Журнал "Биология внутренних вод"
№ 4 за 2019 год
ГЕНКАЛ С.И.1, ЯРУШИНА М.И.2
ФЛОРА BACILLARIOPHYTA ПЛАНКТОНА ТУНДРОВЫХ ЭКОСИСТЕМ В ЗОНЕ ОСВОЕНИЯ ГАЗОКОНДЕНСАТНОГО МЕСТОРОЖДЕНИЯ (П-ОВ ЯМАЛ)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия
2 Институт экологии растений и животных Уральского отделения Российской академии наук, Екатеринбург, Россия
e-mail: genkal@ibiw.ru
Изучение фитопланктона водотоков и водоемов из бассейна р. Мордыяха (п-ов Ямал) с помощью сканирующей электронной микроскопии позволило расширить таксономический спектр Bacillariophyta – выявлен 281 таксон видового и внутривидового рангов диатомовых водорослей из 63 родов. Зафиксировано 14 видов и разновидностей, новых для флоры России, 30 форм из 14 родов определены только до рода. Максимальное таксономическое разнообразие отмечено в оз. Пэбтавыто (116) и протоке между двумя озерами (125). Наиболее распространены в исследованных водных объектах Diatoma tenuis, Encyonema silesiacum, Fragilaria vaucheriae, Tabellaria flocculosa и Ulnaria ulna.
Ключевые слова: п-ов Ямал, бассейн р. Мордыяха, зона освоения газоконденсатного месторождения, водоемы, водотоки, фитопланктон, диатомовые водоросли, электронная микроскопия.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аэрокосмический мониторинг природной среды полуострова Ямал // Газовая пром-сть. 2003. № 7. С. 72–76.
2. Балонов И.М. Подготовка водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–90.
3. Богданов В.Д., Богданова Е.Н., Мельниченко И.П. и др. Проблемы охраны биоресурсов при обустройстве Бованенковского газоконденсатного месторождения // Экономика региона. 2012. № 4 (32). С. 68–79.
4. Воронков Н.В. Планктон водоемов полуострова Ямал // Ежегодник Зоол. музея Импер. АН. СПб., 1911. Т. 16. № 2. С. 180–214.
5. Генкал С.И., Ярушина М.И. Bacillariophyta водных экосистем арктических тундр западного Ямала (бассейн р. Харасавэйяха) // Альгология. 2014. № 2. С. 195–208.
6. Генкал С.И., Ярушина М.И. К морфологии, таксономии и распространению редкого вида Sellaphora hustedtii (Krasske) Lange-Bertalot et Werum (Bacillariophyta) из водоемов Гыданского полуострова // Новости системат. низш. раст. 2014. Т. 48. С. 57–65.
7. Мониторинг биоты полуострова Ямал в связи с развитием объектов добычи и транспортировки газа. Екатеринбург: Изд-во УРЦ “Аэрокосмоэкология”, 1997. Ч. 2. 191 с.
8. Проблемы охраны биоресурсов при обустройстве Бованенковского газоконденсатного месторождения // Экономика региона. 2012. № 4(32). С. 68–79.
9. Ярушина М.И. Фитопланктон водоемов п-ва Ямал // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов европейского Севера: Тез. докл. Сыктывкар, 1990. С. 41.
10. Ярушина М.И. Фитопланктон // Биология гидробионтов экосистемы р. Мордыяхи. Свердловск, 1991. С. 25–45. Рукопись деп. в ВИНИТИ. 06.06.1991, № 2367-В. С. 25–45.
11. Ярушина М.И. Фитопланктон водоемов бассейна р. Мордыяхи // Современное состояние растительного и животного мира полуострова Ямал. Екатеринбург: Уральск. издат. фирма, 1995. С. 37–40.
12. Krammer K. Die cymbelloiden Diatomeen. Teil 1: Allgemeines und Encyonema part. // Bibl. Diatomologica. 1997. Bd 36. 382 s.
13. Krammer K. Die cymbelloiden Diatomeen. Teil 2: Encyonema part., Encyonopsis und Cymbellopsis // Bibl. Diatomologica. 1997. Bd 37. 469 s.
14. Krammer K. Diatoms of Europe. V. 1: Pinnularia. 2000. 703 p.
15. Krammer K. Diatoms of Europe. V. 3: Cymbella. 2002. 584 p.
16. Krammer K. Diatoms of Europe. Cymbopleura, Delicata, Navicymbula, Gomphocymbellopsis, Afrocymbella. 2003. V. 4. 530 p.
17. Krammer K., Lange-Bertalot H. Teil 1: Naviculaceae // Die Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fischer Verlag, 1986. Bd 2/1. S. 1–876.
18. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil. 2: Epithemiaceae, Bacillariaceae, Surirellaceae // Die Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fischer Verlag, 1988. Bd 2/2. S. 1536.
19. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 3: Centrales, Fragilariaceae, Eunotiaceae // Die Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart; N.Y.: Gustav Fischer Verlag, 1991. P. 1–576.
20. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 4: Achnanthaceae, Kritische Erganzungen zu Navicula (Lineolatae) und Gomphonema // Die Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fischer Verlag, 1991. Bd 2/4. S. 1–437.
21. Lange-Bertalot H. Diatoms of Europe. Navicula sensu stricto, 10 genera separated from Navicula sensu lato Frustulia. 2001. V. 2. 526 p.
22. Lange-Bertalot H., Bak M., Witkowski A. Diatoms of Europe. 6. Eunotia and some related genera. 2011. 747 p.
23. Lange-Bertalot H., Moser G. Brachysira-Monographie der Gattung. Wichtige indicator-species für das gewässer-monitoring und Naviculadicta nov. gen. ein lösungsvorschlag zu dem problem Navicula sensu lato onhe Navicula sensu stricto // Bibliotheca Diatomologica. Berlin; Stuttgart, 1994. Bd 29. 212 s.
24. Levkov Z. Diatoms of Europe. V. 5: Amphora sensu lato. 2009. 916 p.
25. Levkov Z., Metzeltin D., Pavlov A. Luticola, Luticolopsis // Diatoms of Europe. 2013. V. 7. 697 p.
26. Reichardt E. Zur revision der gattung Gomphonema // Iconographia Diatomologica. 1999. V. 8. S. 1–203.
В. И. Пономарев1
Фауна озерно-речной системы бассейна реки Малый Паток (Приполярный Урал). I. Рыбы.
1Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения РАН,
167982 Сыктывкар, ул. Коммунистическая, 28, Россия
e-mail: ponomarev@ib.komisc.ru
По результатам многолетних (1996–2017 гг.) исследований обобщены материалы по фауне рыб бассейна р. Малый Паток, занимающей ключевое место на водоразделе европейских и сибирских рек и пограничной между территориями Приполярного и Северного Урала. Местная ихтиофауна представлена 11 видами, включая проходных (атлантический лосось или семга), полупроходных (сибирский сиг-пыжьян) и туводных (остальные виды) рыб. Сиг образует здесь полупроходную озерно-речную форму. В большинстве озер горной полосы выявлена тенденция увеличения роли сига в формировании рыбной части сообщества с одновременным уменьшением доли ранее доминировавшего здесь окуня.
Ключевые слова: Приполярный Урал, западные склоны, горные реки и озера, бассейн реки Малый Паток, ихтиофауна..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бассейн реки Малый Паток: дикая природа. Сыктывкар: Изд-во Parus, 2007. 216 с.
2. Бигон М., Харпер Дж., Таунсенд К. Экология. Особи, популяции и сообщества М.: Мир, 1989. Т. 1. 667 с. (Begon M., Harper J.L., Townsend C.R. Ecology: individuals, populations and communities. Oxford: Blackwell Sci. Publ., 1986. 876 p.).
3. Биологическое разнообразие уральского Припечорья. Сыктывкар: Изд-во Parus, 2009. 264 с.
4. Богданов В.Д., Мельниченко И.П. Роль реки Маньи в воспроизводстве запасов сиговых рыб Нижней Оби // Аграрн. вестн. Урала. 2010. № 9 (75). С. 110–114.
5. Владимирская М.И. Нерестилища семги в верховьях р. Печоры и меры увеличения их производительности // Тр. Печоро-Илычского заповедника. Сыктывкар, 1957. Вып. 6. С. 48–56.
6. Влияние разработки россыпных месторождений Приполярного Урала на природную среду. Сыктывкар: Коми науч. центр УрО РАН, 1994. 167 с.
7. Зиновьев Е.А. Морфологические признаки двух видов хариусов реки Кожим // Сб. науч. тр. Пермск. лаб. ГосНИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1979. Сер. 2. С. 69–77.
8. Кучина Е.С. Ихтиофауна притоков р. Усы // Рыбы бассейна р. Усы и их кормовые ресурсы. М.; Л.: Наука, 1962. С. 176–211.
9. Мина М.В., Клевезаль Г.А. Рост животных. М.: Наука, 1976. 292 с.
10. Никольский Г.В., Громчевская Н.А., Морозова Г.И., Пикулева В.А. Рыбы бассейна Верхней Печоры. М.: Изд-во Москов. об-ва испыт. природы, 1947. 224 с.
11. Никольский Г.В. Структура вида и закономерности изменчивости рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1980. 182 с.
12. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 288 с.
13. Пономарев В.И. Распределение рыбного населения в уральских притоках реки Печора // Вестн. Ин-та биологии Коми науч. центра УрО РАН. 2008. № 4. С. 6–8.
14. Пономарев В.И. Фауна рыб горных озер европейских склонов Полярного и Приполярного Урала // Вестн. Ин-та биологии Коми науч. центра УрО РАН. 2010. № 10. С. 11–16.
15. Пономарев В.И. Рыбы озер западных склонов Приполярного и Полярного Урала // Изв. Коми науч. центра УрО РАН. 2017. Вып. 2 (30). С. 16–29.
16. Пономарев В.И. Ихтиофауна бассейна реки Большой Паток (Приполярный Урал) // Фауна Урала и Сибири. 2018. № 1. C. 144–151.
17. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1966. 376 с.
18. Ресурсы поверхностных вод СССР. Т. 3: Северный край. Л.: Гидрометеоиздат, 1972. 664 с.
19. Сидоров Г.П., Решетников Ю.С. Лососеобразные рыбы водоемов европейского Северо-Востока. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 346 с.
20. Соловкина Л.Н. Дополнительные материалы по гидробиологии Верхней Печоры // Изв. Коми филиала ВГО. 1963. Вып. 8. С. 56–67.
21. Терещенко В.Г., Терещенко Л.И., Сметанин М.М. Оценка различных индексов для выражения биологического разнообразия сообщества // Биоразнообразие: Степень таксономической изученности. М.: Наука, 1994. С. 86–98.
22. Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2006. 596 с.
23. Costa I.D., Petry A.C., Mazzoni R. Responses of fish assemblages to subtle elevations in headwater streams in southwestern Amazonia // Hydrobiologia. 2018. V. 809. P. 175–184.
24. Douglas R.O., Margenny B.G. Gradients, stability and conservation status of fishes in the Andean mountain streams of the Orinoco versant, Venezuela // Rev. de Biol. Tropical. 2014. V. 62. № 3. P. 987–996.
25. Garcia-De L., Francisco J., Hernandez S. et al. Distribution of fishes in the Rio Guayalejo-Rio Tamesi system and relationships with environmental factors in northeastern Mexico // Environ. Biol. Fish. 2018. V. 101. № 1. P. 167–180.
26. Jaramillo-Villa U., Maldonado-Ocampo J.A., Escobar F. Altitudinal variation in fish assemblage diversity in streams of the central Andes of Colombia // J. Fish Biol. 2010. V. 76. № 10. P. 2401–2417.
27. Mee J.A., Robins G.L., Post J.R. Patterns of fish species distributions replicated across three parallel rivers suggest biotic zonation in response to a longitudinal temperature gradient // Ecol. Freshwater Fish. 2018. V. 27. № 1. P. 44–61.
28. Pechora Delta. Structure and dynamics of the Pechora Delta ecosystems (1995–1999). Lelystad: RIZA, 2000. 367 р.
29. Quist M.C., Hubert W.A., Isaak D.J. Fish assemblage structure and relations with environmental conditions in a Rocky Mountain watershed // Can. J. Zool. 2004. V. 82. № 10. P. 1554–1565.
30. Robinson J.L., Rand P.S. Discontinuity in fish assemblages across an elevation gradient in a southern Appalachian watershed, USA // Ecol. Freshwater Fish. 2005. V. 14. № 1. P. 14–23.
31. Taskaev A., Fokkens B., Lavrinenko I. et al. Actual state of the Pechora basin ecosystems: biological richness of an undisturbed river flow // Dealing with nature in Deltas: Proc. of Wetland Management Symposium. Lelystad, the Netherlands, 1998. P. 81–91.
32. Walker T.R., Crittenden P.D., Dauvalter V. et al. Multiple indicators of human impacts on the environment in the Pechora Basin, north-eastern European Russia // Ecol. indicators. 2009. V. 9. № 4. P. 765–779.
Л. В. Снитько1, *, В. П. Снитько1
Таксономическая структура и экология фитопланктона малых лесных озер в зоне техногенеза сульфидного месторождения (Южный Урал)
1Ильменский государственный заповедник,
456317 Челябинская обл., Миасс, Ильменский заповедник, Россия
e-mail: lvs223@yandex.ru
Проведена систематизация многолетних данных (2009–2017 гг.) по таксономической структуре фитопланктона малых лесных озер Южного Урала на территории сульфидного медно-цинкового месторождения и в зоне воздействия медеплавильного комбината. Выявлены закономерности изменения видового богатства фитопланктона в градиенте увеличения ацидности, концентрации тяжелых металлов, содержания сульфат-иона – значительное снижение таксономического разнообразия фитопланктона. Видовое богатство золотистых водорослей увеличивается в олигоацидных условиях лесных озер буферной зоны техногенеза. Проанализированы связи структурных показателей фитопланктона с абиотическими факторами.
Ключевые слова: фитопланктон, таксономическая структура, видовое богатство, доминирующие виды, техногенез, ацидификация, малые лесные озера, Южный Урал.
Показать список литературы
Cписок литературы
Аминов П.Г. Биогеохимия тяжелых металлов при горнопромышленном техногенезе (на примере Карабашской геотехнической системы, Южный Урал): Автореф. дис. … канд. г.-м. наук. Новосибирск, 2010. 17 с.
2. Ветрова З.И. Эвгленофитовые водоросли // Флора континентальных водоемов Украинской ССР. Киев: Наук. думка, 1993. Вып. 1. Ч. 2. 260 с.
3. Волошко Л.Н. Золотистые водоросли водоемов Севера России. СПб.: Реноме, 2017. 380 с.
4. Клоченко П.Д., Грубинко В.В., Гуменюк Г.Б., Арсан О.М. Особенности ассимиляции аммонийного азота зелеными и синезелеными водорослями // Гидробиол. журн. 2002. Т. 38. № 2. С. 88–93.
5. Клоченко П.Д., Сакевич А.И., Усенко О.М., Шевченко Т.Ф. Изменение структуры фитопланктона под воздействием мочевины // Гидробиол. журн. 2000. Т. 36. № 6. С. 62–74.
6. Корнева Л.Г. Альгофлора планктона водохранилищ Волжского бассейна // Ботан. журн. 2008. Т. 93. № 11. С. 1673–1690.
7. Корнева Л.Г. Таксономический состав, экология Chlorophyta и Streptophyta в слабоминерализованных мелководных лесных озерах // Альгология. 2012. № 3. С. 259–274.
8. Косинская Е.К. Конъюгаты, или сцеплянки. Десмидиевые водоросли // Флора споровых растений СССР. М.; Л.: Наука, 1960. Т. 5. Вып. 1. 706 с.
9. Крахмальный А.Ф. Динофитовые водоросли Украины (иллюстрированный определитель). Киев: Альтерпрес, 2011. 444 с.
10. Масленникова А.В., Удачин В.Н., Дерягин В.В. Палеоэкология и геохимия озерной седиментации голоцена Урала. Екатеринбург: Ильменск. гос. заповедник УрО РАН, 2014. 136 с.
11. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Фитопланктон и его продукция. Л.: ГосНИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1984. 31 с.
12. Мошкова Н.А., Голлербах М.М. Зеленые водоросли. Класс Улотриксовые. Порядок Улотриксовые // Определитель пресноводных водорослей СССР. Л.: Наука, 1986. Вып. 10. Ч. 1. 360 с.
13. Оксиюк О.П., Жукинский В.П., Брагинский Л.П. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиол. журн. 1993. Т. 29. № 4. С. 62–76.
14. Рундина Л.А. Зигнемовые водоросли России (Chlorophyta: Zygnematophyceae, Zygnematales). СПб.: Наука, 1998. 351 с.
15. Снитько Л.В. Экология и сукцессии фитопланктона озер Южного Урала. Миасс: Ильменск. гос. заповедник УрО РАН, 2009. 376 с.
16. Снитько Л.В., Снитько В.П. Индикаторная роль фитопланктона в оценке многолетних изменений качества воды озер Большое Миассово и Тургояк (Южный Урал) // Вод. ресурсы. 2014. Т. 41. № 2. С. 216–224.
17. Снитько Л.В., Снитько В.П. Многолетние изменения фитопланктона Аргазинского водохранилища (Южный Урал) // Вод. ресурсы. 2015. Т. 42. № 2. С. 232–240.
18. Удачин В.Н., Аминов П.Г., Филиппова К.А. Геохимия горнопромышленного техногенеза Южного Урала. Екатеринбург: УрО РАН, 2014. 251 с.
19. Хайбуллина Л.С., Суханова Н.В., Кабиров Р.Р. Флора и синтаксономия почвенных водорослей и цианобактерий урбанизированных территорий. Уфа: Гилем, 2011. 216 с.
20. Царенко П.М. Краткий определитель хлорококковых водорослей Украинской ССР. Киïв: Наук. думка, 1990. 208 с.
21. Царенко П.М. Номенклатурно-таксономические изменения в системе “зеленых водорослей” // Альгология. 2005. Т. 15. № 4. С. 459–467.
22. Шилова Н.А. Влияние тяжелых металлов на представителей пресноводного фито- и зоопланктона в условиях засоления: Дис. ... канд. биол. наук. Саратов, 2014. 133 с.
23. Шкундина Ф.Б., Асадуллина Г.Р. Оценка экологического состояния рек на территории города на основании классификации по показателям развития планктонных водорослей, цианобактерий и биотестирования // Вода: химия и экология. 2013. № 2. С. 26–30.
24. Almer B., Dickson W., Ekstrum C., Hurnstrum E. Effects of acidification on Swedish lakes // Ambio. 1974. № 1. Р. 30–36.
25. Coesel Peter F.M., Meesters K.J. Desmids of the Lowlands. Mesotaeniaceae and Desmidaceae of the European Lowlands. Zeist: KNNV Publ., 2007. 351 p.
26. Ettl H. Chlorophyta. Phytomonadina // Susswasserflora von Mitteleuropa. Jena: VEB Gustav Fischer Verlag, 1983. Bd 9. 807 p.
27. Ettl H., Gartner G. Chlorophyta II. Tetrasporales, Chlorococcales, Gloedendrales // Susswasserflora von Mitteleuropa. Jena: VEB Gustav Fischer Verlag, 1983. Bd 10. 436 p.
28. Irfanullah H.M., Moss B. Ecology of Dictyosphaerium pulchellum Wood (Chlorophyta, Chlorococcales) in a shallow, acid, forest lake // Aquat. Ecol. 2006. V. 40. № 1. Р. 1–12.
29. Komárek J., Anagnostidis K. Modern approach to the classification system of cyanophytes. 4. Nostocales // Archiv für Hydrobiol. 1989. V. 82. P. 247–345.
30. Komárek J., Anagnostidis K. Cyanoprocaryota. 1. Teil. Chroococcales // Süsswasserflora Mitteleuropa. 19/1. Jena: Fischer Verlag, 1998. 548 p.
31. Komárek J., Anagnostidis K. Cyanoprocaryota. 2. Teil. Oscillatoriales // Süsswasserflora Mitteleuropa. 19/2. München. 2005. 759 p.
32. Korneva L.G., Solovyeva V.V. Golden algae (Chrysophyta) in plankton of the Volga River reservoirs: Taxonomic structure, dynamics of diversity, and abundance. Inland Water Biol. 2017. T. 10. № 2. С. 168–175. doi 10/7868/S0320965217020073
33. Krammer K., Lange-Bertalot H., Bacillariophyceae 1–4 Teil // Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fischer Verlag, 1991. P. 1–876, 1–596, 1–576, 1–434.
34. Kristiansen J. Biogeography of silica-scaled chrysophytes // Nova Hedwigia. Beih. 2001. V. 122. P. 23–39.
35. Kristiansen J., Preising H.R. Chrysophyte and Haptophyte Algae. 2. Teil: Synurophyceae // Süsswasserflora von Miteleuropa. Heidelberg: Spektrum Akad. Verlag, 2007. 252 p.
36. Lenzenweger R. Desmidiaceenflora von Ősterreich Т. 1–3 // Bibliotheca Phycologica. Bd 101–104. Berlin; Stuttgart. 1996. 1997. 1998. P. 162, 216, 218.
37. Rudd J.W. M., Kelly C.A., Schindler D.W., Turner M.A. Distribution of the nitrogen cycle in acidified lakes // Science. 1988. V. 240. P. 1515–1517.
38. Siver P.A. The distribution of chrysophytes along environmental gradients: their use as biological indicators // Chrysophyte algae (ecology, phylogeny and development). N.Y.: Cambridge Univ. Press, 1995. P. 232–269.
39. Siver P.A., Hamer J.S. Multivariate statistical analysis of the factors controlling the distribution of scaled chrysophytes // Limnol., Oceanogr. 1989. V. 34. P. 368–381.
Е. А. Андриянова1, О. А. Мочалова1, *, Е. А. Мовергоз2
Экология и сезонное развитие Ranunculus nipponicus Nakai (Batrachium, Ranunculaceae) в незамерзающих водотоках северного побережья Охотского моря
1Институт биологических проблем Севера ДВО РАН,
685000 Магадан, ул. Портовая, 18, Россия
2Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
e-mail: mochalova@inbox.ru
Изучены экология и сезонное развитие Ranunculus nipponicus Nakai (Batrachium, Ranunculaceae) в незамерзающих водотоках северного побережья Охотского моря (59° с.ш.), где впервые на территории России отмечены круглогодичные вегетация и цветение водяного лютика без прохождения стадии зимнего покоя. Во все месяцы года наблюдается рост побегов, формирование молодых корней, бутонов и клейстогамных цветков при среднемесячной температуре воды от +0.1 до +5.8 °С. Наиболее интенсивное образование молодых корней (в феврале–марте) и массовое появление подводных цветов (в конце марта – начале апреля) не связано с повышением температуры воды. Клейстогамное цветение редко приводит к созреванию семян, возможно, из-за слишком низкой температуры воды.
Ключевые слова: водные сосудистые растения, Ranunculus nipponicus, экология, условия обитания, феноритмы развития, Магаданская область..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андриянова Е.А., Мочалова О.А. Лютики, цветущие в морозы // Природа. 2018. № 4. С. 24–33.
2. Жмылев П.Ю., Карпухина Е.А., Жмылева А.П. Вторичное цветение: индукция и нарушение развития // Журн. общ. биол. 2009. Т. 70. № 3. С. 262–272.
3. Иогансен В.Е., Кузнецов А.С., Деев Г.Н. Реки // Север Дальнего Востока. М.: Наука, 1970. С. 186–188.
4. Клюкин Н.К. Климат // Север Дальнего Востока. М.: Наука, 1970. С. 101–132.
5. Лебедева О.А. Особенности фенологического развития Batrachium kauffmannii (Ranunculaceae) в малых реках Ярославской области // Ярослав. пед. вестн. 2012. № 1. Том III (Естественные науки). С. 98–102.
6. Лебедева О.А., Лапиров А.Г. Особенности онтогенеза Batrachium trichophyllum (Ranunculaceae) // Бот. журн. 2005. Т. 90. № 11. C. 1744–1752.
7. Михайлов В.М. Пойменные талики северо-востока России. Новосибирск: Изд-во “Гео”, 2013. 244 с.
8. Михайлов В.М. Пойменные талики в долинах меандрирующих водотоков северо-востока России // Криосфера Земли. 2016. Т. 20. № 2. С. 41–48.
9. Мовергоз Е.А., Бобров А.А. Сравнительная морфология и биология водяных лютиков Ranunculus circinatus, R. trichophyllus и R. kauffmannii (Batrachium, Ranunculaceae) в Средней России // Тр. ИБВВ РАН. 2016. Вып. 76(79). С. 93–118.
10. Andriyanova E.A., Mochalova O.A. IAPT/IOPB chromosome data 21 // Taxon. 2016. V. 65. № 3. P. 673.
11. Bobrov A.A., Zalewska-Gałosz J., Jopek M., Movergoz E.A. Ranunculus schmalhausenii (section Batrachium, Ranunculaceae), a neglected water crowfoot endemic to Fennoscandia – a case of rapid hybrid speciation in postglacial environment of North Europe // Phytotaxa. 2015. V. 233. № 2. P. 101–138.
12. Cook C.D.K. Studies in Ranunculus subgenus Batrachium (DC) A. Gray. II. General morphological considerations in the taxonomy of the subgenus // Watsonia. 1963. V. 5. № 5. P. 294–303.
13. Cook C.D.K. A monographic study of Ranunculus subgenus Batrachium (DC.) A. Gray // Mitt. Bot. Staatssammlung München. 1966. № 6. P. 47–237.
14. Garbey C., Thiebaut G., Muller S. Morphological plasticity of a spreading aquatic macrophyte, Ranunculus peltatus, in response to environmental variables // Plant Ecol. 2004. V. 173. № 1. P. 125–137.
15. Jo I.S., Han D.U., Cho Y.J., Lee E.Ju. Effects of light, temperature, and water depth on growth of a rare aquatic plant, Ranunculus kadzusensis // J. Plant Biol. 2010. V. 53. № 1. P. 88–93.
16. Kimura Y., Kunii H. Comparison of morphological traits and growth characteristics in Ranunculus nipponicus var. submersus and R. nipponicus var. okayamaensis // Jap. J. Ecol. 1998. V. 48. P. 257–264.
17. Koga K., Kadono Y., Setoguchi H. The genetic structure of populations of the vulnerable aquatic macrophyte Ranunculus nipponicus (Ranunculaceae) // J. Plant Res. 2007. V. 120. № 3. P. 471–480.
18. Ku Y.B., Oh H.K., Lee J.H. et al. Distribution and genetic uniformity of an endangered aquatic plant, Ranunculus kadzusensis, in a South Korean rice paddy // Weed Biol. Manag. 2007. V. 7. P. 120–123.
19. Lebedeva O.A., Lapirov A.G. The rhythm of the seasonal development and morphological polyvariation of Batrachium circinatum (Sibth.) Spach at the Rybinsk reservoir // Inland Water Biol. 2009. V. 2. № 3. P. 223–227.
20. Nakaya S., Usami A., Yorimoto T., Miyazawa M. Characteristic chemical components and aroma-active compounds of the essential oils from Ranunculus nipponicus var. submersus used in Japanese traditional food // J. Oleo Sci. 2015. V. 64. № 6. P. 595–601.
21. Takafumi H., Matsumoto A., Aotani K., Yoshida T. The cross-ecosystem impact of deer on an endangered submerged macrophyte, Ranunculus nipponicus var. submersus // Glob. Ecol. Conserv. 2015. V. 4. P. 581–588.
22. Takayanagi S.T., Hiroshi Y.H. The shoot of Ranunculus nipponicus var. submersus, a submerged vascular plant, can actively take up nitrate from cool water // Plant Biotechnol. J. 2015. V. 32. P. 97–102.
23. Wiegleb G., Bobrov A.A., Zalewska-Galosz J. A taxonomic account of Ranunculus section Batrachium (Ranunculaceae) // Phytotaxa. 2017. V. 319. № 1. P. 1–55.
24. Wiegleb G. Notes on Japanese Ranunculus subgenus Batrachium // Acta Phytotax. Geobot. 1988. V. 39. № 4–6. P. 117–132.
25. Zander B., Wiegleb G. Biosystematische Untersuchungen an Populationen von Ranunculus subgen. Batrachium in Nordwest-Deutschland // Bot. Jahrb. Syst. 1987. Bd 109. Hf. 1. S. 81–130.
26. Zimmerman M., Pyke G.H. Pollination ecology of christmas bells (Blandfordia nobilis): Effects of pollen quantity and source on seed set // Aust. J. Ecol. 1988. V. 13. P. 301–309.
Крылов А.В.*1, Айрапетян А.О.2, Цветков А.И.1, Герасимов Ю. В.1, Малин М. И.1, Габриелян Б. К.2
МЕЖГОДОВЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ КОЛИЧЕСТВЕННЫХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ И СТРУКТУРЫ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ ЛИТОРАЛЬНОЙ ЗОНЫ И ПЕЛАГИАЛИ ОЗ. СЕВАН (АРМЕНИЯ) ПРИ КОЛЕБАНИЯХ МЕТЕОРОЛОГИЧЕСКИХ УСЛОВИЙ И БИОМАССЫ РЫБ. II. ОСЕННИЙ ЗООПЛАНКТОН
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, пос. Борок, Россия
2 Институт гидроэкологии и ихтиологии НАН РА, Ереван, Армения
e-mail: krylov@ibiw.yaroslavl.ru
Межгодовые изменения количественных характеристик и структуры зоопланктона пелагиали и литоральной зоне оз. Севан в октябре определялись рядом факторов, среди которых ведущее влияние оказывала биомасса основного планктофага – сига (Coregonus lavaretus Linnaeus, 1758). При снижении биомассы сигов, минимальном повышении уровня воды и высоких среднемесячных за период апрель–октябрь температурах воздуха формировались наиболее богатые сообщества за счет Cladocera. В литоральной зоне на зоопланктон воздействует множество неучтенных факторов, а влияние рыб-планктофагов, обитающих преимущественно в глубоководных участках, выражено слабее. Значительное увеличение биомассы рыб-планктофагов в 2016–2017 гг. привело к сокращению количественных характеристик зоопланктона, в результате чего снизилась прозрачность воды.
Ключевые слова: озеро Севан, зоопланктон, осень, межгодовая изменчивость, численность, биомасса, ветвистоусые ракообразные, атмосферные осадки, температура воздуха, уровень воды, ихтиомасса.
Показать список литературы
Cписок литературы
разных трофических типов. СПб.: Наука, 1996. 189 с.
2. Балушкина Е.Б., Винберг Г.Г. Зависимость между массой и длиной тела у планктонных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 169–172.
3. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
4. Озеро Севан. Экологическое состояние в период изменения уровня воды. Ярославль: Филигрань, 2016. 328 с.
5. Экология озера Севан в период повышения его уровня. Результаты исследований Российско-Армянской биологической экспедиции по гидроэкологическому обследованию озера Севан (Армения) (2005–2009 гг.). Махачкала: Наука ДНЦ, 2010. 348 с.
6. Krylov А.V., Hayrapetyan А.H., Tsvetkov А.I. et al. Interannual changes in zooplankton of the littoral zone and pelagial of Lake Sevan (Armenia) with fluctuations in meteorological conditions and fish biomass. Message 1. Summer zooplankton // Inland Water Biol. № 3, 2019.
7. Statistical Committee of the Republic of Armenia [сайт]. http://armstatbank.am.
Н. И. Ермолаева1,*, Е. Ю. Зарубина1, О. П. Баженова2, С. Я. Двуреченская1, В. В. Михайлов2
ВЛИЯНИЕ АБИОТИЧЕСКИХ И ТРОФИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ НА СУТОЧНУЮ ГОРИЗОНТАЛЬНУЮ МИГРАЦИЮ ЗООПЛАНКТОНА В ЛИТОРАЛЬНОЙ ЗОНЕ НОВОСИБИРСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА
1Институт водных и экологических проблем СО РАН,
630090 Новосибирск, Морской проспект, 2
2Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина,
644008 Омск, Институтская площадь, 1
e-mail: hope@iwep.nsc.ru
Проанализированы суточные изменения температуры воды, гидрохимических показателей, состава и структуры фито- и зоопланктона в открытой и заросшей литорали Бердского залива Новосибирского водохранилища. Рассмотрена связь между численностью отдельных групп и видов зоопланктона и факторами среды. Показано, что основную роль в суточной динамике численности планктона в литоральной зоне играют температура воды и трофические взаимоотношения.
Ключевые слова: суточная динамика, литораль, фитопланктон, зоопланктон, макрофиты, температура, кислород, рН, БПК5, трофические связи.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ермолаева Н.И. Формирование и современное состояние зоопланктонного сообщества Новосибирского водохранилища: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Новосибирск, 1998. 18 с.
2. Ермолаева Н.И., Зарубина Е.Ю., Двуреченская С.Я. Суточная динамика гидрохимических показателей и зоопланктона в литорали Новосибирского водохранилища // Поволж. экол. журн. 2016. № 2. С. 155–166. doi 10.18500/1684-7318-2016-2-155-166.
3. Зарубина Е.Ю. Влияние уровенного режима Новосибирского водохранилища на продукцию водных и прибрежно-водных фитоценозов // Гидроботаника-2015: Матер. VIII Всерос. конф. (Борок, 16–20 октября 2015 г.). Ярославль, 2015. С. 14–16.
4. Корнева Л.Г. Формирование фитопланктона водоемов бассейна Волги под влиянием природных и антропогенных факторов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. СПб.: Ин-т озероведения РАН, 2009. 47 c.
5. Левич А.П., Максимов В.Н., Булгаков Н.Г. Теоретическая и экспериментальная экология фитопланктона. Управление структурой и функциями сообществ. М.: Изд-во НИЛ, 1997. 192 с.
6. Многолетняя динамика водно-экологического режима Новосибирского водохранилища. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2014. 393 с.
7. Папченков В.Г. Растительный покров водоёмов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: Междунар. академ. бизнеса и нов. технол. 2001. 200 с.
8. Распопов И.М. Высшие водные растения как структурообразующий фактор в развитии гидробиоценозов // Ладожское озеро: прошлое, настоящее, будущее. СПб.: Наука, 2002. С. 242–245.
9. Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 320 с.
10. Семенченко В.П., Разлуцкий В.И. Факторы, определяющие суточное распределение и перемещения зоопланктона в литоральной зоне пресноводных озер (обзор) // Журн. Сиб. фед. ун-та. Биол. 2009. № 2. С. 191–225.
11. Семенченко В.П., Разлуцкий В.И., Бусева Ж.Ф., Палаш А.Л. Зоопланктон литоральной зоны озер разного типа. Минск: Беларуснавука, 2013. 172 с.
12. Сиделев С.И., Семенова А.С., Бабаназарова О.В., Жданова С.М. Зоопланктон и токсигенные цианобактерии: согласуются ли полевые данные с защитной гипотезой? // Междунар. науч. шк.-конф. “Цианопрокариоты (цианобактерии): систематика, экология, распространение”. Апатиты 5–9 сентября 2016 г. Тез. докл. Апатиты: ООО “КаэМ”, 2016. С. 117–119.
13. Фёдоров В.Д. О методах изучения фитопланктона и его активности. М.: Изд-во МГУ, 1979. 168 с.
14. Basu B.K., Kalff J., Pinel-Alloul B. The influence of macrophyte beds on plankton communities and their export from fluvial lakes in the St Lawrence River // Freshwater Biol. 2000. V. 45. № 4. P. 373–382. doi 10.1046/j.1365-2427.2000.00635.x.
15. Blank K., Laugaste R., Haberman J. Temporal and spatial variation in the zooplankton: Phytoplankton biomass ratio in a large shallow lake // Eston. J. Ecol. 2010. V. 59. № 2. P. 99–115. doi 10.3176/eco.2010.2.02.
16. Burks R.L., Lodge D.M., Jeppesen E., Lauridsen T.L. Diel horizontal migration of zooplankton: costs and benefits of inhabiting the littoral // Freshwater Biol. 2002. V. 47. № 3. P. 343–365. doi 10.1046/j.1365-2427.2002.00824.x.
17. Burns C.W. Insights into zooplankton-cyanobacteria interactions derived from enclosure studies // New Zealand J. Mar. and Freshwater Res. 1987. V. 21. P. 477–482.
18. Chaparro G., Kandus P., O’Farrell I. Effect of spatial heterogeneity on zooplankton diversity: a multiscale habitat approximation in a floodplain lake // River Research and Application. 2015. V. 31. № 1. P. 85–97. doi 10.1002/rra.2711.
19. de Tezanos Pinto P., Allende L., O’Farrell I. Influence of free-floating plants on the structure of a natural phytoplankton assemblage: an experimental approach // J. Plankton Res. 2007. V. 29. № 1. P. 47–56. doi 10.1093/plankt/fbl056.
20. Dembowska E.A., Napiórkowski P. A case study of the planktonic communities in two hydrologically different oxbow lakes, Vistula River, Central Poland // J. Limnol. 2015. V. 74. № 2. P. 2008–2015. doi 10.4081/jlimnol.2014.1057.
21. Kuczyńska-Kippen N., Nagengast B., Joniak T. The impact of biometric parameters of a hydromacrophyte habitat on the structure of zooplankton communities in various types of small water bodies // Int. J. Oceanogr. and Hydrobiol. 2009. V. 38. № 2. P. 99–108. doi 10.2478/v10009- 009-0026-4.
22. Lampert W. Daphnia: Development of a model organism in ecology and evolution. Oldendorf; Luhe: IEI Publ., 2011. 250 p.
23. Laugaste R., Haberman J., Krause T., Salujõe J. Significant changes in phyto- and zooplankton in Lake Peipsi in recent years: What is the underlying reason? // Proc. Estonian Acad. Sci. Biol. Ecol. 2007. V. 56. № 2. P. 106–123.
24. Lucena-Moya P., Duggan I.C. Macrophyte architecture affects the abundance and diversity of littoral microfauna // Aquat. Ecol. 2011. V. 45. № 2. P. 279–287. doi 10.1007/s10452-011-9353-0.
25. Melo T.X., Medeiros E.S.F. Spatial Distribution of Zooplankton Diversity across Temporary Pools in a Semiarid Intermittent River // Int. J. Biodiversity. 2013. V. 2013. 13 p. doi:10.1155/2013/946361.
26. Raspopov I.M., Adamec L., Husák S. Influence of aquatic macrophytes on the littoral zone habitats of the lake Ladoga, NW Russia // Preslia. 2002. V. 74. № 4. P. 315–321.
27. Stefanidis K., Papastergiadou E. Influence of hydrophyte abundance on the spatial distribution of zooplankton in selected lakes in Greece // Hydrobiologia. 2010. V. 656. № 1. P. 55–65. doi 10.1007/s10750-010-0435-0.
28. Walls M., Rajasilta M., Sarvala J., Salo J. Diel changes in horizontal microdistribution of littoral Cladocera // Limnologica. 1990. V. 20. № 2. P. 253–258.
М. В. Астахов1, *
Дрифт беспозвоночных в двух водотоках о. Кунашир (Курильский архипелаг)
1Федеральный научный центр биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии Дальневосточного отделения РАН,
690022 Владивосток, проспект 100-летия Владивостока, 159, Россия
e-mail: mvastakhov@mail.ru
Впервые проведена оценка параметров дрифта и показателей количественного развития зообентоса в водотоках острова, входящего в состав Курильского архипелага. Гидробионты, дрейфующие днем, мельче сплывающих в темное время суток, что может быть следствием пищевой избирательности визуально ориентирующихся дрифтоядных рыб. Поскольку апстрим зообентоса способствует получению завышенных коэффициентов удельного дрифта, предлагается использовать при их вычислении величину интенсивности дрифта за время одной экспозиции сачка.
Ключевые слова: Курильские острова, экосистема водотока, дрифтоядные рыбы, апстрим зообентоса.
Показать список литературы
Cписок литературы
Астахов М.В. Динамика поступлений наземных беспозвоночных в пищевую сеть малой лососевой реки // Сиб. экол. журн. 2016. № 4. С. 575–583.
2. Богатов В.В. Основные методы изучения дрифта речного бентоса // Чтения памяти В.Я. Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2005. Вып. 3. С. 5–17.
3. Богатов В.В., Федоровский А.С. Основы речной гидрологии и гидробиологии. Владивосток: Дальнаука, 2017. 384 с.
4. Живоглядова Л.А., Даирова Д.С., Лабай В.С. Состав, структура и сезонная динамика макрозообентоса рек восточного Сахалина // Изв. ТИНРО. 2012. Т. 171. С. 199–209.
5. Ключарева О.А. О скате и суточных вертикальных миграциях донных беспозвоночных Амура // Зоол. журн. 1963. Т. 42. Вып. 11. С. 1601–1612.
6. Лабай В. С. Продольное распределение макробентоса в малой лососевой реке о. Сахалин (на примере р. Новоселка) // Гидробиол. журн. 2012. Т. 48. № 2. С. 41–54.
7. Палатов Д.М. Новые данные о фауне пресноводных беспозвоночных острова Кунашир // Чтения памяти В.Я. Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2014. Вып. 6. С. 509–522.
8. Пичугин М.Ю., Сидоров Л.К., Гриценко О.Ф. О ручьевых гольцах южных Курильских островов и возможном механизме образования карликовых форм мальмы Salvelinus malma curilus // Вопр. ихтиологии. 2006. Т. 46. № 2. С. 224–239.
9. Тесленко В.А. Амфибиотические насекомые // Растительный и животный мир Курильских островов. Владивосток: Дальнаука, 2002. С. 109–117.
10. Френкель С.Е. Межгодовая динамика дрифта донных беспозвоночных в р. Ударница (южный Сахалин) // Чтения памяти В.Я. Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2003. Вып. 2. С. 107–116.
11. Чебанова В.В. Бентос лососевых рек Камчатки. М.: ВНИРО, 2009. 172 с.
12. Allan J.D. Stream ecology: structure and function of running waters. Dordrecht: Springer, 2006. 388 p.
13. Aschoff J. Circadian activity pattern with two peaks // Ecology. 1966. V. 47. P. 657–662.
14. Astakhov M.V. Invertebrate drift in the piedmont part of the Kedrovaya River (Primorsky Krai, Russia) in warm season // Inland Water Biol. 2014. V. 7. № 1. P. 48–55.
15. Bergey E.A., Ward J.V. Upstream-downstream movements of aquatic invertebrates in a Rocky mountain stream // Hydrobiologia. 1989. V. 185. P. 71–82.
16. Bogatov V.V. Relationship between biomass and drift of river benthic invertebrates // Inland Water Biol. 2014. V. 7. № 2. P. 161–166.
17. Bond N.R., Perry G.L.W., Downes B.J. Dispersal of organisms in a patchy stream environment under different settlement scenarios // J. Anim. Ecol. 2000. V. 69. P. 608–619.
18. Elliott J.M. Invertebrate drift in a Dartmoor stream // Arch. Hydrobiol. 1967. V. 63. P. 202–237.
19. Elliott J.M. A comparative study of the dispersal of 10 species of stream invertebrates // Freshwater Biol. 2003. V. 48. P. 1652–1668.
20. Forrester G.E. Influences of predatory fish on the drift dispersal and local density of stream insects // Ecology. 1994. V. 75. P. 1208–1218.
21. Hansen E.A., Closs G.P. Temporal consistency in the long-term spatial distribution of macroinvertebrate drift along a stream reach // Hydrobiologia. 2007. V. 575. P. 361–371.
22. Hayden W., Clifford H.F. Seasonal movements of the mayfly Leptophlebia cupida (Say) in a brown-water stream of Alberta, Canada // Am. Midland. Nat. 1974. V. 91. P. 90–102.
23. Kawai T. Survey of the aquatic insect fauna of the Tokachi River System // Sci. Rep. Hokkaido Fish Hatchery. 1966. V. 20. P. 65–81.
24. Kubíček F. On the drift in Loučka creek (Czechoslovakia) // Folia Fac. Sc. Nat. Univ. Purk. Brun. 1969. T. 10. C. 45–53.
25. Lancaster J., Hildrew A.G., Gjerlov C. Invertebrate drift and longitudinal transport processes in streams // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1996. V. 53. P. 572–582.
26. Meijering M.P.D. Experimentelle Untersuchungen zur Drift und Aufwanderung von Gammariden in Fließgewässern // Arch. Hydrobiol. 1972. V. 70. P. 133–205.
27. Müller K. Die Tagesperiodik von Fliesswasserorganismen // Z. Morph. Ökol. Tiere. 1966. Bd 56. S. 93–142.
28. Naman S.M., Rosenfeld J.S., Richardson J.S. Causes and consequences of invertebrate drift in running waters: from individuals to populations and trophic fluxes // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 2016. V. 73. P. 1292–1305.
29. Naman S.M., Rosenfeld J.S., Third L.C., Richardson J.S. Habitat-specific production of aquatic and terrestrial invertebrate drift in small forest streams: implications for drift-feeding fish // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 2017. V. 74. P. 1208–1217.
30. Neveu A., Échaubard M. La dérive estivale des invertébrés aquatiques et terrestres dans un ruisseau du Massif Central: la Couze Pavin // Ann. Hydrobiol. 1975. V. 6. P. 1–26.
31. Pearson W.D, Franklin D.R. Some factors affecting drift rates of Baetis and Simuliidae in a large river // Ecology. 1968. V. 49. P. 75–81.
32. Speirs D.C., Gurney W.S.C. 2001. Population persistence in rivers and estuaries // Ecology. V. 82. P. 1219–1237.
33. Surber E.W. Rainbow trout and bottom fauna production in one mile of stream // Trans. Amer. Fish. Soc. 1937. V. 66. P. 193–202.
34. Tokui T., Inoue S. On some inland waters in the Shiretoko peninsula, northeastern Hokkaido, with particular emphasis on nature conservation // Jap. J. Ecol. 1968. V. 18. P. 20–26.
35. Turner D., Williams D. Invertebrate movements within a small stream: density dependence or compensating for drift? // Int. Rev. Hydrobiol. 2000. V. 85. P. 141–156.
36. Uchida T. Water mites from the Kurile Islands // Bull. Biogeogr. Soc. Japan. 1936. V. 6. P. 171–182.
37. Waters T.F. The drift of stream insects // Ann. Rev. Ent. 1972. V. 17. P. 253–272.
38. Yanai S., Terasawa K., Nagata M. Behavior of drifting invertebrates and feeding habit of masu salmon (Oncorhynchus masou Brevoort) in a mountain stream of southern Hokkaido, northern Japan // Bull. Hokk. Forest. Res. Inst. 1996. № 33. P. 44–59.
Т. А. Шарапова1, *, Е. С. Бабушкин2, 3
Пространственная неоднородность зообентоса и зооперифитона в озерах-старицах (Западная Сибирь)
1Институт проблем освоения Севера ФИЦ ТюмНЦ СО РАН,
625026 Тюмень, ул. Малыгина, 86, Россия
2Омский государственный педагогический университет,
644043 Омск, набережная им. Тухачевского, 14, Россия
3Сургутский государственный университет,
628403 Сургут, пр. Ленина, 1, Россия
e-mail: tshartum@mail.ru
Приведены качественные и количественные характеристики зообентоса и зооперифитона двух модельных озер-стариц бассейна Средней Оби. В результате обследования трех участков в каждой из стариц (кутового, наименее связанного с рекой, срединного и у протоки) выявлена специфическая продольная структура распределения таксономического богатства и обилия контурных беспозвоночных. Показано, что наиболее благоприятные условия обитания зообентоса складываются в кутовой части, для зооперифитона – в середине и у впадения протоки. Для понимания общих закономерностей функционирования водных экосистем, полученные результаты обсуждены в свете известных теоретических концепций ‒ экотона, краевого эффекта и озерного континуума.
Ключевые слова: зообентос, зооперифитон, старицы, численность, биомасса, таксономический состав, неоднородность распределения, Западная Сибирь..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Абдуллина Г.Х. Развитие зоопланктона р. Туры // Вестник экологии, лесоведения и ландшафтоведения. 2007. № 7. С. 131–137.
2. Абдуллина Г.Х., Алексюк В.А. К изучению зоопланктона водоемов и водотоков бассейна р. Таз // Человек и Север: антропология, археология, экология: Матер. Всерос. конф. Тюмень: Институт проблем освоения Севера СО РАН, 2009. С. 213–217.
3. Азявчикова Т.В., Клещенко Е.П. Популяционная структура брюхоногих моллюсков старицы реки Сож // Альманах современной науки и образования. 2013. № 11(78). С. 13–14.
4. Андреев Н.И., Андреева С.И., Бабушкин Е.С. Фауна и распределение двустворчатых моллюсков (Bivalvia) в бассейне р. Малый Юган (Среднее Приобье) // Ruthenica: Рус. малакол. журн. 2016. Т. 26. № 3–4. С. 191–201.
5. Бабушкин Е.С. К изучению динамики макрозообентоса рек бассейна реки Большой Юган (Среднее Приобье) // Динамика окружающей среды и глобальные изменения климата. 2015. Т. 6. № 2(12). С. 44–54.
6. Баканов А.И. Использование характеристик разнообразия зообентоса в мониторинге состояния пресноводных экосистем // Мониторинг биоразнообразия. М.: Ин-т проблем экологии и эволюции РАН, 1997. С. 278–282.
7. Баянов Н.Г., Кривдина Т.В. Межсезонная динамика гидролого-гидрохимических показателей реки Керженец и ее стариц // Изв. РАН. Сер. геогр. 2013. № 2. С. 52–67.
8. Беклемишев В.Н. Биоценозы реки и речной долины в составе живого покрова Земли // Тр. Всесоюз. гидробиол. об-ва. 1956. Т. 7. С. 77‒97.
9. Бурмакин Е.В. Кормовые ресурсы Гыданского залива и близлежащих водоемов // Тр. НИИ полярн. земледелия, животноводства и промысл. хоз-ва. Серия “Промысл. хоз.”. 1941. Вып. 15. С. 159–177.
10. Винарский М.В., Андреев Н.И., Бабушкин Е.С., Каримов А.В. Материалы по фауне пресноводных легочных моллюсков Юганского заповедника и сопредельных территорий // Динамика окружающей среды и глобальные изменения климата. 2015. Т. 6. № 2(12). С. 34–43.
11. Гидроэкология устьевых областей притоков равнинного водохранилища. Ярославль: Филигрань, 2015. 466 с.
12. Ермохин М.В. Проблемы и перспективы исследования краевых структур биоценозов рек и водоемов речных долин // Актуальные вопросы изучения микро-, мейозообентоса и фауны зарослей пресноводных водоемов. Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007. С. 101–129.
13. Залозный Н.А. Роль олигохет и пиявок в экосистемах водоемов Западной Сибири // Биологические ресурсы внутренних водоемов Сибири и Дальнего Востока. М.: Наука, 1984. С. 124–142.
14. Иоганзен Б.Г. Принцип единства биотопа биоценоза // Вопр. географии Сибири. Томск, 1966. Сб. 6. С. 142–154.
15. Иоганзен Б.Г., Глазырина Е.И., Залозный Н.А. и др. Сукцессия водных экосистем в бассейне Средней Оби // Сукцессии животного населения в биоценозах поймы реки Оби. Новосибирск: Наука, 1981. С. 78–99.
16. Иоффе Ц.И. Донная фауна Обь-Иртышского бассейна и ее рыбохозяйственное значение // Изв. Всесоюз. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1947. Т. 25. Вып. 1. С. 113–160.
17. Китаев С.П. Основы лимнологии для гидробиологов и ихтиологов. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2007. 395 с.
18. Константинов А.С. Общая гидробиология. М.: Высш. шк., 1986. 472 с.
19. Кузикова В.Б., Бусленко Н.М. Донная фауна реки Сыни и ее роль в питании рыб // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1989. № 305. С. 81.
20. Методы изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 158–170.
21. Одум Ю. Экология. Т. 2. М.: Мир, 1986. 376 с. (Odum E.P. Basic Ecology. Philadelphia: Saunders College Publ., 1983. 613 p.).
22. Папченков В.Г. Растительный покров водоемов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБ и НТ, 2001. 200 с.
23. Природные условия и естественные ресурсы СССР. Западная Сибирь. М.: Изд-во АН СССР, 1963. 488 с.
24. Протасов А.А. Жизнь в гидросфере. Очерки по общей гидробиологии. Киев: Академпериодика, 2011. 704 с.
25. Ресурсы поверхностных вод СССР. Алтай и Западная Сибирь. Средняя Обь. Т. 15. Вып. 2. Л.: Гидрометеоиздат, 1972. 415 с.
26. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. С. 39–48.
27. Степанов Л.Н. Разнообразие зообентоса водоемов и водотоков бассейнов рек Сетная и Нгояха (полуостров Ямал, Ямало-Ненецкий Автономный округ) // Фауна Урала и Сибири. 2016. № 1. С. 90–104.
28. Степанова В.Б. Макрозообентос Нижней Оби // Вестник экологии, лесоведения и ландшафтоведения. 2009. № 9. С. 155–162.
29. Шарапова Т.А. Зооперифитон внутренних водоемов Западной Сибири. Новосибирск: Наука, 2007. 167 с.
30. Palatov D.M., Chertoprud M.V. The rheophilic fauna and invertebrate communities of the tundra zone: a case study of the southern Yamal // Inland Water Biol. 2012. V. 5. № 1. P. 19–28.
31. Protasov A.A. River and lake continua: an attempt at analysis and synthesis // Inland Water Biol. 2008. V. 1. № 2. P. 105–113.
32. Sharapova T.A. Basic Characteristics of Zooperiphyton in Large Rivers of Western Siberia (Tyumen Oblast) // Inland Water Biol. 2012. V. 5. № 4. P. 350–356.
33. Sharapova T.A. Spatial Structure of Zooperiphyton from the Ob River // Contemporary Problems of Ecology. 2009. V. 1. P. 72–76.
34. Sharapova T.A., Babushkin E.S. Comparison of Zoobenthos and Zooperiphyton of Large and Medium Rivers // Contemporary Problems of Ecology. 2013. V. 6. № 6. P. 622–626.
35. Townsend C. The patch dynamics concept of stream community ecology // J. N.Y. Benthol. Soc. 1989. V. 8. № 1. P. 36–50.
36. Vannote R.L., Minchall G.W., Cummins K.W. et al. The river continuum concept // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1980. V. 37. № 1. P. 130–137.
37. Ward J.V. The four-dimensional nature of lotic ecosystems // J. N.Y. Benthol. Soc. 1989. V. 8. № 1. P. 2–8.
Г. И. Рубан1,*, Р. П. Ходоревская2, М. И. Шатуновский1
Многолетняя динамика распределения осетровых в северной части Каспийского моря (обзор)
1Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский проспект, 33, Россия 2Волжско-Каспийский филиал ФГБНУ ВНИРО (КаспНИРХ), 414056 Астрахань, ул. Савушкина, 1, Россия
e-mail: georgii-ruban@mail.ru
За последний полувековой период условия обитания и распределение осетровых рыб в Каспийском море претерпевали существенные изменения. Самый длинный ряд наблюдений за распределением осетровых получен для северной части моря, имеющей наибольшее значение для их нагула. В работе суммированы и проанализированы изменения в распределении белуги Huso huso Linnaeus, 1758, русского осетра Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1833 и севрюги Acipenser stellatus Pallas, 1771 с 1970 по 2014 гг. в северной части моря, биотические и абиотические факторы этих изменений. Показано влияние колебаний уровня моря, биомассы кормовых организмов и общей численности исследуемых видов на их распределение.
Ключевые слова: белуга, русский осетр, севрюга, распределение, Каспийское море..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бабушкин Н.Я. Биология и промысел каспийской белуги // Тр. Всесоюз. НИИ мор. рыб. хоз-ва и океаногр. 1964. Т. 52. Сб. 1. С. 183–259.
2. Бабушкин Н.Я., Борзенко М.П. Осетровые рыбы Каспия. М.: Пищепромиздат, 1951. 68 с.
3. Борзенко М.П. Севрюга (Acipenser stellatus Pall.) // Бюл. Всекаспийской научно-рыбохозяйственной экспедиции. 1932. Вып. 5–6. С. 77–84.
4. Бобырев А.Е., Бурменский В.А., Криксунов Е.А., Шатуновский М.И. Биотическое сообщество Северного Каспия: проблемы управления биологическими ресурсами // Успехи соврем. биол. 2009. Т. 129. № 6. С. 589–609.
5. Борзенко М.П. Каспийская севрюга (систематика, биология и промысел) // Изв. Азерб. рыбохоз. ст. 1942. 7. С. 24–44.
6. Борзенко М.П. Современное состояние и прогноз изменений запасов севрюги в Каспийском море при зарегулированном стоке // Тр. Всесоюз. НИИ мор. рыб. хоз-ва и океаногр. 1964. Т. 52. С. 259–286.
7. Борисов П.Г. Из истории научно-промысловых ихтиологических исследований на морских и пресных водоемах СССР. М.: Высш. шк., 1939. 197 с.
8. Власенко А.Д., Распопов В.М., Лагунова В.С. и др. Оценка запасов каспийского осетра и прогноз его вылова на 2002 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2001. С. 145–154.
9. Власенко А.Д., Распопов В.М., Лагунова В.С. и др. Оценка запасов осетра в Каспийском море и прогноз его вылова на 2003 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2002. С. 156–168.
10. Власенко А.Д., Левин А.В., Распопов В.М. и др. Состояние промысловых запасов осетровых, мигрирующих в реки России и прогноз возможной величины прилова осетровых на 2004 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2003. С. 174–184.
11. Власенко А.Д., Левин А.В., Распопов В.М. и др. Оценка состояния запасов каспийских осетровых и прогноз их вылова на 2004 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2003. С. 161–174.
12. Державин А.Н. Воспроизводство запасов осетровых рыб. Баку: Изд-во АН Азерб. ССР, 1947. С. 248.
13. Захаров С.С. Современное состояние численности осетровых в Северном Каспии // Тр. Всесоюз. НИИ мор. рыб. хоз-ва и океаногр. Т. 108. “Биологическая продуктивность Каспийского моря”. М.: Пищ. пром-сть, 1975. С. 99–108.
14. Зыкова Г.Ф. Влияние температурного фактора на распределение севрюги В Каспийском море // Тез. докл. IX Всесоюз. конф. по проблемам промыслового прогнозирования. Мурманск, 2004. С. 80–85.
15. Зыкова Г.Ф., Журавлева О.Л., Красиков Е.В. Оценка неучтённого и браконьерского вылова русского осетра в р. Волге и Каспийском море // Тез. докл. Междунар. конф. “Осетровые на рубеже 21 века”. Астрахань, 2000. С. 54–56.
16. Казанчеев Е.Н. О распределении осетровых рыб в промысловой зоне Северного Каспия в связи с запрещением их морского лова // Тр. Каспийск. фил. Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр. 1965. Т. 20. C. 17–31.
17. Каспийское море. Ихтиофауна и промысловые ресурсы. М.: Наука, 1989. 289 с.
18. Катунин Д.Н. Гидроэкологические основы формирования экосистемных процессов в Каспийском море и дельте реки Волги. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2014. 478 с.
19. Книпович Н.М. Гидрологические исследования в Каспийском море в 1914–1915 гг. // Тр. Каспийской экспедиции 1914–1915 гг. Петербург: Первая гос. типография, 1921. Т. 1. 943 с.
20. Коноплёва И.В., Иванова Л.А. Мониторинговые исследования состояния популяции русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1833) в Волго-Каспийском бассейне в 2014–2015 гг. // Экологический мониторинг и биоразнообразие. 2016. № 1(11). С. 56–59.
21. Коробочкина З.С. Распределение осетра и севрюги в Северном Каспии в зависимости от водности года // Тр. Всесоюз. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр. 1970. T. 74. С. 125–133.
22. Кушнаренко А.И. Экологические аспекты воспроизводства промысловых рыб Северного Каспия: Автореф. дис. … докт. биол. наук. М., 2001. 50 с.
23. Легеза М.И. Закономерности распределения осетровых рыб в Каспийском море // Тез. докл. отчетной сессии Центр. н.-и. осетр. рыб. хоз-вa. Астрахань: Типография Волга, 1966. С. 47–49.
24. Легеза М.И. Закономерности распределения и формирование численности осетровых в Каспийском море: Автореф. дис. … на соиск. уч. ст. докт. биол. наук. Баку: Калининград. техн. ин-т рыб. пром. и хоз-ва. 1969. 34 с.
25. Легеза М.И. Количественное распределение осетровых (сем. Acipenseridae) в Каспийском море // Тр. Центр. н.-и. осетр. рыб. хоз-вa. 1970. Т. 2. С. 57–63.
26. Легеза М.И. Распределение осетровых рыб в Каспии // Вопр. ихтиологии. 1973. Т. 13. Вып. 6(83). С. 1008–1015.
27. Легеза М.И., Пироговский М.И., Ходоревская Р.П. Экология, воспроизводство и запасы рыб и нерыбных объектов промысла. Распределение, качественная структура популяций и численность осетровых в море // Каспийское море. Ихтиофауна и промысловые ресурсы. М.: Наука, 1989. С. 72–76.
28. Малиновская Л.В., Зинченко Т.Д. Многолетняя динамика сообществ макрозообентоса Северного Каспия // Изв. Самарск. науч. центра РАН. 2010. Т. 12. № 1. С. 179–184.
29. Мирзоев М. Белуга Huso huso // Бюл. Всекаспийск. науч. рыбохоз. экспедиции. Баку. 1932. № 5–6.
30. Молодцова А.И., Полянинова А.А. Питание осетра, севрюги и белуги в Каспийском море // Вопр. рыболовства. 2009. Т. 10. № 4(40). С. 718–740.
31. Молодцова А.И., Полянинова А.А., Кашенцева А.И., Камелов А.К. Состояние нагула осетровых в Каспийском море в 2003 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Результаты НИР за 2003 г. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2004. С. 215–225.
32. Осадчих В.Ф. Моллюск Syndesmya ovata в Северном Каспии // Тр. Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва. М.: Пищ. пром-сть, 1965. Т. 20. С. 35–39.
33. Павлов А.В., Захаров С.С. Распределение, качественный состав и численность осетровых в Северном Каспии в 1967 г. // Разработка биологических основ и биотехнического развития осетрового хозяйства в водоемах СССР. Астрахань: Изд-во Волга, 1968. С. 49–54.
34. Павлов А.В., Захаров С.С. Распределение, качественный состав и численность осетровых в Северном Каспии в 1967 г. // Тр. Центр. н.-и. осетр. рыб. хоз-ва. М.: Пищ. пром-сть, 1971. Т. 3. С. 235–268.
35. Пальгуй В.А. Численность и распределение осетровых в Северном Каспии // Осетровое хозяйство водоемов СССР. Астрахань, 1984. С. 248–249.
36. Пальгуй В.А. Распределение и численность севрюги в Каспийском море 1983–1985 гг. // Формирование запасов осетровых в условиях комплексного использования водных ресурсов: Кратк. тез. науч. докл. к предстоящему Всесоюз. совещ. (октябрь 1986 г). Астрахань, 1986. С. 255–257.
37. Пальгуй В.А. Состояние и причины сокращения запасов каспийских осетровых по материалам 1983–1991 гг. // Биологические ресурсы Каспийского моря. Астрахань: Изд-во Волга, 1992. С. 292–297.
38. Пальгуй В.А., Красиков Е.В., Шеходанов К.Л. Колебания численности осетровых рыб в Северном Каспии // Осетровое хозяйство водоемов СССР. Крат. тез. докл. к предстоящему Всесоюз. совещ. (ноябрь, 1989 г.). Ч. I. Астрахань. 1989. С. 242–244.
39. Пироговский М.И. Экология молодой белуги в морской период жизни // Тр. Всесоюз. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр. 1974. Т. 102. С. 45–55.
40. Пироговский М.И. Влияние уровня моря на динамику численности осетровых в Северном Каспии // Рациональные основы ведения осетрового хозяйства. Волгоград: Изд-во Волгоградская правда, 1981. С. 197–198.
41. Пироговский М.И. Распределение, структура и состояние запасов каспийских осетровых // Рациональные основы ведения осетрового хозяйства. Волгоград: Изд-во Волгоградская правда, 1981. С. 193–195.
42. Пискунов И.А. Распределение осетровых в Каспийском море // Изменение биологических комплексов Каспийского моря за последнее десятилетие. М.: Наука, 1965. С. 213–233.
43. Полянинова А.А., Молодцова А.И. Сравнительный анализ состояния нагула осетровых рыб на летних пастбищах западного и восточного районах Северного Каспия // Рыб. хоз-во. 2011. № 4. С. 57–58.
44. Романов А.А., Власенко А.Д., Левин А.В. и др. Динамика численности и биологические показатели производителей осетровых, мигрирующих в р. Волга в 2004 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2005. С. 268–275.
45. Рубан Г.И., Ходоревская Р.П., Кошелев В.Н. О состоянии осетровых в России // Астрахан. вестн. экол. образования. 2015. № 1(31). C. 42–50.
46. Сафаралиев И.А. Современное распределение севрюги (Acipenser stellatus Pallas, 1771) в Каспийском море и оценка запасов ее волжской популяции: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2018. 25 с.
47. Сливка А.П., Зыкова Г.Ф., Красиков Е.В. и др. Качественная структура, динамика численности, распределение и состояние запасов осетровых в Каспийском море в 1999 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии: Результаты НИР за 1999 год. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2000. С. 154–160.
48. Соколова Н.Ю. Питание осетровых рыб в Северном Каспии после вселения Nereis succinea // Сб. работ по акклиматизации Nereis succinea в Каспийском море. М.: Изд-во Москов. об-ва испыт. природы, 1952. С. 44–56.
49. Степанова Т.Г. Бычки как элемент Северного Каспия, их биология и значение: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Астрахань: Наука, 1998. 23 c.
50. Тарвердиева М.И. Роль акклиматизированных организмов в питании осетровых // Изменение биологических комплексов Каспийского моря за последние десятилетия. М.: Наука, 1965. С. 234–256.
51. Ходоревская Р.П. Состояние запасов осетровых в Каспийском бассейне // Осетровое хозяйство водоемов СССР. Волгоград: Типография Волгоградская правда, 1984. С. 373–376.
52. Ходоревская Р.П. Состояние промысловых запасов осетровых и определение величины их допустимых уловов в Волго-Каспийском районе // Динамика численности промысловых рыб. М.: Наука, 1986. С. 189–199.
53. Ходоревская Р.П. Поведение, распределение и миграции осетровых Волго-Каспийского бассейна: Автореф. дис. … докт. биол. наук. М., 2002. 49 с.
54. Ходоревская Р.П., Довгопол Г.Ф., Журавлева О.Л., Красиков Е.В. Ихтиологический мониторинг за состоянием запасов осетровых в Каспийском море // Мониторинг биоразнообразия. М.: Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 1997. С. 159–163.
55. Ходоревская Р.П., Калмыков В.А. Современное состояние популяции белуги в Волго-Каспийском рыбохозяйственном бассейне после запрета Российской Федерацией её промыслового изъятия // Вопр. рыболовства. 2012. Т. 13. № 4(52). С. 887–894.
56. Ходоревская Р.П., Красиков Е.В., Довгопол Г.Ф., Журавлева О.Л. Ихтиологический мониторинг за состоянием запасов осетровых рыб в Каспийском море // Экосистемы Прикаспия – XXI веку: Матер. междунар. науч. конф. 23–30.05.1998. Элиста; Астрахань, 1999. С. 67–71.
57. Ходоревская Р.П., Полянинова А.А. Оценка условий нагула белуги (Huso huso L.) в северо-западной части Северного Каспия // Морские гидробиологические исследования. М.: Tp. Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2000. С. 205–209.
58. Ходоревская Р.П., Красиков Е.В. Современное состояние запасов осетровых в Каспийском море: Тез. междунар. конф. “Каспий – настоящее и будущее”. Астрахань, 1995. С. 223–225.
59. Ходоревская Р.П., Красиков Е.В., Федин А.А. и др. Численность и распределение русского осетра Acipenser gueldenstaedtii в Каспийском море // Вопр. ихтиологии. 2001. Т. 41. № 3. С. 324–331.
60. Ходоревская Р.П., Калмыков В.А., Новикова А.С. и др. Оценка состояния запасов каспийской белуги и стерляди и прогноз их вылова на 2002 г. // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2001. С. 164–172.
61. Ходоревская Р.П., Калмыков В.А., Новикова А.С. и др. Динамика численности и биологические показатели популяции белуги (Huso huso) и стерляди (Acipenser ruthenus) в Волго-Касписйком бассейне // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2002. С. 183–202.
62. Ходоревская Р.П., Красиков Е.В., Федин А.А. и др. Численность и распределение белуги Huso huso в Каспийском море // Вопр. ихтиологии. 2002. Т. 42. № 1. С. 56–63.
63. Ходоревская Р.П., Романов А.А. Изменение распределения и численности осетровых в Каспийском море // Аквакультура осетровых рыб: достижения и перспективы развития. М.: ВНИРО, 2006. С. 12–15.
64. Ходоревская Р.П., Рубан Г.И., Павлов Д.С. Поведение, миграции, распределение и запасы осетровых рыб Волго-Каспийского бассейна. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. 242 с.
65. Чуканов В.А., Красиков Е.В., Федоров В.А., Шведов В.В. Особенности распределения севрюги в Северном Каспии // Тез. докл. Междунар. конф. “Осетровые на рубеже XXI века”. Астрахань, 2000. С. 110–111.
66. Vlasenko A.D., Pavlov A.V., Sokolov L.I., Vasil'ev V.P. Acipenser gueldenstaedti Brandt, 1833 // The Freshwater Fishes of Europe. V. 1. Part II. Wiesbaden: AULA-Verlag, 1989. P. 294–344.
67. Vlasenko A.D., Pavlov A.V., Vasil'ev V.P. Acipenser persicus Borodin // The Freshwater Fishes of Europe. V. 1. Part II. Wiesbaden: AULA-Verlag, 1989. P. 345–366.
А. А. Колмакова1, *, В. И. Колмаков2
Состав аминокислот зеленых и диатомовых микроводорослей, цианобактерий и зоопланктона (обзор)
1Институт биофизики СО РАН,
660036 Красноярск, Академгородок, 50/50, Россия
2Сибирский федеральный университет,
660041 Красноярск, проспект Свободный, 79, Россия
e-mail: angelika_@inbox.ru
Проанализированы литературные данные по содержанию аминокислот в водных организмах – основных группах продуцентов (зеленых и диатомовых микроводорослей, цианобактерий) и первичных консументов (зоопланктона). На основе этих данных рассчитаны процентные составы заменимых и незаменимых аминокислот микроводорослей, цианобактерий и зоопланктона, определены их различия. Выявлена неоднородность процентного состава аминокислот основных групп планктона. Обсуждена роль аминокислот как лимитирующего фактора развития растительноядного зоопланктона.
Ключевые слова: аминокислоты, микроводоросли, цианобактерии, зоопланктон, водные экосистемы..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Горюнова С.В., Ржанова Г.Н., Орлананский В.Н. Синезеленые водоросли. М.: Наука, 1969. 223 с.
2. Елякова Л.А., Светашова Т.Г., Лакизова И.Ю. Значение гистидина для активности β-1,3-глюконазы IV из Spisula sachalinensis // Биоорг. химия. 1977. Т. 3. № 3. С. 415–421.
3. Колмакова А.А., Гладышев М.И., Калачева Г.С. Различия аминокислотного состава доминирующих видов фитопланктона в эвтрофном водохранилище // Докл. РАН. 2007. Т. 415. № 5. С. 711–713.
4. Сакевич А.И., Клоченко П.Д. Свободные аминокислоты в экологическом метаболизме водорослей // Гидробиол. журн. 1996. Т. 32. № 5. С. 33–41.
5. Трубачев Н.И., Гительзон И.И., Калачева Г.С. и др. Биохимический состав некоторых сине-зеленых водорослей и хлореллы // Прикладная биохимия и микробиология. 1976. Т. 12. № 2. С. 196–202.
6. Чернова Е.Н., Русских Я.В., Афонина Е.И. и др. Масс-спектрометрический анализ микроцистинов из биомассы цианобактерий. Оптимизация процедуры пробоподготовки // Экологическая химия. 2016. Т. 24. № 4. С. 205–217.
7. Admiraal W., Peletier H., Laame R.W.P.M. Nitrogen metabolism of marine planktonic diatoms: excretion, assimilation and cellular pools of free amino acid in seven species with different cell size // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1986. V. 98. № 3. P. 241–263.
8. Ahlgren G., Gustafsson I.-B., Boberg M. Fatty acid content and chemical composition of freshwater microalgae // J. Phycol. 1992. V. 28. № 1. P. 37–50.
9. Ahlgren G., Hyenstrand P. Nitrogen limitation effects of different nitrogen sources on nutritional quality of two freshwater organisms, Scenedesmus quadricauda (Chlorophyceae) and Synechococcus sp. (Cyanophyceae) // J. Phycol. 2003. V. 39. P. 906–917.
10. Akgul R., Kizilkaya B., Akgul F., Erdugan H. Amino acid composition and crude protein values of some Cyanobacteria from Canakkale (Turkey) // Pak. J. Pharm. Sci. 2015. V. 28. № 5. P. 1757–1761.
11. Anderson T.R., Boersma M., Raubenheimer D. Stoichiometry: linking elements to biochemicals // Ecology. 2004. V. 85. P. 1193–1202.
12. Aragao C., Conceicao L.E.C., Dinis M.T., Fuhn H.-J. Amino acid pool of rotifers and Artemia under different conditions: nutritional implications for fish larvae // Aquaculture. 2004. V. 234. № 1–4. P. 429–445.
13. Becker E.W. Micro-algae as a source of protein // Biotechnol. Adv. 2007. V. 25. P. 207–210.
14. Birge E.A., Juday C. The organic content of lake water // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1926. V. 12. № 8. P. 515–519.
15. Brown M.R., Jeffrey S.W. Biochemical composition of microalgae from the green algal classes Chlorophyceae and Prasinophyceae. 1. Amino acids, sugars and pigments // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. V. 161. № 1. P. 91–113.
16. Brown M.R., Jeffrey S.W. The amino acid gross composition of marine diatoms potentially useful for mariculture // J. Appl. Phycol. 1995. V. 6. P. 521–527.
17. Brown M.R., Dunstan G.A., Norwood S.J., Miller K.A. Effect of harvest stage and light on the biochemical composition of the diatom Thalassiosira pseudonana // J. Phycol. 1996. V. 32. № 1. P. 64–73.
18. Brucet S., Boix D., Lopez-Flores R. et al. Ontogenetic changes of amino acid composition in planktonic crustacean species // Mar. Biol. 2005. V. 48. № 1. P. 131–139.
19. Consden R., Gordon A.H., Martin A.J.P. Qualitative analysis of proteins: a partition chromatographic method using paper // Biochem. J. 1944. V. 38. № 3. P. 224–232.
20. Cowey C.B., Corner E.D.S. On the nutrition and metabolism of zooplankton II. The relationship between the marine copepod Calanus helgolandicus and particulate material in Plymouth sea water, in terms of amino acid composition // J. Mar. Biol. Ass. UK. 1963. V. 43. P. 495–511.
21. Cowgill U.M., Emmel H.W., Hopkins D.L. et al. Variation in chemical composition, reproductive success and body weight of Daphnia magna in relation to diet // Int. Rev. gesamt. Hydrobiol., Hydrogr. 1986. V. 71. № 1. P. 79–99.
22. Dabrowski K., Rusiecki M. Content of total free amino acids in zooplanktonic food of fish larvae // Aquaculture. 1983. V. 30. № 1–4. P. 31–42.
23. Dortch Q. Effect of growth conditions on accumulation of internal nitrate, ammonium, amino acids and protein in three marine diatoms // J. Exp. Mar. Biol. and Ecol. 1982. V. 61. № 3. P. 243–264.
24. Dubovskaya O.P., Klimova E.P., Kolmakov V.I. et al. Seasonal dynamic of phototrophic epibionts on crustacean zooplankton in a eutrophic reservoir with cyanobacterial bloom // Aquat. Ecol. 2005. V. 39. № 2. P. 167–180.
25. Eisenhut M., Bauwe H., Hagemann M. Glycine accumulation is toxic for the cyanobacterium Synechocystis sp. strain PCC 6803, but can be compensated by supplementation with magnesium ions // FEMS Microbiol. Lett. 2007. V. 277. № 2. P. 232–237.
26. Forster I., Ogata H.Y. Lysine requirement of juvenile Japanese flounder Paralichthys olivaceus and juvenile red sea bream Pagrus major // Aquaculture. 1998. V. 161. P. 131–142.
27. Fowden L. Amino-acids of certain algae // Nature. 1951. V. 167. P. 1030–1031.
28. Fowden L.A. A comparison of the compositions of some algal proteins // Ann. Bot. 1954. V. 18. № 71. P. 257–266.
29. Flynn K.J., Al-Amoudi O.A. Effects of N deprivation and darkness on composition of free amino acid release from diatom Phaeodactylum tricornutum Bohlin // J. Exp. Mar. Biol. and Ecol. 1988. V. 119. № 2. P. 131–143.
30. Granum E., Kirkvold S., Myklestad S.M. Cellular and extracellular production of carbohydrates and amino acids by the marine diatom Skeletonema costatum: diel variations and effects of N depletion // Mar. Ecol. Progress Ser. 2002. V. 242. P. 83–84.
31. Guisande C., Maneiro I., Riveiro I. Homeostasis in the essential amino acid composition of the marine copepod Euterpina acutifrons // Limnol., Oceanogr. 1999. V. 44. № 3. P. 691–696.
32. Guisande C., Riveiro I., Maneiro I. Comparison among the amino acid composition of females, eggs and food to determine the relative importance of food quantity and food quality to copepod reproduction // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2000. V. 202. № 1–4. P. 135–142.
33. Guisande C., Bartumeus F., Ventura M., Catalan J. Role of food partitioning in structuring the zooplankton community in mountain lakes // Oecologia. 2003. V. 136. № 4. P. 627–634.
34. Guisande C. Biochemical fingerprints in zooplankton // Limnetica. 2006. V. 25. № 1–2. P. 369–376.
35. Halawlaw Y.I. Spirulina microalgae: A food for future // Pinnacle Biotech. 2014. V. 1(2). P. 249–255.
36. Hanson J.A., Dietz T.H. The role of free amino acids in cellular osmoregulation in the freshwater bivalve Ligumia subrostrata (Say) // Can. J. Zool. 1976. V. 54. № 11. P. 1927–1931.
37. Hanamachi Y., Hama T., Yanai T. Decomposition process of organic matter derived from freshwater phytoplankton // Limnology. 2008. V. 9. P. 57–69.
38. Hecky R.E., Mopper K., Kilham P., Degens E.T. The amino acid and sugar composition of diatom cell walls // Mar. Biol. 1973. V. 19. P. 323–331.
39. Helland S., Triantaphullidis G., Fuhn H. et al. Modulation of the free pool and protein content in populations of the brine shrimp Artemia spp // Mar. Biol. 2000. V. 137. № 5. P. 1005–1016.
40. Helland S., Nejstgaard J.C., Humlen R. et al. Effects of season and material food on Calanus finmarchicus reproduction, with emphasis on the free amino acids // Mar. Biol. 2003. V. 142. № 6. P. 1141–1151.
41. Helland S., Terjesen B., Berg L. Free amino acid and protein content in the planktonic copepod Temora longicornis compared to Artemia franciscana // Aquaculture. 2003. V. 215. № 1–4. P. 213–228.
42. Helland S., Nejstgaard J.C., Humlen R. et al. Effects of starvation, season, and diet on the free amino acid and protein content of Calanus finmarchicus females // Mar. Biol. 2003. V. 143. № 2. P. 297–306.
43. Hempel N., Petrick I., Behrendt F. Biomass productivity and productivity of fatty acids and amino acids of microalgae strains as key characteristics of suitability for biodiesel production // J. Appl. Phycol. 2012. V. 24. № 6. P. 1407–1418.
44. Kalachova G.S., Kolmakova A.A., Gladyshev M.I. et al. Seasonal dynamics of amino acids in two small Siberian reservoirs dominated by prokaryotic and eukaryotic phytoplankton // Aquat. Ecol. 2004. V. 38. P. 3–15.
45. Khatoon H., Banerjee S., Yusoff F.M., Shariff M. Evaluation of indigenous marine periphytic Amphora, Navicula and Cymbella grown on substrate as feed supplement in Penaeus monodon postlarval hatchery system // Aquaculture Nutr. 2009. V. 15. P. 186–193.
46. Kibria G., Nugegoda D., Fairclough R. et al. Utilization of wastewater-grown zooplankton: Nutritional quality of zooplankton and performance of silver perch Bidyanus bidyanus (Mitchell, 1838) (Teraponidae) fed on wasterwater-grown zooplankton // Aquaculture Nutr. 1999. V. 5. № 4. P. 221–227.
47. Kleppel G.S., Burkart C.A., Houchin L. Nutrition and the regulation of egg production in the calanoid copepod Acartia tonsa // Limnol., Oceanogr. 1998. V. 43. № 5. P. 1000–1007.
48. Koch U., Martin-Creuzburg D., Grossart H.-P., Straile D. Single dietary amino acids control resting egg production and affect population growth of a key freshwater herbivore // Oecologia. 2011. V. 167. P. 981–989.
49. Kolmakova A.A., Gladyshev M.I., Kalachova G.S. et al. Amino acid composition of epilithic biofilm and benthic animals in a large Siberian river // Freshwater Biol. 2013. V. 58. № 10. P. 2180–2195.
50. Laloraya V.K., Mitra A.K. Free amino acid composition of some nitrogen fixing blue-green algae in heterocystous and non-heterocystous condition // Experientia. 1970. V. 26. № 1. P. 39–40.
51. Li P., Mai K., Trushenski J., Wu G. New developments in fish amino acid nutrition: towards functional and environmentally oriented aquafeeds // Amino acids. 2009. V. 37. P. 43–53.
52. Martin-Jezequel V., Sournia A., Birrien J.-L. A daily study of the diatom spring bloom at Roscoff (France) in 1985. III. Free amino acids composition studied by HPLC analysis // J. Plankton Res. 1992. V. 14. № 3. P. 409–421.
53. Misurcova L., Bunka F., Ambrozova J.V. et al. Amino acid composition of algal products and its contribution to RDI // Food Chem. 2014. V. 151. P. 120–125.
54. Mitra G. Mukhopadhyay P.K., Ayyappan S. Biochemical composition of zooplankton community grown in freshwater earthen ponds: Nutritional implication in nursery rearing of fish larvae and early juveniles // Aquaculture. 2007. V. 272. № 1–4. P. 346–360.
55. Natrah F.M., Yusoff F.M., Shariff M. et al. Screening of Malaysian indigenous microalgae for antioxidant properties and nutritional value // J. Appl. Phycol. 2007. V. 19. № 6. P. 711–718.
56. Ogbonda K.H., Aminigo R.E., Abu G.O. Influence of temperature and pH on biomass production and protein biosynthesis in a putative Spirulina sp. // Bioresour. Technol. 2007. V. 98. № 11. P. 2207–2211.
57. Ovie S.I., Ovie S.O. Moisture, protein, and amino acid contents of three freshwater zooplankton used as feed for aquacultured larvae and postlarvae // Isr. J. Aquaculture. 2006. V. 58. № 1. P. 29–33.
58. Rosa R., Nunes M.L. Seasonal patterns of nucleic acid concentrations and amino acid profiles of Parapenaeus longirostris (Crustacea, Decapoda): relation to growth and nutritional condition // Hydrobiologia. 2005. V. 537. P. 207–216.
59. Samek D., Misurcova L., Machu L. et al. Influencing of amino acid composition of green freshwater algae and cyanobacterium by methods of cultivation // Turk. J. Biochem. 2013. V. 38. № 4. P. 360–368.
60. Shim Y.-S., Yoon W.-J., Ha J. et al. Method validation of 16 types of structural amino acids using an automated amino acid analyzer // Food Sci. Biotechnol. 2013. V. 22. № 6. P. 1567–1571.
61. Sorimachi K. Evolutionary changes reflected by the cellular amino acid composition // Amino Acids. 1999. V. 17. P. 207–226.
62. Sorimachi K. The classification of various organisms according to the free amino acid composition change as the result of biological evolution // Amino Acids. 2002. V. 22. P. 55–69.
63. Spackman D.H., Stein W.H., Moore S. Automatic Recording Apparatus for Use in Chromatography of Amino Acids // Anal. Chem. 1958. V. 30. № 7. P. 1190–1206.
64. Sterner R.W., Hessen D.O. Algal nutrient limitation and the nutrition of aquatic herbivores // Ann. Rev. Ecol. System. 1994. V. 25. P. 1–29.
65. Tibbetts S.M., Milley J.E., Lall S.P. Chemical composition and nutritional properties of freshwater and marine microalgal biomass cultured in photobioreactors // J. Appl. Phycol. 2015. V. 27. P. 1109–1119.
66. Wacker A., Martin-Creuzburg D. Biochemical nutrient requirements of the rotifer Brachionus calyciflorus: co-limitation by sterols and amino acids // Funct. Ecol. 2012. V. 26. № 5. P. 1135–1143.
67. Wang S.-K., Hu Y.-R., Wang F. et al. Scale-up cultivation of Chlorella ellipsoidea from indoor to outdoor in bubble column bioreactors // Bioresource Techn. 2014. V. 156. P. 117–122.
68. Williams A.E., Burris R.H. Nitrogen Fixation by Blue-Green Algae and Their Nitrogenous Composition // Amer. J. Bot. 1952. V. 39. № 5. P. 340–342.
69. Wu G. Amino acids: metabolism, functions, and nutrition // Amino Acids. 2009. V. 37. P. 1–17.
70. Ventura M., Catalan J. Variability in amino acid composition of alpine crustacean zooplankton and its relationship with nitrogen-15 fractionation // J. Plankton Res. 2010. V. 32. № 11. P. 1583–1597.
71. Vidoudez C., Pohnert G. Comparative metabolomies of the diatom Skeletonema marinoi in different growth phases // Metabolomics. 2012. V. 8. № 4. P. 654–669.
72. Yancey P.H., Clark M.E., Hand S.C. et al. Living with water stress: evolution of osmolyte systems // Science. 1982. V. 217. P. 1214–1222.
И. Л. Голованова1, *, В. К. Голованов1, Г. М. Чуйко1, В. А. Подгорная1, А. И. Аминов2
Влияние низкой концентрации гербицида Раундап и теплового стресса на физиологические и биохимические показатели у молоди ротана Perccottus glenii Dybowski
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл., Россия
2Ярославский государственный медицинский университет,
150000 Ярославль, ул. Революционная, 5, Россия
e-mail: golovanova5353@mail.ru
Изучено влияние 30-суточной экспозиции в гербициде Раундап (концентрациz 2 мкг/л) и теплового стресса на активность кишечных гликозидаз (мальтазы и амилолитическую активность (АА)), активность ацетилхолинэстеразы (АХЭ) и концентрацию водорастворимого белка (ВРБ) головного мозга у молоди ротана Perccottus glenii Dybowski. Кроме того, определены критический термический максимум и окончательно избираемая температура рыб контрольной (экспозиция без Раундапа) и экспонированной в Раундапе групп. После экспозиции к Раундапу АА была ниже на 27%, концентрация ВРБ на 31% ниже контроля, активность мальтазы и АХЭ не изменялась. Повышение температуры воды со скоростью 8 °С/ч снижало АА на 60%, активность мальтазы на 18%, содержание ВРБ на 28% у рыб контрольной группы. У рыб опытной группы увеличение температуры воды снижало АА на 76%, активность АХЭ на 29%, содержание ВРБ на 40%, но повышало активность мальтазы на 11% контроля. Пребывание в течение 12 сут в термоградиенте без гербицида (диапазон температуры 14–31 °C) снижало ингибирующий эффект нагрева на АА, но увеличивало его на АХЭ и ВРБ у рыб контрольной и экспонированной групп (на активность мальтазы лишь у рыб, экспонированных в Раундапе). Значения критического термического максимума и окончательно избираемой температуры у рыб контрольной и опытной групп не различались.
Ключевые слова: ротан, мальтаза, амилолитическая активность, АХЭ, водорастворимый белок, верхняя летальная температура, окончательно избираемая температура, Раундап, температурный стресс..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Aparicio, V.C., De Geronimo, E., Marino, D. et al., Environmental fate of glyphosate and aminomethylphosphonic acid in surface waters and soil of agricultural basins // Chemosphere, 2013, vol. 93, pp. 1866‒1873. doi 10.1016/j.chemosphere.2013.06.041
2. Badenhuizen, T.R., Temperature selected by Tilapia mossambica (Peters) in a test tank with a horizontal temperature gradient // Hydrobiologia, 1967, vol. 30, pp. 541–554.
3. Benbrook, C.M., Trends in glyphosate herbicide use in the United States and globally // Environ. Sci. Eur., 2016, vol. 28, no. 3, pp. 1-15. doi 10.1186/s12302-016-0070-0
4. Beitinger, T.L., Bennet, W.A., McCauley, R.W., Temperature tolerances of North American freshwater fishes exposed to dynamic changes in temperature // Environ. Biol. Fish., 2000, vol. 58, pp. 237–275. doi 10.1023/A:1007676325825
5. Bradford, M.M., A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principal of protein dye binding // Anal. Biochem., 1976, vol. 72, pp. 248‒254. doi 10.1006/abio.1976.9999
6. Cattaneo, R., Clasen, B., Loro, V.L. et al., Toxicological responses of Cyprinus carpio exposed to a commercial formulation containing glyphosate // Bull. Environ. Contam. Toxicol., 2011, vol. 87, no. 6, pp. 597‒602. doi 10.1007/s00128-011-0396-7
7. Changon, N., Hlohowskyj, I., Effects of phenol exposure on the thermal tolerance ability of the central stoneroller minnow // Bull. Environ. Contam. Toxicol., 1989, vol. 42, pp. 614–619. doi 10.1007/BF01700246
8. Dorts, J., Kestemont, P., Thézenas, M.-L. et al., Effects of cadmium exposure on the gill proteome of Cottus gobio: Modulatory effects of prior thermal acclimation // Aquat. Toxicol., 2014, vol. 154, pp. 87–96. doi 10.1016/j.aquatox.2014.04.030
9. Ellman, G.L., Courtney, K.D., Andres, V. et al., A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity // Biochem Pharmacol., 1961, vol. 70, pp. 88–95. doi 10.1016/0006-2952(61)90145-9
10. Fan, J.Y., Geng, J.J., Ren, H.Q. et al., Herbicide Roundup and its constituents cause oxidative stress and inhibit acetylcholinesterase in liver of Carassius auratus // J. Environ. Sci. Health., 2013, Part B, vol. 48, no. 10, pp. 844850. doi 10.1080/03601234.2013.795841
11. Filizadeh, Y., Rajabi, Islami, H., Toxicity determination of three sturgeon species exposed to glyphosate // Iran. J. Fish. Sci., 2011, vol. 10, no. 3, рр. 383-392.
12. Ghisi, N.C., Cestari, M.M., Genotoxic effects of the herbicide Roundup in the fish Corydoras paleatus (Jenyns 1842) after short-term, environmentally low concentration exposure // Environ. Monit. Assess., 2013, vol. 185, pp. 3201‒3207. doi 10.1007/s10661-012-2783-x
13. Gholami-Seyedkolaei, S.J, Mirvaghefi, A., Farahmand H. et al., Optimization of recovery patterns in common carp exposed to roundup using response surface methodology: Evaluation of neurotoxicity and genotoxicity effects and biochemical parameters // Ecotoxicol. Environ. Safety, 2013, vol. 98, pp. 152‒161. doi 10.1016/j.ecoenv.2013.09.009
14. Giaquinto, P.C., de Sá M.B., Sugihara, V.S. et al., Effects of Glyphosate-Based Herbicide Sub-Lethal Concentrations on Fish Feeding Behavior // Bull. Environ. Contam. Toxicol., 2017, vol. 98, no. 4, pp. 460–464. doi 10.1007/s00128-017-2037-2
15. Giesy, J.P., Dobson, S., Solomon, K.R., Ecotoxicological risk assessment for Roundup herbicide // Rev. Environ. Contam. Toxicol., 2000. vol. 167. pp. 35-120.
16. Gill, J.P.K., Sethi, N., Mohan, A. et al., Glyphosate toxicity for animals // Environ. Chem. Lett., 2018. vol. 16. no. 2. pp. 401‒426.
17. Glusczak, L., Miron, D.S., Crestani, M. et al., Effect of glyphosate herbicide on acetylcholinesterase activity and metabolic and hematological parameters in piava (Leporinus obtusidens) // Ecotoxicol. Environ. Safety., 2006, vol. 65. pp. 237–241. doi 10.1016/j.ecoenv.2005.07.017
18. Glusczak, L., Miron, D.S., Moraes, B.S. et al., Acute effects of glyphosate herbicide on metabolic and enzymatic parameters of silver catfish (Rhamdia quelen) // Comp. Biochem. Physiol., 2007. vol. 146C. pp. 519‒524. doi 10.1016/j.cbpc.2007.06.004
19. Golovanov, V.K., Ecophysiological patterns of distribution and behavior of freshwater fish in thermal gradients // J. Ichthyol., 2013, vol. 53, pp. 252–280. doi 10.1134/S0032945213030016
20. Golovanov, V.K., Chuiko, G.M., Podgornaya, V.A. et al., Dynamics of acethylcholinesterase activity and water-soluble proteins in the brain fish at different speeds heating in the summer season of the year // Proceedings of the Karelian Research Centre of the Russian Academy of Sciences. Ecological Studies Series, 2015, no. 12, pp. 116–123.
21. Golovanova, I.L., Aminov, A.I., Influence of some ecological factors on the sensitivity of fish glycosidase to herbicide Roundup in vitro // Proceedings of the Karelian Research Centre of the Russian Academy of Sciences. Ecological Studies Series, 2016, no. 12, pp. 96–105.
22. Golovanova, I.L., Golovanov, V.K., Smirnov A.K., Pavlov, D.D., Effect of ambient temperature increase on intestinal mucosa amylolitic activity in freshwater fish // Fish. Physiol. Biochem., 2013, vol. 39, pp. 1497‒1504. doi 10.1007/s10695-013-9803-9
23. Kier, L.D., Kirkland, D.J., Review of genotoxicity studies of glyphosate and glyphosate-based formulations // Crit. Rev. Toxicol., 2013, vol. 43, no. 4, pp. 283‒315. doi 10.3109/10408444.2013.770820
24. Kuz’mina, V.V., Tarleva, A.F., Sheptitskii, V.A., Influence of Roundup Herbicide on the Activities of Peptidases in the Intestines of Various Fish Species // J. Ichthyol., 2017, vol. 57, no. 5, pp. 761–767. doi 10.1134/S0032945217050095
25. Modesto, K.A., Martinez, C.B.R. Roundup causes oxidative stress in liver and inhibits acetylcholinesterase in muscle and brain of the fish Prochilodus lineatus // Chemosphere., 2010. vol. 78. pp. 294‒299. doi 10.1016/j.chemosphere.2009.10.047.
26. Murussi, C.R., Costa M.D., Leitemperger, J.W. et al., Exposure to different glyphosate formulations on the oxidative and histological status of Rhamdia quelen // Fish Physiol. Biochem., 2016, vol. 42, no. 2, pp. 445455. doi 10.1007/s10695-015-0150-x
27. Patra, W.R., Chapman, J.C., Lim, R.P., Gehrke, P.C., The effects of three organic chemicals on the upper thermal tolerances of four freshwater fishes // Environ. Toxicol. Chem., 2007, vol. 26, pp. 1454–1459. doi 10.1897/06-156R1.1
28. Pavlov, D.F., Chuiko, G.M., Gerassimov, Y.V., Tonkopiy, V.D., Feeding behavior and brain acetylcholinesterase activity in bream (Abramis brama L.) as affected by DDVP, an organophosphorus insecticide // Comp. Biochem. Physiol., 1992, vol. 103C. no. 3, pp. 563568. doi 10.1016/0742-8413(92)90182-7
29. Rossi, C.R., da Silva, M.D., Piancini, L.D.S. et al., Sublethal effects of waterborne herbicides in tropical freshwater fish // Bull. Environ. Contam. Toxicol., 2011, vol. 87, no 6, pp. 603–607. doi 10.1007/s00128-011-0397-6
30. Samanta, P., Pal S., Mukherjee, A.K., Ghosh, A.R., Biochemical effects of glyphosate based herbicide Excel Mera 71 on enzyme activities of acetylcholinesterase (AChE), lipid peroxidation (LPO), catalase (CAT), glutathione-S-transferase (GST) and protein content on teleostean fishes // Ecotoxicol. Environ. Safety, 2014, vol. 107, pp. 120‒125. doi 10.1016/j.ecoenv.2014.05.025
31. Struger, J., Thompson, D., Staznik B., et al., Occurrence of Glyphosate in surface waters of Southern Ontario // Bull. Environ. Contam. Toxicol., 2008, vol. 80, no. 4, pp. 378–384. doi 10.1007/s00128-008-9373-1
32. Sviridov, A.V., Shushkova, T.V., Ermakova, I.T. et al., Microbial degradation of glyphosate herbicides (review) // Appl. Biochem. Microbiol., 2015, vol. 51, no. 2, pp. 188–195. doi 10.1134/S0003683815020209
33. Tsui, M.T.K., Chu, L.M., Aquatic toxicity of glyphosate-based formulations: comparison between different organisms and the effects of environmental factors // Chemosphere, 2003, vol. 52, no. 7, pp. 1189‒1197. doi 10.1016/S0045-6535(03)00306-0
34. Tsui, M.T.K., Chu, L.M., Environmental fate and non-target impact of glyphosate-based herbicide (Roundup) in a subtropical wetland // Chemosphere, 2008, vol. 71, no. 3, pp. 439‒446. doi 10.1016/j.chemosphere.2007.10.059
35. Ugolev, A.M., Iezuitova, N.N., Determination of activity of invertase and other disaccharidases // Study the digestive system of humans, L.: Nauka, 1969, pp. 192–196.
36. Ugolev, A.M., Kuz’mina, V.V., Digestive processes and adaptations in fish. S.-Petersburg: Gidrometeoizdat, 1993, 238 p.
37. Williams, G.M., Kroes, R., Munro, I.C., Safety evaluation and risk assessment of herbicide Roundup and its active ingredient, glyphosate, for humans // Regul. Toxicol. Pharmacol., 2000, vol. 31, no. 2, pp. 117‒165. doi 10.1006/rtph.1999.1371
38. World Health Organization (WHO), Environmental health criteria 159 ‒ Glyphosate. International Programme on Chemical Safety. 1994.
А. И. Копылов1, Т. С. Масленникова1, И. В. Рыбакова1, Н. М. Минеева1, *
ВКЛАД АВТОТРОФНЫХ СООБЩЕСТВ В ФОРМИРОВАНИЕ ПЕРВИЧНОЙ ПРОДУКЦИИ В ЭКОСИСТЕМЕ РЫБИНСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
e-mail: mineeeva@ibiw.yaroslavl.ru
На основе собственных и литературных данных оценена общая первичная продукция и вклад автотрофных сообществ в ее формирование в экосистеме Рыбинского водохранилища. За вегетационный сезон 2009 г. для фитопланктона он был 390 198 т С, эпифитона – 6100 т С, макрофитов – 115 550 т С, фитобентоса – 1491 т С. В литорали водохранилища, занимающей 4.1% площади водоема, 74.4% общей первичной продукции создавали высшие водные растения.
Ключевые слова: первичная продукция, фитопланктон, эпифитон, водные макрофиты, фитобентос, Рыбинское водохранилище..
Показать список литературы
Cписок литературы
Жукова А.А. Первичная продукция планктона, эпифитона, макрофитов и микрофитобентоса в литоральных биотопах оз. Нарочь // Веснik Брэсцкага унiверсiтэта, серыя прыродазнаучых навук. 2005. № 3(24). С. 79–84.
2. Заходнова Т.А. Микрофитобентос малых озер Северо-Запада и его роль в биотическом балансе: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Л., 1984. 22 с.
3. Заходнова Т.А. Продуктивность микрофитобентоса пресноводных водоемов // Круговорот вещества и энергии в водоемах. Вып. II. Структура и продуктивность растительных сообществ (фитопланктон, фитобентос, высшая водная растительность): Матер. к VI Всесоюз. лимнол. совещ. Иркутск, 1985. С. 33.
4. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Бактериопланктон Верхней и Средней Волги. М.: Изд-во Современного гуманитарного ун-та, 2008. 377 с.
5. Макаревич Т.А. Первичная продукция перифитона: проблемы, задачи // Озёрные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды: Матер. Междунар. науч. конф. Минск: Белорус. гос. ун-т, 2000. С. 219–225.
6. Минеева Н.М. Первичная продукция планктона в водохранилищах Волги. Ярославль: Принтхаус, 2009. 279 с.
7. Романенко В.И. Микробиологические процессы продукции и деструкции органического вещества во внутренних водоемах. Л.: Наука, 1985. 295 с.
8. Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Л.: Наука, 1974. 194 с.
9. Сигарева Л.Е. Хлорофилл в донных отложениях волжских водоемов. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2012. 217 с.
10. Papchenkov V. G. The degree of overgrowth of the Rybinsk reservoir and productivity of its vegetation cover // Inland Water Biol. 2013. V. 6. № 1. P. 18–25.
11. Rybakova I.V. Number, biomass and activity of bacteria in the water of overgrowths and periphyton on higher aquatic plants // Inland Water Biol. 2010. V. 3. № 4. P. 307–312.
Г. Х. Щербина1,*, Е. В. Никитенко2
Новые для фауны Калмыкии виды донных макробеспозвоночных
1Институт биологии внутренних вод им И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2МБОУ “Лицей г. Отрадное”,
187330 г. Отрадное, Ленинградская обл., Кировский р-н, Россия
e-mail: gregory@ibiw.yaroslavl.ru
Приведен список 17 видов донных макробеспозвоночных, впервые обнаруженных в водных объектах Республики Калмыкии, и них хирономид – 6 видов, моллюсков – 4, олигохет – 3, болотниц, стрекоз, слепней и мокрецов – по одному виду. Указано местонахождение и дана эколого-фаунистическая характеристика этих видов. Все выявленные виды в основном широко распространены на территории России.
Ключевые слова: донные макробеспозвоночные, численность, биомасса, водные объекты, Калмыкия. .
Показать список литературы
Cписок литературы
Белоусова Г.Н., Демченко В.А. Бентофауна внутренних водоемов Калмыцкой АССР // Животные водных и околоводных биогеоценозов полупустыни: Сб. науч. тр. Элиста: Калмык. гос. ун-т, 1987. С. 18–25.
2. Габунщина Э.Б., Горшков Е.В. Как остановить пустыню? Элиста: Джангар, 1998. 117 с.
3. Джабруева Л.В. Эмиссия церкарий лимнеид и планорбид реки Элистинки // Фауна и экология животных в условиях ирригации земель. Элиста: Калм. гос. ун-т, 1990. С. 55–59.
4. Жадин В.И. Моллюски пресных вод СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1952. Вып. 46. 376 с.
5. Зинченко Т.Д. Эколого-фаунистическая характеристика хирономид (Diptera, Chironomidae) малых рек бассейна Средней и Нижней Волги (Атлас). Тольятти: Кассандра, 2011. 258 с.
6. Круглова В.М. Изучение кормовой базы рыб и перспективная рыбопродуктивность Чограйского водохранилища. Ростов-на-Дону: Ростов. ун-т, 1971. 29 с.
7. Круглова В.А., Рейх Е.М., Кузьмичева И.Я. и др. Формирование гидрохимического и биологического режимов Чограйского водохранилища // Тр. Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1974. Т. 103. 72 с.
8. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 254 с.
9. Никитенко Е.В. Макрозообентос Чограйского водохранилища и некоторых озер Калмыкии. Элиста: Ин-т комплексных исследований аридных территорий, 2015. 206 с.
10. Никитенко Е.В., Щербина Г.Х. Эколого-фаунистический обзор макробеспозвоночных Чограйского водохранилища // Вода: химия и экология. 2013. № 7. С. 75–80.
11. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 511 с.
12. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 2: Ракообразные. СПб.: Наука, 1995. 628 с.
13. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 3: Паукообразные. Низшие насекомые. СПб.: Наука, 1997. 440 с.
14. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 4: Высшие насекомые, двукрылые. СПб.: Наука, 1999. 998 с.
15. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 5: Высшие насекомые. СПб.: Наука, 2001. 825 с.
16. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсем. Orthocladiinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae). Л.: Наука, 1970. 344 с.
17. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейства Podonominae и Tanypodinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae). Л.: Наука, 1977. 152 с.
18. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейства Chironomidae фауны СССР (Diptera, Chironomidae). Л.: Наука, 1983. 295 с.
19. Рейх Е.М., Чердынцев Л.М., Столович Т. Г. Водохранилища бассейна Азовского моря перспективы их рыбохозяйственного использования в условиях возрастающего антропогенного воздействия. Ростов-на-Дону: Центральный научно-исследовательский институт информации и технико-экономических исследований рыбного хозяйства, 1983. 64 с.
20. Соколова Н.Ю., Баканов А.И. Методика количественного учета и выявления пространственного распределения бентоса (хирономид) // Методическое пособие по изучению хирономид. Душанбе: Дониш, 1982. С. 3–19.
21. Чекановская О.В. Водные малощетинковые черви фауны СССР. М.; Л.: АН СССР, 1962. 411 с.
22. Шилова А.И. Хирономиды Рыбинского водохранилища. Л.: Наука, 1976. 253 с.
23. Шилова А.И., Зеленцов Н.И. Фауна хирономид (Diptera, Chironomidae) бассейна Верхней Волги // Биология внутр. вод. 2003. № 2. С. 27–34.
24. Щербина Г.Х. Таксономический состав и сапробиологическая значимость донных макробеспозвоночных различных пресноводных экосистем Северо-Запада России // Экология и морфология беспозвоночных континентальных вод. Махачкала: Изд-во Наука ДНЦ, 2010. С. 426–466.
И. А. Столбунов1, *, Чан Дык Зьен2
Массовые чужеродные виды в рыбном населении внутренних вод Центрального Вьетнама
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2Приморское отделение Российско-Вьетнамского Тропического научно-исследовательского и технологического центра,
625080 г. Нячанг, провинция Кханьхоа, Вьетнам
e-mail: sia@ibiw.yaroslavl.ru
На современном этапе в ряде пресноводных водоемов и водотоков Центрального Вьетнама виды-вселенцы доминируют по численности и являются конкурентами за средовые ресурсы и экологические ниши для аборигенных видов, что в итоге может привести к снижению разнообразия и трансформации рыбных сообществ. Рассмотрены данные по распространению и биологии основных массовых рыб-вселенцев, представляющих наиболее серьезную угрозу тропическим пресноводным экосистемам, в том числе Вьетнама: птеригоплихтам Pterygoplichthys spp. (Loricariidae) и нильской тиляпии Oreochromis niloticus (L.) (Cichlidae). Показано, что данные виды-вселенцы обладают высоким адаптивным потенциалом. Отмечено, что инвазии, а также преднамеренная и случайная интродукция чужеродных видов рыб может иметь негативные последствия для биоразнообразия водных экосистем Вьетнама.
Ключевые слова: чужеродные виды, нильская тиляпия Oreochromis niloticus (L.) (Cichlidae), кольчужные сомы (Loricariidae), птеригоплихты Pterygoplichthys spp., биоразнообразие, водные экосистемы, Вьетнам.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Столбунов И.А. Рыбное население водохранилищ Центрального Вьетнама // Экология внутренних вод Вьетнама. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. С. 241–255.
2. Столбунов И.А., Гусаков В.А. Спектр питания и особенности роста нильской тиляпии Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758) в нативных условиях: озера Вьетнама // Рыб. хоз-во. 2015. № 6. С. 91–93.
3. Столбунов И.А., Гусаков В.А., Чан Дык Зьен, Нгуен Тхи Хай Тхань. Отчет по теме ЭКОЛАН-3.2 “Таксономическое разнообразие, экология и поведение пресноводных гидробионтов”. Раздел: “Видовое разнообразие и биология рыб в континентальных и островных водоемах разного типа”. Нячанг: Российско-Вьетнамский тропический научно-исследовательский и технологический центр. Приморское отделение, 2015. 42 с.
4. Столбунов И.А., Гусаков В.А., Чан Дык Зьен, Нгуен Тхи Хай Тхань. Отчет по теме ЭКОЛАН-3.2 “Таксономическое разнообразие, экология и поведение пресноводных гидробионтов”. Раздел: “Видовое разнообразие и биология рыб в континентальных и островных водоемах разного типа”. Нячанг: Российско-Вьетнамский тропический научно-исследовательский и технологический центр. Приморское отделение, 2017. 67 с.
5. Экология внутренних вод Вьетнама. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 435 с.
6. Armbruster J.W., Page L.M. Redescription of Pterygoplichthys punctatus and description of a new species of Pterygoplichthys (Siluriformes: Loricariidae) // Neotropical Ichthyol. 2006. V. 4(4). P. 401–409.
7. Chavez J.M., Reynaldo M. De La Paz, Surya Krishna Manohar et al. VI, New Philippine record of South American sailfin catfishes (Pisces: Loricariidae) // Zootaxa. 2006. № 1109. P. 57–68.
8. Eschmeyer W.N. Catalog of Fishes. California Academy of Sciences. 2013. http://www.fischfauna-online.de.
9. Froese R., Pauly D. Fish Base. World Wide Web electronic publication. 2012. http://www.fishbase.org, version (12/2012).
10. Gestring K.B., Shafland P.L., Stanford M.S. The status of Loricariid catfishes in Florida with emphasis on Orinoco Sailfin (Pterygoplichthys multiradiatus) // Abstracts for the 26th Annual Meeting of the Florida Chapter American Fisheries Society. 2006. Р. 20.
11. Gibbs M.A., Shields J.H., Lock D.W. et al. Reproduction in an invasive exotic catfish Pterygoplichthys disjunctivus in Volusia Blue Spring, Florida, U.S.A. // J. Fish Biol. 2008. V. 73. № 7. P. 1562–1572.
12. Godwin J.C., Steen D.A., Werneke D., Armbruster J.W. Two Significant Records of Exotic Tropical Freshwater Fishes in Southern Alabama // Notes of the Southeastern Naturalist. 2016. V. 15. № 4. P. N57–N60.
13. Kottelat M. Diversity of freshwater fishes in Southeast Asia // Korean J. Ichthyol. 2009. V. 21. P. 3–6.
14. Kottelat M., Whitten A.J., Kartikasari S.N., Wirjoatmodjo S. Freshwater fishes of western Indonesia and Sulawesi. Hong Kong: Periplus Editions, 1993. 259 p.
15. Le Thanh Luu, Nguyen Van Thanh. Viet Nam national report on alien species // International mechanisms for the control and responsible use of alien species in aquatic ecosystems. Report of an Ad Hoc Expert Consultation. Xishuangbanna. People’s Republic of China. 2005. P. 123–126.
16. Levin B.A., Phuong P.H., Pavlov D.S. Discovery of the Amazon sailfin catfish Pterygoplichthys pardalis (Castelnau, 1855) (Teleostei: Loricariidae) in Vietnam // J. Appl. Ichthyol. 2008. V. 24. P. 715–717.
17. Liang S.H., Wu H.P., Shieh B.S. Size structure, reproductive phenology, and sex ratio of an exotic armored catfih (Liposarcus multiradiatus) in the Kaoping River of southern Taiwan // Zool. Stud. 2005. V. 44. P. 252–259.
18. Li-Wei Wu, Chien-Chin Liu, Si-Min Lin. Identifiation of exotic sailfin catfish species (Pterygoplichthys, Loricariidae) in Taiwan based on morphology and mtDNA sequences // Zool. Stud. V. 50(2). 2011. P. 235–246.
19. Lowe S., Browne M., Boudjelas S., De Poorter M. 100 of the World’s Worst Invasive Alien Species // A selection from the Global Invasive Species Database. Invasive Species Specialist Group (ISSG) of the Species Survival Commission (SSC) of the World Conservation Union (IUCN). New Zealand: Auckland, 2004. 12 p.
20. Mendoza R.E., Cudmore B., Orr R. et al. Trinational risk assessment guidelines for aquatic alien invasive species. Canada. Commission for Environmental Cooperation. 393, rue St-Jacques Ouest, Bureau 200, Montréal (Québec), Canada. 2009. 100 p.
21. Nico L.G., Martin R.T. The South American suckermouth armored catfish, Pterygoplichthys anisitsi (Pisces: Loricariidae) in Texas with comments on foreign fish introductions in the American Southwest // The Southwestern Naturalist. 2001. V. 46(1). P. 98–104.
22. Nico L.G., Walsh S.J. Non-indigenous freshwater fishes on tropical Pacific islands: a review of eradication efforts // Island invasives: eradication and management. Switzerland: IUCN, Gland, 2011. P. 97–107.
23. Pilgrim J.D., Nguyen Duc Tu. Background paper on threatened and alien species in Vietnam and recommendations for the content of the Biodiversity Law. Report to the Department of Environment, Ministry of Natural Resources and Environment. Hanoi: Bird Life International Vietnam Programme, 2007. 83 p.
24. Serov D. Harnischwelse in Südostasien // DATZ. 2004. № 2. P. 18–19.
25. Stolbunov I.A., Nguyen Thi Hai Thanh. Defensive reactions and swimming ability of Nile tilapia Oreochromis niloticus (L.) (Cichlidae) from different habitats // Transactions of I.D. Papanin Institute for Biology of Inland Waters. Yaroslavl: Filigran, 2017. V. 78(81). P. 198–206.
26. Thien T.M., Dan N.C., Tuan P.A. Review of fish genetics and breeding research in Vietnam // Fish genetics research in member countries and institutions of the International Network on Genetics in Aquaculture. ICLARM Conf. Proc. 64. 2001. P. 91–96.
27. Wakida-Kusunoki, Armando T., Ramon Ruiz-Carus, Enrique Amador-del-Angel. Amazon sailfin catfish, Pterygoplichthys pardalis (Castelnau, 1855) (Loricariidae), another exotic species established in southeastern Mexico // Southwestern Naturalist. 2007. V. 52 (1). P. 141–144.
28. Weber C. Révision du genre Pterygoplichthys sensu lato (Pisces, Siluriformes, Loricariidae) // Revue Française d’Aquariologie Herpétologie. 1992. V. 19. P. 1–36.
29. Welcomme R.L., Vidthayanom C. The impacts of introductions and stocking of exotic species in the Mekong Basin and policies for their control. MRC Technical Paper No. 9. Phnom Penh: Mekong River Commission, 2003. 38 p.
30. Winemiller K.O., Agostinho A.A., Caramaschi É.P. Fish Ecology in Tropical Streams // Tropical Stream Ecology. Edited by David Dudgeon Department of Ecology and Biodiversity The University of Hong Kong. Hong Kong SAR. China. 2008. P. 107–140.
31. Zworykin D.D., Budaev S.V. Non-indigenous armoured catfish in Vietnam: invasion and systematics // Ichthyol. Res. 2013. V. 60. P. 327–333.
