в высотном диапазоне от 1000 до 3700 м над уровнем моря. Выделено 23 типа сообществ, отнесенных к пяти ранее выделенным классам: ритраль (плотные субстраты на быстром течении), креналь (мозаичные субстраты малых водотоков), пелаль (мягкие грунты), рипаль (мозаичные субстраты береговой кромки) и эфемераль (временные биотопы). Показано, что сообщества низкогорной зоны структурно близки к сообществам других низкогорий южно-палеарктических регионов (Кавказ, Балканы), сообщества среднегорной зоны – к таковым низкоарктических регионов (Кольский п-ов, Ямал), сообщества высокогорной зоны – к высокоарктическим сообществам (арх. Шпицберген). Действие высотной и широтной поясности для горных сообществ реофильного макробентоса Палеарктики в общих чертах сходно и опосредовано главным образом летней температурой воды.

Ключевые слова: МАКРОБЕНТОС, РЕОФИЛЬНЫЕ СООБЩЕСТВА, ВОДНЫЕ БЕСПОЗВОНОЧНЫЕ, ВЫСОТНАЯ ПОЯСНОСТЬ, ГОРНЫЕ ВОДОТОКИ, ТЯНЬ-ШАНЬ, КИРГИЗИЯ.

Показать список литературы

КРЫЛОВ А. В.1, МЭНДСАЙХАН Б.2, АЮУШСУРЭН Ч.3, ЦВЕТКОВ А. И.

ЗООПЛАНКТОН ПУЛЬСИРУЮЩИХ ОЗЕР ОРОГ И ТАЦЫН-ЦАГАН (ЗАПАДНАЯ МОНГОЛИЯ) В НАЧАЛЕ ПЕРИОДА СТАБИЛИЗАЦИИ УРОВЕННОГО РЕЖИМА

1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия
2 Институт географии и геоэкологии Академии наук Монголии, Улан-Батор, Монголия
3 Институт общей и экспериментальной биологии Академии наук Монголии, Улан-Батор, Монголия

e-mail: krylov@ibiw.ru

Проанализированы межгодовые изменения зоопланктона периодически пересыхающих озер в начале периода стабилизации их уровенного режима при значительных колебаниях количества атмосферных осадков, температуры воздуха и минерализации воды. Показано, что ведущую роль в изменении структуры зоопланктона играет количество атмосферных осадков, увеличение которого может опосредованно обогащать кормовую базу беспозвоночных. В этих условиях ряд структурных характеристик зоопланктона свидетельствует об эвтрофировании озер, интенсивность которого зависит от площади водоема и связи с питающей рекой. Аналогичные изменения зоопланктона отмечены в годы с повышенной температурой воздуха. При резком возрастании минерализации воды обнаружено увеличение количественных показателей зоопланктона за счет Copepoda.

Ключевые слова: ЗООПЛАНКТОН, МИНЕРАЛИЗАЦИЯ ВОДЫ, КОЛИЧЕСТВО АТМОСФЕРНЫХ ОСАДКОВ, ДОЛИНА ОЗЕР (ЗАПАДНАЯ МОНГОЛИЯ).

Показать список литературы

ЧАН К.Х.1

ПЕРВЫЕ ДАННЫЕ О СОСТАВЕ РАКОВИННЫХ АМЕБ В ТРОПИЧЕСКИХ КАРСТОВЫХ ВОДНО-БОЛОТНЫХ УГОДЬЯХ СЕВЕРНОГО ВЬЕТНАМА В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ТИПА БИОТОПА И СЕЗОНА: НОВЫЕ ВОЗМОЖНОСТИ БИОИНДИКАЦИИ

1 Российско-Вьетнамский тропический центр, Ханой, Вьетнам

e-mail: -

Получены первые данные о составе раковинных амеб в заповедниках водно-болотных угодий Чанг Ан и Ван Лонг (провинция Ниньбинь, Вьетнам). В 108 пробах, собранных в этих заповедниках, выявлено 66 видов и подвидов, относящихся к 9 родам и 6 семействам. Arcella conica, Difflugia pulex и D. sarissa были в первый раз зарегистрированы во Вьетнаме. Видовое разнообразие в заповеднике Ван Лонг (52 вида) было выше, чем в заповеднике Чанг Ан (36). Наибольшее число видов и подвидов было обнаружено в пробах перифитона (49), их меньшее количество было зарегистрировано в пробах планктона (46) и бентоса (29). Роды Difflugia, Arcella и Centropyxis представлены наибольшим числом видов в изученных заповедниках. Наибольшей частотой встречаемости характеризовались C. aculeata, D. schurmanni, A. hemisphaerica, A. megastoma arcuata. C. aculeata, D. schurmanni и D. elegans были наиболее распространенными видами во всех изученных биотопах, включая планктон, бентос и перифитон. Кривые накопления видов для заповедников Чанг Ан и Ван Лонг не были насыщены и хорошо описывались уравнениями: S = 3.77N0.56 и S = 16.96N0.30 соответственно. Среднее видовое богатство амеб на пробу в заповеднике Чанг Ан статистически выше, чем в заповеднике Ван Лонг. Различие в видовом богатстве на одну пробу между пробами планктона и перифитона, собранными в заповеднике Транг Ан, были статистически незначимыми. Напротив, статистически значимое различие в видовом богатстве на пробу наблюдалось среди планктонных, бентосных и перифитонных проб, собранных в заповеднике Ван Лонг. Видовое богатство на пробу в планктоне и перифитоне было статистически выше, чем в бентосе, хотя статистически значимое различие между первыми двумя не было обнаружено. Разница в видовом богатстве между пробами собранными в дождливый (сентябрь 2017 г.) и засушливый (июнь 2018 г.) сезоны, была статистически незначимой в заповеднике Чанг Ан. В отличие от этого, в заповеднике Ван Лонг среднее видовое богатство на пробу в сезон дождей было статистически выше, чем в конце сухого сезона. Результаты анализа соответствий с исключенным трендом (DCA) выявили виды раковинных амеб, ассоциированные с местообитаниями планктона, перифитона и бентоса в изученных водно-болотных угодьях. Данные виды следует рассматривать как биоиндикаторы для каждого из этих типов биотопов.
Полностью статья опубликована в английской версии журнала.

Ключевые слова: РАКОВИННЫЕ АМЕБЫ, ВИДОВОЕ БОГАТСТВО, ЧАНГ АН, ВАН ЛОНГ, ВОДНО-БОЛОТНОЕ УГОДЬЕ, СЕЗОН.

Показать список литературы

ГОСТЮХИНА О. Л.1

ОСОБЕННОСТИ АНТИОКСИДАНТНОЙ ГЛУТАТИОНОВОЙ СИСТЕМЫ В ТКАНЯХ ЧЕРНОМОРСКОГО ДВУСТВОРЧАТОГО МОЛЛЮСКА CERASTODERMA GLAUCUM (СARDIIDAE)

1 Федеральный исследовательский центр “Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского” Российской академии наук, Севастополь, Россия

e-mail: -

Исследованы антиоксидантная глутатионовая система и уровень перекисного окисления липидов в тканях черноморского двустворчатого моллюска сердцевидки Cerastoderma glaucum (Bruguière, 1789). В гепатопанкреасе, жабрах и ноге моллюска определяли активность глутатионпероксидазы, глутатионредуктазы, уровень восстановленного глутатиона и перекисное окисление липидов. Показатели антиоксидантной глутатионовой системы у сердцевидки имели выраженную тканевую специфику. В гепатопанкреасе наибольшая активность глутатионпероксидазы в 1.7–4.2 раза превышала таковую в жабрах и ноге моллюска. В жабрах зарегистрирован наименьший уровень восстановленного глутатиона, что в 2.1–2.3 раза ниже, чем в остальных тканях, наибольшая активность глутатионредуктазы была выше в 3.1–5.8 раза. В ноге сердцевидки уровень восстановленного глутатиона не уступал таковому в гепатопанкреасе, а активность глутатионпероксидазы и глутатионредуктазы была в 1.7–4.2 раза ниже, чем в других тканях.

Ключевые слова: АНТИОКСИДАНТНАЯ ГЛУТАТИОНОВАЯ СИСТЕМА, ГЛУТАТИОН, ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС, СЕРДЦЕВИДКА CERASTODERMA GLAUCUM, ДВУСТВОРЧАТЫЕ МОЛЛЮСКИ, ЧЕРНОЕ МОРЕ.

Показать список литературы

ОСТРОВСКИЙ А. М.1

НОВЫЕ ДЛЯ ФАУНЫ БЕЛАРУСИ ВИДЫ АМФИБИОТИЧЕСКИХ СЕТЧАТОКРЫЛЫХ (INSECTA: NEUROPTERA)

1 Гомельский государственный медицинский университет, Гомель, Республика Беларусь

e-mail: -

Приведены сведения о находках двух видов амфибиотических сетчатокрылых ‒ Osmylus fulvicephalus (Scopoli, 1763) и Sisyra terminalis Curtis, 1854 – новых для фауны Беларуси. Указано местонахождение и дана краткая информация о распространении и эколого-биологических особенностям каждого вида.

Ключевые слова: HEMEROBIIFORMIA, OSMYLUS FULVICEPHALUS, SISYRA TERMINALIS, НОВЫЕ ВИДЫ, ФАУНА БЕЛАРУСИ, .

Показать список литературы

ФИЛИППОВ А. А.1, ГОЛОВАНОВА И. Л.1

КРАТКОВРЕМЕННОЕ ГОЛОДАНИЕ МЕНЯЕТ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ ГЛИКОЗИДАЗ КИШЕЧНИКА МОЛОДИ КАРПА CYPRINUS CARPIO L. К ПОВЫШЕНИЮ ТЕМПЕРАТУРЫ ВОДЫ

1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия

e-mail: -

Установлено, что активность гликозидаз (мальтаза и амилолитическая активность) в слизистой оболочке кишечника молоди карпа Cyprinus carpio (L.) при резком увеличении температуры воды зависит от физиологического состояния (сытость/голод). Рыбы были акклимированы к температуре 22°С в летний (сеголетки) и зимний (двухлетки) сезоны. Повышение температуры воды со скоростью 8.0°С/ч приводило к росту амилолитической активности у сытых рыб, активность мальтазы не изменялась. Голодание в течение 3 или 10 сут меняло реакцию гликозидаз на температурный стресс: активность мальтазы росла, амилолитическая активность не изменялась. Кратковременное голодание не влияло на термоустойчивость молоди карпа: значения критического термического максимума у голодных и сытых особей не различались.

Ключевые слова: КАРП, КРАТКОВРЕМЕННОЕ ГОЛОДАНИЕ, ГЛИКОЗИДАЗЫ, МАЛЬТАЗА, АМИЛОЛИТИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ, ПОВЫШЕНИЕ ТЕМПЕРАТУРЫ ВОДЫ, КРИТИЧЕСКИЙ ТЕРМИЧЕСКИЙ МАКСИМУМ.

Показать список литературы