Журнал "Биология внутренних вод"
№ 4 за 2018 год
В. П. Семенченко 1, * , Т. П. Липинская 1 , М. Д. Мороз 1 , Е. А. Сысова 1 , Н. Н. Майсак 1
ВЛИЯНИЕ ПРИТОКОВ НА СОСТОЯНИЕ ЛИТОРАЛЬНЫХ СООБЩЕСТВ оз. НАРОЧЬ (РЕСПУБЛИКА БЕЛАРУСЬ)
1 Научно-практический центр НАН Беларуси по биоресурсам, 220072 Минск, Республика Беларусь
e-mail: semenchenko57@mail.ru
Проведена оценка воздействия водосборных ручьев (Урлики, Купа, Антонисберг, Черевки) и р. Скема, впадающих в оз. Нарочь, на его прибрежные сообщества (фито-, зоопланктон, макрозообентос). Реакция прибрежных сообществ на поступающие воды была весьма сходной. Численность зоопланктона коррелировала с таковой для фитопланктона. У макрозообентоса зарегистрировано увеличение численности на станциях, прилегающих к ручьям Купа и Урлики, в основном за счет олигохет, что возможно связано с выносом органического вещества водотоками. На основании данных по изменению структуры сообществ, величинам численности и биотическим индексам, сделан вывод о максимальном воздействии на прибрежные сообщества ручьев Купа и Урлики.
Ключевые слова: фито-, зоопланктон, макрозообентос, литоральная зона, оз. Нарочь.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андроникова И.Н. Структурно-функциональная организация зоопланктона озерных экосистем разных трофических типов. СПб.: Наука, 1996. 189 с.
2. Балушкина Е.В., Голубков С.М., Голубков М.С., Максимов А.А. Роль антропогенных факторов в динамике сообществ макрозообентоса // Экосистема эстуария реки Невы: биологическое разнообразие и экологические проблемы. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2008. С. 356–359.
3. Бурдова В.А., Стойко Т.Г., Асанов А.Ю. Структура зоопланктона водотоков в лесостепи Среднего Поволжья в осенний период // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2014. Т. 23. No 2. С. 33–39.
4. Жукова Т.В., Михеева Т.М., Адамович Б.В. и др. Бюллетень экологического состояния озер Нарочь, Мястро, Баторино. Минск: Белорус. гос. ун-т, 2016. 99 с.
5. Жукова Т.В., Михеева Т.М., Адамович Б.В. и др. Бюллетень экологического состояния озер Нарочь, Мястро, Баторино. Минск: Белорус. гос. ун-т, 2014. 108 с.
6. Залетаев В.С. Экотоны в биосфере. М.: Рос. акад. сельхоз. наук, 1997. 329 с.
7. Круглова А.Н. Зоопланктон некоторых малых водоемов Петрозаводска (Республика Карелия) // Тр. Карельск. науч. центра РАН. 2015. No 1. С. 69–77.
8. Куйбышевское водохранилище. Л.: Наука, 1983. 214 с.
9. Михеева Т.М., Свирид А.А., Лукьянова Е.В. Структура и количественное развитие фитопланктона водотоков Национального парка “Припятский” // Журн. Белорус. ун-та. Т.2, Химия, биол., географ. 2017. No 1. С. 77–85.
10. Семенченко В.П., Разлуцкий В.И. Экологическое качество поверхностных вод. Минск: Белорус. наука, 2011. 329 с.
11. Assessment and control nonpoint source pollution of aquatic ecosystems: a practical approach. N.Y.: Parthenon Publ. Group Ltd., 1999. 466 p.
12. Bianchi T. Biogeochemistry of estuaries. N.Y.: Oxford Univ. Press, 2007. 721 p.
13. Vermaat J.E., Bouwer L., R. Turner R.K., Salomons W. Managing European Coasts: Past, Present and Future. Berlin; Heidelberg: Springer-Verlag, 2005. 387 p.
С. И. Генкал 1, *, М. И. Ярушина 2
ВИДЫ РОДА Geissleria (Bacillariophyta) В РОССИИ: МОРФОЛОГИЯ, ТАКСОНОМИЯ, РАСПРОСТРАНЕНИЕ
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2 Институт экологии растений и животных УрО РАН, 620144 Екатеринбург, Россия
e-mail: genkal@ibiw.yaroslavl.ru
Изучены материалы по водоемам и водотокам Западной и Восточной Сибири, получены новые данные по морфологии отдельных представителей рода Geissleria, уточнена видовая принадлежность отдельных таксонов рода Geissleria, приведенных в литературе как “species”. В качестве дифференциальных признаков использовали число ареол в 10 мкм, и строение концевых структур. Находки отдельных представителей рода Geissleria (G. acceptata, G. declivis, G. decussis, G. mongolica, G. thingvallae) в исследованных водоемах России расширили представление об их ареалах. Описаны новые для науки виды: G. davydovae sp. nov., G. moiseevae sp. nov., G. bondarenkae sp. nov., G. gollerbakhii sp. nov.
Ключевые слова: Bacillariophyta, Geissleria, электронная микроскопия, морфология, таксономия, распространение, новые виды.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Балонов И.М. Подготовка водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–89.
2. Генкал С.И., Куликовский М.С., Стенина А.С. Изменчивость основных структурных элементов створки некоторых видов рода Navicula (Bacillariophyta) // Биология внутр. вод. 2007. No 2. С. 20–25.
3. Генкал С.И., Трифонова И.С. Материалы к флоре Bacillariophyta реки Нарвы и Нарвского водохранилища (Северо-Запад России). 2. Pennatophyceae // Бот. журн. 2007. Т. 92. No 11. С. 1652–1656.
4. Генкал C.И., Вехов Н.В. Диатомовые водоросли водоемов Русской Арктики: архипелаг Новая Земля и остров Вайгач. М.: Наука, 2007. 64 с.
5. Генкал С.И., Трифонова И.С. Диатомовые водоросли планктона Ладожского озера и водоемов его бассейна. Рыбинск: Дом печати, 2009. 72 с.
6. Генкал C.И., Бондаренко Н.А., Щур Л.А. Диатомовые водоросли озер юга и севера Восточной Сибири. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод РАН; Лимнол. ин-т СО РАН, 2011. 72 с.
7. Генкал С.И., Лепская Е.В. Флора диатомовых водорослей лососевых озер Карагаского нагорья Камчатки // Исследование водных биологических ресурсов Камчатки и Северо-Западной части Тихого океана. 2014. Вып. 35. С. 31–47.
8. Генкал С.И., Чекрыжева Т.А., Комулайнен С.Ф. Диатомовые водоросли водоемов и водотоков Карелии. М.: Науч. мир, 2015. 202 с.
9. Куликовский М.С., Глущенко А.М., Генкал С.И., Кузнецова И.В. Определитель диатомовых водорослей России. Ярославль: Филигрань, 2016. 804 с.
10. Лосева Э.И., Cтенина А.C., Марченко-Вагапова Т.И. Кадастр ископаемых и современных диатомовых водорослей Европейского Северо-Востока. Cыктывкар: Геопринт, 2004. 160 с.
11. Определитель пресноводных водорослей СССР. Вып. 4. Диатомовые водоросли. М.: Сов. наука, 1951. 619 с.
12. Трифонова И.С., Генкал С.И. Дополнение к флоре пеннатных диатомовых (Pennatophyceae) (Bacillariophyta) Невской губы Финского залива // Бот. журн. 2010. Т. 95. No 5. С. 682–688.
13. Харитонов В.Г., Генкал С.И. Диатомовые водоросли озера Эльгыгытгын и его окрестностей (Чукотка). Магадан: CВНЦ ДВО РАН, 2012. 402 с.
14. Харитонов В.Г. Диатомовые водоросли Колымы. Магадан: Кордис, 2014. 496 с.
15. Чудаев Д.А., Гололобова М.А. Диатомовые водоросли озера Глубокого (Московская область). М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. 447 с.
16. Antoniades D., Hamilton P.B., Douglas M.S.V., Smol J.P. Annotated Diatom Micrographs. V. 17: Diatoms of North America // Iconographia Diatomologica. 2008. V. 17. P. 1–649.
17. Genkal S.I., Yarushina M.I. A study of Bacillariophyta flora is water bodies and water courses of the Messoyakha River (Gydansky Pehiusula) // Contemporary Problems of Ecology. 2014. V. 7. No 5. P. 551–557.
18. Hofmann G., Werum M., Lange-Bertalot H. Diatomeen im Süßwasser-Benthos von Mitteleuropa. Ruggell: ARG Gantner Verlag, 2011. 908 S.
19. Karayeva N.I., Genkal S.I. The diatoms of the genus Navicula Bory (Bacillariophyta) in the Volga river // Limnologica. 1993. 23(4). P. 309–321.
20. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. 1. Teil: Naviculaceae. Süßwasserflora von Mitteleuropa. Jena: VEB Gustav Fischer Verlag, 1986. Bd 2/1. 876 S.
21. Kulikovskiy M.S., Lange-Bertalot H., Metzeltin D., Witkowski A. Lake Baikal: Hotspot of Endemic Diatoms I // Iconographia Diatomologica. 2012. V. 23. P. 7–609.
22. Lange-Bertalot H., Metzeltin D. Indicators of oligotrophy // Iconographia Diatomologica. 1996. Bd 2. P. 1–390.
23. Lange-Bertalot H., Külbst K., Lauser T. et al. Diatom taxa introduced by Georg Krasske. Documentation and Revision // Iconographia Diatomologica. 1996. V. 3. P. 1–358.
24. Lange-Bertalot H., Genkal S.I. Diatoms from Siberia I // Iconographia Diatomologica. 1999. V. 6. P. 7–265.
25. Lange-Bertalot H. Navicula sensu stricto, 10 genera separated from Navicula sensu lato. Frustulia. Diatoms of Europe. Ruggell: A.R.G. Gantner Verlag K.G., 2001. V. 2. P. 526.
26. Metzeltin D., Lange-Bertalot H., Nergui S. Diatoms in Mongolia // Iconographia Diatomologica. 2009. V. 20. P. 1–684.
27. Novais M.H., Wetzel C.E., Van De Vijver B. et al. New species and combinations in the genus Geissleria (Bacillariophyceae) // Cryptogamie, Algologie. 2013. V. 34 (2). P. 117–148.
28. Patrick R., Reimer Ch. W. The diatoms of the United States exclusive of Alaska and Hawaii. Entomoneidaceae, Cymbellaceae, Gomphonemaceae, Epithemiaceae // Monogr. Acad. Nat. Sci. Philadelphia. 1966. V. 1. No 13. 688 p.
29. Zimmermann C., Poulin M., Pienitz R. Diatoms of North America. The Pliocene-Pleistocene freshwater flora of Bylot Island, Nunavut, Canadian High Arctic // Iconographia Diatomologica. 2010. V. 21. P. 1–407.
В. Г. Гагарин 1 , Т. В. Наумова 2, *
НОВЫЕ ДЛЯ НАУКИ ВИДЫ СВОБОДНОЖИВУЩИХ НЕМАТОД (NEMATODA) ИЗ оз. БАЙКАЛ И ВОДОЕМОВ ДАЛЬНЕГО ВОСТОКА РОССИИ
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2 Лимнологический институт СО РАН, 664033 Иркутск, Россия
e-mail: tvnaum@lin.irk.ru
Описаны два новых для науки вида: Eumonhystera arenosa sp. n. и Tripyla alekseevi sp. n., обнаруженных в интерстициали заплесковой зоны оз. Байкал. Eumonhystera arenosa sp. n. морфологически близка к E. filiformis (Bastian, 1865) Andrássy, 1981, но имеет более длинное тело, бульбусовидное расширение фаринкса, более короткие внешние губные щетинки, иное соотношение длины хвоста к длине тела, иное расстояние от вульвы до ануса, более длинные спикулы. Tripyla affinis de Man, 1880, обнаруженная в водоемах Дальнего Востока, отнесена к новому виду T. alekseevi sp. n., так как выявлены различия между этими двумя близкими видами. Tripyla alekseevi sp. n. отличается от T. affinis de Man, 1880 более длинными внешними губными сенсиллами, более узкой областью губ, меньшим числом супплементарных органов у самцов и более длинным рульком. Приведен ключ для определения пяти валидных видов рода Tripyla, обитающих в оз. Байкал.
Ключевые слова: заплесковая зона, оз. Байкал, новые виды, свободноживущие нематоды, Eumonhystera arenosa sp. n., Tripyla alekseevi sp. n.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алексеев В.М. Водные нематоды рода Tripyla из Приморья и вопросы филогении Tripylidae (Nematoda, Enoplida) // Фауна, биология и систематика свободноживущих низших червей. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1991. С. 129–143.
2. Гагарин В.Г. Свободноживущие нематоды пресных вод России и сопредельных стран (отряды Monhysterida, Araeolaimida, Chromadorida, Enoplida, Mononchida). СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 352 с.
3. Гагарин В.Г., Наумова Т.В. Редкие и малоизученные виды нематод Kurikania sibirica Tsalolichin, 1976 и Tripyla dybowskii Tsalolichin, 1976 (Nematoda, Triplonchida) из абиссали озера Байкал // Зоол. журн. 2013. Т. 92. No 2. С. 177–183.
4. Цалолихин С.Я. Нематоды семейства Tobrilidae и Tripylidae мировой фауны. Л.: Наука, 1976. 232 с.
5. Шевелева Н.Г., Провиз В.И., Лухнев А.Г. и др. Биология прибрежной зоны озера Байкал. Сообщение 4. Таксономическое разнообразие бентосной фауны заплесковой зоны озера Байкал в районе мыс Березовый–бухта Бол. Коты // Изв. ИГУ. Серия Биология. Экология. 2013. Т. 6. No 2. С. 132–143.
6. Шошин А.В., Цалолихин С.Я. Свободноживущие нематоды (Nemathelmintes: Nematoda). Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Т. I: Озеро Байкал. Кн. 1. Новосибирск: Наука, 2001. С. 305–320.
7. Andrássy I. Revision of the order Monhysterida (Nematoda) inhabiting soil and inland waters // Opusc. Zool. Budapest. 1981. V. 17–18. P. 13–47.
8. Andrássy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). Budapest: Hungar. Acad. Sci., 2005. V. 1. 609 p.
9. Bastian H.C. On the Anatomy and Physiology of the Nematoids, Parasitic and Free; with Observations on Their Zoological Position and Affinities to the Echinoderms // Phil. Trans. 1865. V. 156. P. 545–638.
10. Brzeski M. Revision der Gattungen Tripyla Bastian und Paratripyla gen.n. (Nematoda, Tripylidae) // Ann. Zool. 1964. V. 22. No 7. P. 157–178.
11. Brzeski M., Winiszewska-Slipinska G. Taxonomy of Tripylidae (Nematoda: Enoplida) // Nematologia. 1993. V. 39. P. 12–52.
12. Coomans A., Abebe E. Order Monhysterida. Freshwater nematodes: ecology and taxonomy. L.; UK: CABI Publ., 2006. P. 574–603.
13. Gagarin V.G., Naumova T.V. Free-Living Nematodes (Nematoda) Fauna from the Interstitial of the Lake Baikal Splash Zone // Inland Water Biol. 2012. V. 5. No 3. P. 229–235. doi 10.1134/S1995082912030030
14. Gagarin V.G., Naumova T.V. Two new species of Theristus Bastian, 1865 (Nematoda: Xyalidae) from interstitial zone of Lake Baikal, Siberia, Russia // Nematology. 2012. V. 14. No 4. P. 499–508.
15. Gagarin V.G., Naumova T.V. Ethmolaimus riparius sp. n. and Paramononchus major sp. n. from Lake Baikal, Russia // Zootaxa. 2016. No 4098 (3). P. 582–592.
16. Gerlach S.A., Riemann F. The Bremerhaven checklist of aquatic nematodes. A Catalogue of Nematoda Adenophorea excluding the Dorylaimida. Part 2 // Veröff. Inst. Meerrsforsch. Bremerhaven. 1974. Suppl. 4. P. 405–734.
17. Man de J.G. Die einhelmischen, frei in der reinen Erde und im Süssen Wasser lebende Nematoden monographisch bearbeitet, Yorläufiger Bericht und descriptivesystematischer Theeil // Tijdschr. Ned. Deirk. Vereen. 1880. Bd 5. P. 1–104.
18. Stefanski W. Les Nematodes libres des lacs des Tatra Polonaises, leur distribution et systématique // Arch. Hydrobiol. 1938. Bd 33. P. 585–687.
19. Zullini A. Order Triplonchida. Freshwater nematodes: ecology and taxonomy. L.; UK: CABI Publ., 2006. P. 293–325.
Е. И. Кукуев 1 , А. М. Орлов 2, 3, 4, 5, 6, *
НОВЫЙ ПОДВИД ФИНТЫ – БАЛТИЙСКАЯ ФИНТА Alosa fallax balticus (Clupeidae)
1 Атлантический научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, 236000 Калининград, Россия
2 Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, 107140 Москва, Россия
3 Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Россия
4 Дагестанский государственный университет, 367000 Махачкала, Россия
5 Томский государственный университет, 634050 Томск, Россия
6 Прикаспийский институт биологических ресурсов Дагестанского научного центра РАН, 367023 Махачкала, Россия
e-mail: orlov@vniro.ru
Проведен сравнительный анализ морфологических особенностей финты Alosa fallax на основе собственных данных из Куршского залива Балтийского моря (2008 и 2009 гг.) и сравнительных материалов из российских и европейских естественнонаучных музеев с привлечением литературных данных. Результаты позволяют присвоить балтийской популяции финты подвидовой статус Alosa fallax balticus subsp. nov. Балтийский подвид отличается от других подвидов атлантической финты A. fallax меньшим числом жаберных тычинок (в среднем 36.7) и позвонков (53.6), а также бóльшим антедорсальным расстоянием (46.2% SL, или 41.6–42.7% TL). Для A. fallax balticus характерно одно из самых низких значений числа жаберных тычинок на первой жаберной дуге среди подвидов вида Alosa fallax Северо-восточной Атлантики и морей ее бассейна.
Ключевые слова: балтийская финта Alosa fallax balticus subsp. nov., новый подвид, морфология, описание, Куршский залив, Балтийское море.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Берг Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.; Л.: АН СССР, 1948. 466 с.
2. Вилер А. Определитель рыб морских и пресных вод Северо-Европейского бассейна. М.: Легк. и пищ. пром-cть, 1983. 430 с.
3. Голубкова Т.А., Шульга А.Д., Карпушевская Е.М. Современное состояние нерестового запаса атлантической финты (Alosa fallax fallax Lacépède, 1803) в Куршском заливе Балтийского моря // Промыслово-биологические исследования АтлантНИРО в 2006–2007 годах: Сб. науч. тр. Калининград: АтлантНИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2009. С. 106–113.
4. Красная книга Российской Федерации. Животные. М.: Астрель, 2001. 908 с.
5. Кукуев Е.И. Парадоксальная сельдь финта // Балтийский рыболов. 2008. No 6. С. 22–24.
6. Кукуев E.И. Ихтиологические очерки о рыбах известных и малоизвестных. Калининград: АтлантНИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2014. 172 с.
7. Кукуев Е.И. Видовой состав и зоогеографическая структура морской ихтиофауны Балтийского моря // Промыслово-биологические исследования АтлантНИРО в 2010–2013 гг. Т. 1: Балтийское море и заливы. Калининград: АтлантНИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2014. С. 19–28.
8. Кукуев Е.И., Суховершин В.В., Гущин А.В., Сухорукова В.С. Некоторые морфологические характеристики финты (Alosa fallax) Южной Балтики // Промыслово-биологические исследования АтлантНИРО в 2006–2007 годах: Сб. науч. тр. Калининград: АтлантНИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2009. С. 99–106.
9. Кухоренко К.Г., Тылик К.В. Рыбы Балтики и заливов (Калининградский регион). Калининград: Терра-Балтика, 2013. 151 с.
10. Манюкас И. Биология атлантической финты (Alosa fallax fallax) в Куршском заливе // Вопр. ихтиологии. 1989. Т. 29. No 5. С. 866–869.
11. Межжерин С.В., Федоренко Л.В., Верлатый Д.Б. Дифференциация и аллозимная изменчивость пузанковых сельдей рода Alosa (Clupeiformes, Alosinae) Азово-Черноморского бассейна // Цитогогия и генетика. 2009. No 2. С. 54–60.
12. Митенкова Л.В. Исследования митохондриальной ДНК финты Alosa fallax Балтийского и Северного морей // Комплексные исследования водных биологических ресурсов и среды их обитания: Матер. Второй науч. шк. молодых ученых и специалистов по рыбному хозяйству и экологии с международным участием, посвященной 100-летию со дня рождения И.Б. Бирмана. М.: Изд-во Вcерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2015. С. 44.
13. Парин Н.В., Евсеенко С.А., Васильева Е.Д. Рыбы морей России. Аннотированный каталог. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 733 с.
14. Световидов А.Н. Сельдевые (Clupeidae) // Фауна СССР. Рыбы. Л.: АН СССР, 1952. 331 с.
15. Световидов А.Н. Рыбы Черного моря. Л.: АН СССР, 1964. 50 с.
16. Тылик К.В. Ихтиофауна Калиниградской области. Калининград: Изд-во Калинингр. гос. тех. ун-та, 2003. 128 с.
17. Тылик К.В. Рыбы трансграничных водоемов России и Литвы. Калининград: Изд-во Калинингр. гос. тех. ун-та, 2007. 128 с.
18. Хлебович В.В. Критическая соленость биологических процессов. Л.: Наука, 1974. 235 с.
19. Aprahamian M.W., Aprahamian C.D., Baglinière J.L. et al. Alosa alosa and Alosa fallax spp. Literature review and bibliography. R&D Technical Report W1-014/TR. Bristol: Environment Agency et al., 2003. 374 p.
20. Alexandrino P., Faria R., Linhares D. et al. Interspecific differentiation and intraspecific substructure in two closely related clupeids with extensive hybridization, Alosa alosa and Alosa fallax // J. Fish Biol. 2006. V. 69. Suppl. B. P. 242–259.
21. Bianco P.G. The status of the Twaite shad, Alosa agone, Italy and the western Balkans // P.S.Z.N. Ecol. 2002. V. 23. Suppl. 1. P. 51–64.
22. Bianco P.G. An update on the status of native and exotic freshwater fishes of Italy // J. Appl. Ichthyol. 2014. V. 30. No 1. P. 62–77.
23. Bobori D.C., Koutrakis E.T., Economidis P.S. Shad species in Greek waters – an historical overview and present status // Bull. Fr. Pêche Piscic. 2001. V. 362/363. P. 1101–1108.
24. Convention on the Conservation of European Wildlife and Natural Heritage. Bern: Council of Europe, 1979. 10 p.
25. Cuvier G., Valenciennes A. Histoire naturelle des poissons. Tome quatrième. Livre quatrième. Des acanthoptérygiens à joue cuirassée. Bertrand; Paris: Hist. Nat. Poiss., 1829. i–xxvi + 518 p. + Pls. 72–99.
26. Ehrenbaum E. Mitteilungen über die Lebensverhältnisse unserer Fische. 17. Die Maifischarten. Der Fischerbote 17 und 18. 1921. S. 681–726 und 726–731.
27. Ehrenbaum E. Naturgeschichte und wirtschaftliche Bedeutung der Seefische Nordeuropas. Stuttgart: Schweitzerbart, 1936. 337 s.
28. Faria R., Weiss S., Alexandrino P. Comparative phylogeography and demographic history of European shads (Alosa alosa and A. fallax) inferred from mitochondrial DNA // BMC Evol. Biol. 2012. V. 12. Paper ID 194. 20 p. doi 10.1186/1471-2148-12-194
29. Fatio V. Faune des Vertébrés de la Suisse – Histoire naturelle des Poissons. Deuxième partie. Physostomes (suite et fin), Anacanthiens, Chondrostéens, Cyclostomes. Genève et Bâle: H. Georg, 1890. 576 p.
30. Fishes of Estonia. Tallinn: Estonian Acad. Publ., 2003. 416 p.
31. Freyhof J., Kottelat M. Alosa fallax. The IUCN Red List of Threatened Species. 2008: e.T904A13092303. http://dx.doi.org/. Downloaded on 19 January 2016. doi 10.2305/IUCN.UK.2008.RLTS.T904A13092303.en
32. Froese R., Pauly D. FishBase. World Wide Web Electronic Publication, 2016. www.fishbase.org, version (01/2016).
33. Georffroy Saint-Hilaire E. Poissons du Nil // Description de l’Egypte ou recueil des observations et des recherches qui ont été faites en Egypte pendant l’expédition de l’armé française. 1, Poissons. Paris: Panckoucke, 1808. P. 1–17.
34. Kottelat M. European freshwater fishes // Biologia. 1997. V. 52. P. 1–271.
35. Kottelat M., Freyhof J. Handbook of European freshwater fishes. Berlin: Publications Kottelat, Cornol and Freyhof, 2007. 646 p.
35. King J., Roche W.R. Aspects of anadromous Allis shad (Alosa alosa Linnaeus) and Twaite shad (Alosa fallax Lacépède) biology in four Irish Special Areas of Conservation (SACs): status, spawning indications and implications for conservation designation // Fish and Diadromy in Europe // Hydrobiologia. 2008. V. 602. P. 145–154.
37. Maksimov Y. The “revival” of the Twaite shad (Alosa fallax, Lacépède, 1803) population in the Curonian Lagoon // Bull. Sea Fish. Inst. 2004. No 1(161). P. 61–62.
38. Moog D.N. Populations genetische Differenzierung der Baltischen Finte (Alosa fallax, Lacépède, 1803) mit mitochondrialen und nukleären Markern. Masterarbeit im Master-Studiengang Diversität & Evolution. Rostok: Universität Rostok, 2014. 60 S.
39. Lacépède B.G.E. Histoire naturelle des poisons. Paris: Plassan, 1803. V. 5. 803 p. + 21 pls.
40. Regan C.T. The British fishes of the subfamily Clupeinae and the related species in other seas // Ann. Mag. Nat. Hist., Ser. 8. 1916. V. 18. P. 1–19.
41. Roule L. Les aloses des eaux douces de la France // Bull. Soc. Zool. France. 1924. V. 49. P. 265–266.
42. Rakaj N., Crivelli A.J. Occurrence of Agone Alosa agone in Lake Shkodra, Albania in sympatry with Twaite shad Alosa fallax nilotica // Bull. Fr. Pêche Pisc. 2001. V. 362/363. P. 1067–1073.
43. Sabatie R., Bagliniere J.L., Boisneau P. Shad of the Northeastern Atlantic and the Western Mediterranean: biology, ecology, and harvesting // Fisheries and Aquaculture. V. III. Paris: UNESCO-EOLSS, 2009. P. 93–118.
44. Smith F.A. A history of Scandinavian fishes. Pt. II. Stockholm: Norstedt & Sons, 1895. P. 567–1240.
45. Svetovidov A.N. Clupeidae // Check-list of the Fishes of the North-Eastern Atlantic and the Mediterranean (CLOFNAM). V. 1. Paris: UNESCO, 1973. P. 99–109.
46. Plikas M., Aleksejevs E. Latvias daba. Riga: Zivis, 1998. 304 p.
47. Thiel R., Riel P., Neumann R. et al. Return of twaite shad Alosa fallax (Lacépède, 1803) to the Southern Baltic Sea and the transitional area between the Baltic and North Seas // Fish and Diadromy in Europe // Hydrobiologia. 2008. V. 602. P. 161–177.
48. Whitehead P.J.P., Bauchot M.-L., Hureau J.-C. et al. Fishes of the North-eastern Atlantic and the Mediterranean. Paris: UNESCO, 1984. V. 1. 510 p.
49. Whitehead P.J.P. Clupeoid fishes of the world (suborder Clupeoidei) // FAO Species Catalogue. V. 7. Pt. 1. FAO Fisheries Synopsis No. 125. Rome: FAO, 1985. 303 p.
С. А. Поддубный 1, *, Е. В. Чемерис 1, А. А. Бобров 1
ВЛИЯНИЕ РЕЖИМА УРОВНЯ ВОДЫ НА ЗАРАСТАНИЕ МЕЛКОВОДИЙ РЫБИНСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА (ОБЗОР)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
e-mail: spod@ibiw.yaroslavl.ru
Рассмотрена многолетняя и сезонная динамика уровня воды в Рыбинском водохранилище с 1947 по 2015 гг. Получены зависимости площади зарастания мелководий (S) от колебаний уровня воды (Z): S = 30 ‒45 e 1.054Z . Зарастание открытых мелководий сдерживается гидродинамическим воздействием на литораль, защищенных – пересыханием местообитаний водных растений в конце вегетационного периода. Рассчитанные теоретические максимальные и оптимальные площади зарастания составляют для разных экологических групп от 10 до 100% всех доступных площадей мелководий. Резервные площади возможного распространения растений в будущем – от 40 до >90%. Показано, что в связи с резкими многолетними и ежегодными колебаниями уровня воды реальные площади, занятые высшей водной растительностью, всегда значительно меньше расчетных оптимальных и максимальных. При существующем режиме регулирования водохранилища зарастание будет поддерживаться на современном уровне длительное время.
Ключевые слова: динамика уровня воды, высшая водная растительность, площади и степень зарастания, мелководья, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас единой глубоководной системы Европейской части РФ. Т. 2. СПб.: ГБУ “Волго-Балт”, 2005. 115 с.
2. Атлас единой глубоководной системы Европейской части РФ. Т. 5. СПб.: Росречфлот, 2004. 113 с.
3. Белавская А.П., Кутова Т.Н. Растительность зоны временного затопления Рыбинского водохранилища // Растительность волжских водохранилищ. М.; Л.: Наука, 1966. С. 162–189.
4. Богачев В.К. О развитии водной растительности в Рыбинском водохранилище // Тр. биол. ст. “Борок”. М.; Л.: Наука, 1950. Вып. 1. С. 302–316.
5. Богачев В.К. Формирование водной растительности Рыбинского водохранилища // Уч. зап. Ярослав. пед. ин-та. Вып. 14 (24). Естествознание. Ярославль, 1952. С. 5–106.
6. Буторин Н.В., Зиминова Н.А., Курдин В.П. Донные отложения Верхневолжских водохранилищ. Л.: Наука, 1975. 156 с.
7. Буторин Н.В., Успенский С.М. Значение мелководий в биологической продуктивности водохранилищ // Биологические ресурсы водохранилищ. М.: Наука, 1984. С. 23–41.
8. Довбня И.В. Продукция высшей растительности волжских водохранилищ // Пресноводные гидробионты и их биология. Л.: Наука, 1983. С. 71–84.
9. Довбня И.В., Экзерцев В.А. Продукция растительности мелководий Иваньковского водохранилища и ее изменения в последнее десятилетие // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л.: Наука, 1979. No 41. С. 35–39.
10. Закиров А.Г., Фролова Л.Л. Моделирования влияния мелководий на процессы самоочищения водоемов // Уч. зап. Казан. ун-та. Сер. Естественные науки. 2005. Т. 147. Кн. 2. С. 70–79.
11. Законнов В.В. Пространственно-временная неоднородность распределения и накопления донных отложений верхневолжских водохранилищ // Вод. ресурсы. 1995. Т. 22. No 3. С. 362−371.
12. Законнов В.В., Поддубный С.А. Изменение структуры донных отложений в Рыбинском водохранилище // Вод. ресурсы. 2002. Т. 29. No 2. С. 200–209.
13. Корелякова И.Л. Растительность Кременчугского водохранилища. Киев: Наук. думка, 1977. 197 с.
14. Кутова Т.Н. Формирование водной и прибрежной растительности на Рыбинском водохранилище // Рыбинское водохранилище изменение природы побережий водохранилища. М.: МОИП, 1953. Ч. 1. С. 51–82.
15. Кутова Т.Н. Экологическая характеристика растений зоны временного затопления Рыбинского водохранилища // Тр. Дарвинского гос. заповедника. 1957. Вып. IV. С. 403–466.
16. Литвинов А.С., Рощупко В.Ф. Многолетние и сезонные колебания уровня Рыбинского водохранилища и их роль в функционировании его экосистемы // Вод. ресурсы. 2007. Т. 34. No 1. С. 33–40.
17. Ляшенко Г.Ф. Растительность Рыбинского водохранилища // Бот. журн. 1997. Т. 82. No 11. С. 57–64.
18. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Экзерцев В.А. Гидробиологический режим мелководий и их значение для продуктивности волжских водохранилищ // Вопросы комплексного использования водохранилищ. Киев: Наук. думка, 1971. С. 57–58.
19. Папченков В.Г. Растительный покров водоемов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБиНТ, 2001. 213 с.
20. Папченков В.Г. Динамика разнообразия растительного покрова волжских водохранилищ // Динамика разнообразия гидробионтов во внутренних водоемах России. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. тех. ун-та, 2002. С. 59–78.
21. Папченков В.Г. Растительный покров залива и подпорных участков рек Юхоть и Улейма // Ярослав. пед. вестн. Сер. Естеств. науки. 2011. No 1. С. 119–127.
22. Поддубный С.А. Защищенные мелководья верхневолжских водохранилищ и их экологическое значение // Вода: химия и экология. 2013. No 11. С. 25–40.
23. Поддубный С.А. Современное состояние и экологическое значение уровня воды в верхневолжских водохранилищах // Вода: химия и экология. 2012. No 12. С. 9–15.
24. Поддубный С.А., Сухова Э.В. Моделирование влияния гидродинамических и антропогенных факторов на распределение гидробионтов в водохранилищах: Руководство для пользователей. Рыбинск: Дом печати, 2002. 120 с.
25. Роль волнения в формировании биоценозов бентоса больших озер. Л.: Наука, 1990. 114 с.
26. Рыбинское водохранилище и его жизнь. Л.: Наука, 1972. 360 с.
27. Салтанкин В.П. Рыбинское водохранилище // Вода России. Научно-популярная энциклопедия. http://water-rf.ru/Водные_объекты/780/Рыбинское_водохранилище. Дата обращения 27.06.2017.
28. Эдельштейн К.К. Гидрология озер и водохранилищ. Учебник для вузов. М.: Изд-во Перо, 2014. 399 с.
29. Экзерцев В.А. Зарастание мелководий Горьковского водохранилища // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л.: Наука, 1972. No 14. С. 28–32.
30. Экзерцев В.А., Лисицына Л.И. Изучение растительных ресурсов водохранилищ волжского каскада // Биологические ресурсы водохранилищ. М.: Наука, 1984. С. 89–99.
31. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. техн. ун-та, 2001. 427 с.
32. Papchenkov V.G. The degree of overgrowth of the Rybinsk Reservoir and productivity of its vegetation cover // Inland Water Biology. 2013. V. 6. No 1. P. 18–25. doi 10.1134/S1995082912030108
33. Poddubnyi S.A., Papchenkov V.G., Chemeris E.V., Bobrov A.A. Overgrowing of protected shallow waters in the Upper Volga Reservoirs in relation to their morphometry // Inland Water Biology. 2017. V. 10. No. 1. P. 64–72. doi 10.1134/S199508291701014X
В. А. Сенкевич 1, *, Т. Г. Стойко 1 , А. Н. Цыганов 1
ВИДОВОЙ СОСТАВ И СТРУКТУРА ЗООПЛАНКТОННЫХ СООБЩЕСТВ МАЛЫХ РЕК ЛЕСОСТЕПНОЙ ЗОНЫ
1 Пензенский государственный университет, 440026 Пенза, Россия
e-mail: viktoriya0606@mail.ru
В девяти малых реках Пензенской обл. обнаружено 157 видов и подвидов планктонных беспозвоночных, 24 таксона впервые отмечены на территории области, один – Поволжья. По численности и количеству видов преобладали коловратки. Весенние сообщества отличались от летних преобладанием эвритермного вида Synchaeta oblonga Ehrenberg, летние были более разнообразны в связи с высокой гетерогенностью условий среды.
Ключевые слова: зоопланктон, малые реки, Приволжская возвышенность, Пензенская область.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андроникова И.Н. Структурно-функциональная организация зоопланктона озерных экосистем разных трофических типов. СПб.: Наука, 1996. 189 с.
2. Бурдова В.А., Стойко Т.Г. Зоопланктон рек Пензенской области // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана. Ярославль: Филигрань, 2014. Т. 2. С. 57–60.
3. Бурдова В.А., Стойко Т.Г., Асанов А.Ю. Структура зоопланктона водотоков в лесостепи Среднего Поволжья в осенний период // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2014. Т. 23. No 2. С. 33–39.
4. Герасимов Ю.Л., Мухортова О.В. Уточнение ареалов некоторых видов коловраток // Теоретические проблемы эволюции и экологии. Теория ареалов: виды, сообщества, экосистемы (V Любищевские чтения). Тольятти: Кассандра, 2010. С. 31–34.
5. Двинских С.А., Китаев А.Б. Экологическое состояние малых рек города Перми // Геогр. вестн. Гидрология. 2011. No 2(17). С. 1–12.
6. Жигульский В.А., Шуйский В.Ф., Щащаев Ю.А. и др. Реакция речного макрозообентоса на многофакторное антропогенное воздействие (на примере Ленинградской области) // Изв. Калинингр. гос. техн. ун-та. 2011. No 22. С. 150–158.
7. Жулдыбина Т.В. Гидрохимический режим водотоков Читинской области // География и природ. ресурсы. 2010. No 1. С. 99–102.
8. Ильин М.Ю., Шурганова Г.В., Кудрин И.А. Видовая структура зоопланктона малых рек ГПБЗ “Керженский” Нижегородской области // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана. Ярославль: Филигрань, 2014. Т. 2. С. 168–172.
9. Кононова О.Н. Коловратки среднего течения р. Вычегда // Коловратки (таксономия, биология и экология). Борок: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 2005. С. 79–87.
10. Крылов А.В. Зоопланктон равнинных малых рек. М.: Наука, 2005. 263 с.
11. Куликова Т.П. Зоопланктон водных объектов бассейна Онежского озера. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2007. 223 с.
12. Курицын И.И., Марденский Н.А. География Пензенской области. Саратов: Приволжск. кн. изд-во, 1991. 96 с.
13. Кутикова Л.А. Коловратки фауны СССР. Л.: Наука, 1970. 744 с.
14. Лобачев А.Л., Степанова Р.Ф., Лобачева И.В. Анализ неорганических загрязнителей питьевых и природных вод: Уч. пособие. Самара: Самарск. ун-т, 2006. 44 с.
15. Лобуничева Е.В. Зоопланктон реки Куность (Вологодская область) // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана. Ярославль: Ярослав. печат. двор, 2008. С. 191–193.
16. Макеев И.С., Шурганова Г.В. Коловратки водоемов г. Н. Новгорода // Коловратки (таксономия, биология и экология). Борок: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 2005. С. 200–209.
17. Методы биологического анализа пресных вод. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1976. 168 с.
18. Милованова Г.Ф. Экологический мониторинг зоопланктона р. Суры и Сурского водохранилища: Дис. ... канд. биол. наук. М., 2000. 189 с.
19. Митрофанова Е.А., Стойко Т.Г. Оценка состояния малых рек в верховьях Суры по структурным параметрам зоопланктонных сообществ // XXI век: итоги прошлого и проблемы настоящего плюс. 2014. No 5(21). С. 48–55.
20. Мухортова О.В. Сообщества зоопланктона пелагиали и зарослей высших водных растений разнотипных водоемов Средней и Нижней Волги: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Тольятти, 2008. 24 с.
21. Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. Зоопланктон. М.; СПб.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. Т. 1. 495 с.
22. Природа Пензенской области. Пенза: Пенз. кн. изд-во, 1955. 462 с.
23. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. 139 с.
24. Садчиков А.П., Кудряшов М.А. Экология прибрежно-водной растительности (уч. пособие для вузов). М.: Изд-во НИА-Природа, РЭФИА, 2004. 220 с.
25. Сенкевич В.А., Стойко Т.Г. Обнаружение коловратки Aspelta angusta (Ploimida, Dicranophoridae) в бассейне р. Суры (Среднее Поволжье) // Зоол. журн. 2016. Т. 95. No 12. С. 1396–1398.
26. Стойко Т.Г., Мазей Ю.А. Фаунистический обзор организмов зоопланктона Пензенских водных экосистем // Пензенское краеведение: опыт, перспективы развития. Пенза: Пенз. гос. пед. ун-т, 2005. Т. 2. С. 77–85.
27. Стойкова Е.Е., Медянцева Э.П., Евтюгин Г.А. Гидрохимический анализ. Казань: Казан. (Приволжск.) фед. ун-т, 2010. 49 с.
28. Экологическое состояние малых рек Верхнего Поволжья. М.: Наука, 2003. 389 с.
29. Legendre P., Gallagher E.D. Ecologically meaningful transformations for ordination of species data // Oecologia. 2001. V. 129. P. 271–280.
Н. В. Шадрин 1, *, Е. В. Ануфриева 1
ИНТЕГРАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ ИЗМЕНЧИВОСТИ Arctodiaptomus salinus (Daday, 1885) (Copepoda, Diaptomidae) И ВОЗМОЖНОСТИ ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ДЛЯ ОЦЕНКИ СОСТОЯНИЯ ПОПУЛЯЦИЙ
1 Институт морских биологических исследований им. А.О. Ковалевского РАН, 299011 Севастополь, Россия
e-mail: snickolai@yandex.ru
Изучена внутрипопуляционная морфометрическая изменчивость Arctodiaptomus salinus (Daday, 1885) в водоемах Средиземноморско-Черноморского региона, показано влияние на нее температуры, солености и плотности популяции. Рассчитаны интегральные характеристики изменчивости и связности морфометрических параметров. Обсуждена возможность их использования в диагностике состояния популяций планктонных ракообразных.
Ключевые слова: Copepoda, зоопланктон, связность признаков, дестабилизация популяций, морфометрическая изменчивость.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алтухов Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М.: Академкнига, 2003. 431 с.
2. Андреева С.И., Андреев Н.И. Эволюционные преобразования двустворчатых моллюсков Аральского моря в условиях экологического кризиса. Омск: Изд-во Омск. гос. пед. ун-та, 2003. 382 с.
3. Астауров Б.Л. Исследование наследственных нарушений билатеральной симметрии в связи с изменчивостью одинаковых структур в пределах организма // Наследственность и развитие. М.: Наука, 1974. С. 54–109.
4. Букварева Е.Н., Алещенко, Г.М. Принцип оптимального разнообразия биосистем // Успехи соврем. биологии. 2005. Т. 125. Вып. 4. С. 337–348.
5. Гершензон С.М. “Мобилизационный резерв” внутривидовой изменчивости // Журн. общ. биологии. 1941. Т. 2. Вып. 1. С. 85–107.
6. Драпун И.Е. Изменчивость длины раковины взрослых особей массовых видов пелагических остракод Южной Атлантики // Биол. моря. 2002. Вып. 62. С. 46–51.
7. Егоркина Г.И., Царева Г.А., Бендер Ю.А. Корреляционные связи морфометрических признаков артемии из озера Большое Яровое // Вестн. Алтайск. гос. аграр. ун-та. 2009. No 6. С. 39–42.
8. Зеликман А.Л., Гейнрих А.К. К вопросу влияния плотности популяции на смертность и развитие ее компонентов у циклопов Eucyclops serrulatus (Copepoda, Cyclopoida) // Бюл. Моск. об-ва испыт. природы. Отд. биол. 1959. Т. 64. Вып. 4. С. 125–140.
9. Истомин А.В. Половой диморфизм скоррелированности развития морфологических признаков // Вестн. Псков. гос. ун-та. Сер. естеств. и физ.-мат. науки. 2009. Вып. 8. С. 18–23.
10. Ковалев А.В. Изменчивость некоторых планктонных Copepoda (Crustacea) в морях средиземноморского бассейна // Биол. моря. 1969. Вып. 17. С. 144–197.
11. Лайус Д.Л., Грэм Д.Х., Католикова М.В., Юрцева А.О. Флуктуирующая асимметрия и случайная фенотипическая изменчивость в популяционных исследованиях: история, достижения, проблемы, перспективы // Вестн. С.-Петербург. ун-та. 2009. Сер. 3. Вып. 3. С. 98–110.
12. Михайловский Г.Е. Описание и оценка состояний планктонных сообществ. М.: Наука, 1988. 214 с.
13. Раузер-Черноусова Д.М. Геологическое обследование Соленого озера в Круглой бухте близ Севастополя // Изв. АН СССР. Отд. физ.-мат. наук. 1928. Вып. 3. С. 273–298.
14. Сапунов В.Б. Адаптация к перемене экологических условий и фенотипическая изменчивость тлей // Журн. общ. биологии. 1983. Т. 44. No 4. С. 557–567.
15. Шадрин Н.В. Исчерпал ли себя балансово-энергетический подход в гидробиологии: возможности и ограничения // Мор. экол. журн. 2011. Т. 10. No 1. С. 98–103.
16. Шадрин Н.В. Динамика экосистем и эволюция: множественность устойчивых состояний и точки опрокидывания/невозврата. Необходимость нового понимания // Мор. экол. журн. 2012. Т. 11. No 2. С. 85–95.
17. Шакин В.В. Биосистемы в экстремальных условиях // Журн. общ. биологии. 1991. Т. 52. No 6. С. 784–792.
18. Шмальгаузен И.И. Стабилизирующий отбор и его место среди факторов эволюции // Журн. общ. биологии. 1941. Т. 2. No 3. С. 307–354.
19. Anufriieva E.V. Do copepods inhabit hypersaline waters worldwide? A short review and discussion // Chin. J. Oceanol. Limnol. 2015. V. 33. No 6. P. 1354–1361.
20. Anufriieva E.V., Shadrin N.V. Factors determining the average body size of geographically separated Arctodiaptomus salinus (Daday, 1885) populations // Zool. Res. 2014. V. 35. No 2. P. 132–141.
21. Anufriieva E., Shadrin N. Resting stages of crustaceans in the Crimean hypersaline lakes (Ukraine) and their ecological role // Acta Geol. Sin. (Engl. Ed.). 2014. V. 88(s1). P. 46–49.
22. Anufriieva E.V., Shadrin N.V. Morphometric variability of Arctodiaptomus salinus (Copepoda) in the Mediterranean-Black Sea region // Zool. Res. 2015. V. 36. No 6. P. 328–336.
23. Boyko E.G., Litvinenko L.I., Kutsanov K.V., Gabdullin M.A. Specific features of the biology of Artemia in lakes of the Urals and Western Siberia // Rus. J. Ecol. 2012. V. 43. No 4. P. 333–340.
24. Clarke G.M. The genetic basis of developmental stability. V. Inter- and intra-individual character variation // Heredity. 1998. V. 80. No 5. P. 562–567.
25. Dongen S.V. Fluctuating asymmetry and developmental instability in evolutionary biology: past, present and future // J. Evol. Biol. 2006. V. 19. No 6. P. 1727–1743.
26. Hairston N.G., Kearns C.M., Ellner S.P. Phenotypic variation in a zooplankton egg bank // Ecology. 1996. V. 77. No 8. P. 2382–2392.
27. Jimenez-Melero R., Parra G., Souissi S., Guerrero F. Post-embryonic developmental plasticity of Arctodiaptomus salinus (Copepoda: Calanoida) at different temperatures // J. Plankt. Res. 2007. V. 29. No 6. P. 553–567.
28. Lajus D., Alekseev V. Components of morphological variation in Baikalian endemial cyclopid Acanthocyclops signifer complex from different localities // Hydrobiologia. 2000. V. 417. No 1. P. 25–35.
29. Lajus D., Sukhikh N., Alekseev V. Cryptic or pseudocryptic: can morphological methods inform copepod taxonomy? An analysis of publications and a case study of the Eurytemora affinis species complex // Ecol. Evol. 2015. V. 5. No 12. P. 2374–2385.
30. Matthews B., Hausch S., Winter C. et al. Contrasting ecosystem-effects of morphologically similar Copepods // PLoS ONE. 2011. V. 6. No 11. P. e26700.
31. May R.M. Stability and complexity in model ecosystems. Monographs in Population Biology. Princeton; N.Y.: Princeton Univ. Press, 1974. V. 6. 265 p.
32. Müller P.H., Neuman P., Storm R. Tafeln der mathematischen Statistik. Leipzig: Fachbuchverlag, 1979. 272 p.
33. Shadrin N.V., Anufriieva E.V. Size polymorphism and fluctuating asymmetry of Artemia (Branchiopoda: Anostraca) populations from the Crimea // Журн. Сиб. фед. ун-та. Биология. 2017. Т. 10. No 1. P. 114–126.
34. Waddington C.H. Canalization of development and the inheritance of acquired characters // Nature. 1942. V. 150. No 3811. P. 563–565.
35. Wagner G.P., Altenberg L. Perspective: Complex adaptations and the evolution of evolvability // Evolution. 1996. V. 50. No 3. P. 967–976.
36. Whitehouse I.V., Levis B.G. The effect of diet and density on development, size and egg production in Cyclops abyssorum Sars, 1863 (Copepoda, Cyclopoida) // Crustaceana. 1973. V. 25. No 3. P. 225–236.
37. Williamson P.G. Palaeontological documentation of speciation in Cenozoic mollusks from Turkana Basin // Nature. 1981. V. 293. No 5832. P. 437–443.
Е. М. Зубова 1, *, Н. А. Кашулин 1 , П. М. Терентьев 1 , С. А. Валькова 1 , А. А. Черепанов 1 , С. В. Постнова 1
НОВЫЕ ДАННЫЕ ПО МОРФОЛОГИЧЕСКИМ ОСОБЕННОСТЯМ ЖАБЕРНОГО АППАРАТА МАЛО- И СРЕДНЕТЫЧИНКОВОЙ ФОРМ СИГА Сoregonus lavaretus (L.) ИЗ КРУПНЕЙШЕГО СУБАРКТИЧЕСКОГО ОЗЕРА
1 Институт проблем промышленной экологии Севера Кольского научного центра РАН, 184209 Апатиты, Мурманская обл., Россия
e-mail: zubova@inep.ksc.ru
Исследовано распределение и особенности питания экологических форм сига крупнейшего субарктического оз. Имандра. Получены данные по гидрохимическим и гидробиологическим характеристикам плесов водоема и морфологическим особенностям жаберного аппарата мало- и среднетычинковой форм сига. Выявлена связь пищевых предпочтений сигов с размерными характеристиками и уровнем трофности мест обитания.
Ключевые слова: сиг Coregonus lavaretus (L.), экологическая форма, особенности питания, оз. Имандра.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Антропогенные модификации экосистемы озера Имандра. М.: Наука, 2002. 403 с.
2. Балушкина Е.В., Винберг Г.Г. Зависимость между длиной и массой тела планктонных ракообразных // Экспериментальные и полевые исследования биологических основ продуктивности озер. Л.: Изд-во Зоол. ин-та АН СССР, 1979. С. 58–72.
3. Вандыш О.И. Особенности зоопланктонного сообщества субарктического озера Имандра в зонах техногенного воздействия (губы Монче, Белая, Молочная) // Экология. 2012. Вып. 5. С. 366–373.
4. Денисов Д.Б. Проблемы современной биоиндикации состояния субарктических водных экосистем на основе водорослевых сообществ // Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем: Матер. Междунар. конф. СПб.: Любавич, 2011. Т. 2. С. 68–73.
5. Денисов Д.Б., Кашулин Н.А. Современное состояние водорослевых сообществ планктона в зоне влияния Кольской АЭС (оз. Имандра) // Тр. Кольск. науч. центра РАН: Прикладная экология Севера. 2013. No 3. С. 68–94.
6. Зиновьев Е.А. Экология хариусов Пермского Прикамья. Пермь: Изд-во Пермск. гос. нац. иссл. ун-та, 2012. 445 с.
7. Зубова Е.М., Кашулин Н.А. Современные данные о росте малотычинкового сига Coregonus lavaretus lavaretus (Coregonidae) оз. Имандра // Современные проблемы экологии и природопользования: Матер. регион. конф. Мурманск: Изд-во Мурманск. гос. тех. ун-та, 2014. С. 188–192.
8. Зубова Е.М. Линейный рост европейского сига Coregonus lavaretus (L.) в антропогенно-модифицированных водоемах европейской Субарктики (на примере Мурманской области): Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Пермь, 2015. 28 с.
9. Кашулин Н.А., Лукин А.А., Амундсен П.А. Рыбы пресноводных вод Субарктики как биоиндикаторы техногенного загрязнения. Апатиты: Изд-во Кольск. науч. центра РАН, 1999. 142 с.
10. Китаев С.П. Экологические основы биопродуктивности озер разных природных зон. М.: Наука, 1984. 207 с.
11. Королева И.М., Терентьев П.М., Кашулин Н.А., Зубова Е.М. Питание малотычинковых сигов Coregus lavaretus (L.) в оз. Имандра // Матер. междунар. науч.-техн. конф. Мурманск: Изд-во Мурманск. гос. тех. ун-та, 2013. С. 249–252.
12. Крогиус Ф.В. Материалы по систематике и биологии некоторых рыб озер Имандры и Умбозера // Материалы к изучению вод Кольского полуострова. Кольск. науч.-иссл. база АН СССР, 1940. Т. 1. С. 232–248.
13. Кузьмин Г.В. Таблицы для вычисления биомассы водорослей. Магадан: Изд-во Ин-та биологии проблем Севера Дальневосточ. науч. центра АН СССР, 1984. 48 с.
14. Курицын А.Е. Морфо-экологическая характеристика сига Corеgonus lavaretus (Linnaeus, 1758) озерно-речных систем средней Карелии: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Петрозаводск, 2011. 20 с.
15. Методическое руководство по биотестированию воды. РД 118-0290. М.: Госкомприрода, 1991. 48 с.
16. Методическое пособие по изучению питания и пищевых отношений рыб в естественных условиях. М.: Наука, 1974. 254 с.
17. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1966. 376 с.
18. Решетников Ю.С. Экология и систематика сиговых рыб. М.: Наука, 1980. 301 с.
19. Решетников Ю.С. О центрах возникновения и центрах расселения в связи с распределением числа видов по ареалу на примере сиговых рыб // Актуальные проблемы современной ихтиологии (к 100летию Г.В. Никольского). М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. С. 62–87.
20. Решетников Ю.С., Терещенко В.Г., Лукин А.А. Динамика рыбной части сообщества в изменяющихся условиях обитания (на примере оз. Имандра) // Рыб. хоз-во. 2011. No 6. С. 48–51.
21. Рихтер Г.Д. Обзор работы Имандровской экспедиции за 1924–1926 гг. Л.: Изд-во Мурман. жел. дороги, 1927. 136 с.
22. Руководство по изучению питания рыб в естественных условиях. М.: АН СССР, 1961. 262 с.
23. Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосиситем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 318 с.
24. Рыбы в заповедниках России. Пресноводные рыбы М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. Т. 1. 628 с.
25. Савосин Д.С. Многотычинковый сиг Coregonus lavaretus (L.) водоемов Карелии: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Петрозаводск, 2010. 23 с.
26. Сидоров Г.П., Решетников Ю.С. Лососеобразные рыбы водоемов европейского северо-востока. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 346 с.
27. Стерлигова О.П., Савосин Д.С., Ильмаст Н.В. Сравнительная характеристика многотычинковых сигов Coregonus lavaretus (Coregonidae) Сямозера и Тумасозера (Карелия) // Вопр. ихтиологии. 2010. Т. 50. No 3. С. 427–432.
28. Сярки М.Т. Организация первичных гидробиологических данных (на примере базы данных по зоопланктону Онежского озера) // Крупные озера – Ладожское и Онежское: Матер. междунар. конф. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 1996. С. 159.
29. Amundsen P.-A., Bøhn T., Våga G. Gill raker morphology and feeding ecology of two sympatric whitefish (Coregonus lavaretus) morphs // Ann. Zool. Fenn. 2004. No 41. P. 291–300.
30. Bernatchez L. Ecological theory of adaptive radiation // An empirical assessment from coregonine fishes (Salmonifomes). N.Y.: Oxford Univ. Press, 2004. P. 175– 207.
31. Harrod C., Mallela L., Kahilainen K. Phenotype-environment correlations in a putative whitefish adaptive radiation // J. Anim. Ecol. 2010. No 79. P. 1057–1068.
32. Hayden B., Harrod C., Kahilainen K. et al. Seasonal resource use of subarctic whitefish. Morphological differentiation and resource polymorphism in three sympatric whitefish Coregonus lavaretus (L.) forms in a subarctic lake // J. Fish Biol. 2006. No 68. P. 63–79.
33. Kahilainen K., Malinen T., Tuomala A., Lentonen H. Diel and seasonal habitat and food segregation of three sympatric Coregonus lavaretus forms in a subarctic lake // J. Fish Biol. 2004. No 64. P. 418–434.
34. Kahilainen K., Østbye K. Morphological differentiation and resource polymorphism in three sympatric whitefish Coregonus lavaretus (L.) forms in a subarctic lake // J. Fish Biol. 2006. No 68. P. 63–79.
35. Kahilainen K., Malinen T., Tuomaala A. et al. Empirical evaluation of phenotype–environment correlation and trait utility with allopatric and sympatric whitefish, Coregonus lavaretus (L.), populations in subarctic lakes // Biol. J. Linn. Soc. 2007. No 92. P. 561–572.
36. Kahilainen K., Malinen T., Lentonen H. Polar light regime and piscivory govern diel vertical migrations of planktivorous fish and zooplankton in a subarctic lake // Ecol. Freshwater Fish. 2009. No 18. P. 481–490.
37. Kahilainen K., Patterson W., Sonninen E., Harrod C., Kiljunen M. Adaptive Radiation along a Thermal gradient: preliminary results of habitat use and respiration rate divergence among whitefish morphs // Plos One. 2014. V. 9. No 11. P. 1–12.
38. Præbel K., Knudsen R., Siwertsson A. et al. Ecological speciation in postglacial European whitefish: rapid adaptive radiations into the littoral, pelagic, and profundal lake habitats // Ecology and evolution Res. 2013. V. 3. No 15. P. 4970–4986.
39. Ruttner-Kolisko A. Suggestion for biomass calculation of planktonic rotifers // Arch. Hydrobiol. Ergebn. Limnol. 1977. No 8. P. 71–78.
40. Siwertsson A., Knudsen R., Amundsen P.-A. Temporal stability in gill raker numbers of subarctic European whitefish populations // Adv. Limnol. 2008. No 63. P. 229–240.
41. Siwertsson A., Knudsen R., Kahilainen K.K. et al. Sympatric divercification as influenced by ecological opportunity and historical contingency in a young species lineage of whitefish // Evol. Ecol. Res. 2010. No 12. P. 929–947.
42. Toivonen J. Application of a bioenergetics model for analysis of growth and food consumption of subarctic whitefish Coregonus lavaretus (L.) in Lake Kilpisjarvi, Finnish Lapland // Hydrobiologia. 1999. No 390. P. 153–169.
43. Østbye K., Næsje T.F., Bernatchez L. et al. Morphological divergence and origin of sympatric populations of European whitefish (Coregonus lavaretus (L.) in Lake Femud, Norway // J. Evol. Biol. 2004. No 18. P. 683–702.
44. Zubova E.M., Kashulin N.A., Terentjev P.M. Coregonus lavaretus lavaretus (L.) (Coregonidae) in Babinskaya Imandra (Imandra Lake) // Inland Water Biol. 2015. V. 8. No 1. P. 75–86. https://doi.org/. doi 10.1134/S1995082915010150
А. О. Звездин 1, *, А. В. Кучерявый 1 , И. А. Цимбалов 1 , В. В. Костин 1 , Д. С. Павлов 1
ВЛИЯНИЕ ОСВЕЩЕННОСТИ НА ДВИГАТЕЛЬНУЮ АКТИВНОСТЬ СМОЛТОВ РЕЧНОЙ МИНОГИ Lampetra fluviatilis (L.)
1 Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Россия
e-mail: a.o.zvezdin@gmail.com
Изучено поведение смолтов речной миноги и изменение их двигательной активности при смене освещенности. Максимальная двигательная активность в аквариуме и установке “открытое поле” отмечена в ночное время при самой низкой из исследованных освещенностей (0.9 лк) и совпадала по времени с появлением мигрирующих смолтов в русловом потоке реки. В дневное время при освещенности 900 лк их двигательная активность в “открытом поле” была ниже, что согласуется с отсутствием ската днем. Изменение двигательной активности в течение суток – один из механизмов осуществления покатной миграции у смолтов миног. Начало ее увеличения приходится на вечернее снижение освещенности ниже десятых долей люкса (первая половина ночи), окончание – до утреннего увеличения освещенности. Предполагается наличие у смолтов речной миноги циркадных ритмов активности.
Ключевые слова: речная минога Lampetra fluviatilis (L.), смолты, двигательная активность, миграционное поведение, механизмы миграции, циркадные ритмы, освещенность, хронобиология.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Абакумов В.А. О систематике и экологии дальневосточной ручьевой миноги из бассейна Амура // Вопр. ихтиологии. 1960. Вып. 15. С. 43–54.
2. Берг Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. Ч. 1. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1948. 467 с.
3. Гриценко О.Ф. К вопросу об экологическом параллелизме между миногами и лососями // Изв. Тихоокеан. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр. 1968. Т. 65. С. 157– 168.
4. Павлов Д.С., Звездин А.О., Костин В.В. и др. Временная характеристика покатной миграции смолтов речной миноги Lampetra fluviatilis в реке Черная // Изв. РАН. Сер. биол. 2017. No 3. С. 276–282. doi 10.7868/S0002332917030067
5. Павлов Д.С., Кириллова Е.А., Кириллов П.И. Покатная миграция молоди лососевых рыб в р. Утхолок и ее притоках (северо-западная Камчатка). Сообщение 2. Покатная миграция молоди второго и последующих лет жизни // Изв. ТИНРО. Биол. ресурсы. 2011. Т. 164. С. 27–73.
6. Павлов Д.С., Лупандин А.И., Костин В.В. Механизмы покатной миграции молоди речных рыб. М.: Наука, 2007. 213 с.
7. Павлов Д.С., Назаров Д.Ю., Звездин А.О., Кучерявый А.В. Покатная миграция ранних личинок европейской речной миноги Lampetra fluviatilis // Докл. РАН. 2014. Т. 459. No 2. С. 248–251. doi 10.7868/S0869565214320231
8. Павлов Д.С., Нездолий В.К., Ходоревская Р.П. Покатная миграция молоди рыб в реках Волга и Или. М.: Наука, 1981. 320 с.
9. Савваитова К.А., Павлов Д.С., Кузищин К.В. и др. Экологические аналогии у тихоокеанской миноги Lethenteron camtschaticum и микижи Parasalmo mykiss Камчатки // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. No 3. С. 296–302.
10. Binder T.R., Cooke S.J., Hinch S.G. The Biology of Fish Migration // Encyclopedia of Fish Physiology: From Genome to Environment. San Diego: Acad. Press, 2011. V. 3. P. 1921–1927.
11. Byrne J. The effect of photoperiod and temperature on the daily pattern of locomotor activity in juvenile sockeye (Oncorhynchus nerka Walbaum) // Ph. D. Thesis, Dept. Zool. Univ. British Columbia, Vancouver, Canada. 1968. 125 p.
12. Claridge P.N., Potter I.C., Hughes G.M. Circadian rhytms of activity, ventilator frequency and heart rate in adult lamprey, Lampetra fluviatilis // J. Zool. 1973. V. 171. P. 239– 250.
13. Dauble D.D., Moursund R.A., Bleich M.D. Swimming behavior of juvenile Pacific lamprey, Lampetra tridentate // Environ. Biol. Fish. 2006. V. 75. P. 167–171. doi 10.1007/S1064100546987
14. Fernandes W.P.A., Ibbotson A.T., Griffiths S.W. et al. Does relatedness influence migratory timing and behaviour in Atlantic salmon smolts // Anim. Behav. 2015. V. 106. P. 191–199. doi 10.1016/j.anbehav.2015.06.006
15. Goodman D.H., Reid S.B., Som N.A., Poytress W.R. The punctuated seaward migration of pacific lamprey (Entosphenus tridentatus): environmental cues and implications for stream flow management // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2015. V. 72(12) P. 1817–1828. doi 10.1139/cjfas-2015-0063
16. Hoar W.S. Control and timing of fish migration. // Biol. Rev. 1953. V. 28. P. 437–452.
17. Hoar W.S. Smolt Transformation: Evolution, Behavior, and Physiology // J. Fish. Res. Board Can. 1976. V. 33. P. 1233–1253.
18. Hoar W.S. The Behaviour of Chum, Pink and Coho Salmon in Relation to their Seaward Migration // J. Fish. Res. Board Can. 1951. V. 8. No 4. P. 241–263.
19. Igoe F., Quigley D.T.G., Marnell F. et al. The sea lamprey Petromyzon marinus (L.), river lamprey Lampetra fluviatilis (L.) and brook lamprey Lampetra planeri (Bloch) in Ireland: general biology, ecology, distribution and status with recommendations for conservation // Biol. Environ: Proc. Roy. Irish Acad., 2004. V. 104B. No 3. P. 43–56.
20. Kirillova E., Kirillov P., Kucheryavyy A., Pavlov D. Common behavioral adaptations in lamprey and salmonids // Jawless Fishes of the World. Cambridge: Cambridge School. Publ., 2016. V. 2. P. 196–213.
21. Kucheryavyy A.V., Tsimbalov I., Kirillova E. et al. The need for a new taxonomy for lampreys // Jawless Fishes of the World. Cambridge: Scholars Publ., 2016. V. 1. P. 251–278.
22. Long C.W. Diurnal movement and vertical distribution of juvenile anadromous fish in turbine intakes // Fish. Bull. 1968. V. 66. P. 599–609.
23. Lopez-Olmeda J.F., Madrid J.A., Sanchez-Vazquez F.J. Light and temperature cycles as zeitgebers of zebrafish (Danio rerio) circadian activity rhythms // Chronobiol. Internat. 2006. V. 23(3). P. 537–550. doi 10.1080/07420520600651065
24. Lopez-Olmeda J.F., Sanchez-Vazquez F.J. Zebrafish temperature selection and synchronization of locomotor activity circadian rhythm to ahemeral cycles of light and temperature // Chronobiol. Internat. 2009. V. 26(2). P. 200– 218. doi 10.1080/07420520902765928
25. Lucas M., Bracken F. Potential impacts of hydroelectric power generation on downstream-mowing lampreys of Howsham, Yorkshire Derwent. Durham: Durh. Univ. School Biol. Biomed. Sci., 2010. 29 p.
26. Masuda T., Iigo M., Mizusawa K. et al. Variations in plasma melatonin levels of the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under various light and temperature conditions // Zool. Sci. 2003. V. 20. P. 1011–1016. doi 10.2108/zsj.20.1011
27. Menaker M., Moreira L.F., Tosini G. Evolution of circadian organization in vertebrates // Braz. J. Med. Biol. Res. 1997. V. 30. P. 305–313.
28. Morita Y., Tabata M., Uchida K., Samejima M. Pineal-dependent locomotor activity of lamprey, Lampetra japonica, measured in relation to LD cycle and circadian rhythmicity // J. Comp. Physiol. A. 1992. V. 171. P. 555–562.
29. Moser M.L., Jackson A.D., Lucas M.C., Mueller R.P. Behavior and potential threats to survival of migrating lamprey ammocoetes and macrophtalmia // Rev. Fish. Biol. Fisheries. 2014. V. 25(1). P. 1–14. doi 10.1007/s11160-014-9372-8
30. Moursund R.A., Dauble D.D., Bleich M.D. Effects of John Day Dam bypass screens and project operations on the behavior and survival of juvenile Pacific lamprey (Lampetra tridentata) // Rept. U.S. Army Corps Eng. Portland, Oregon, 2000. 25 p.
31. Philp A.R., Garcia-Fernandez J.M., Soni B.G. et al. Vertebrate ancient (VA) opsin and extraretinal photoreception in the Atlantic salmon (Salmo salar) // J. Exp. Biol. 2000. V. 203. P. 1925–1936.
32. Potter I.C., Huggins R.J. Observations on the morphology, behaviour and salinity tolerance of downstream migrating river lampreys (Lampetra fluviatilis) // J. Zool. 1973. V. 169. P. 365–379.
33. Pozo A. del, Sánchez-Férez J.A., Sánchez-Vázquez F.J. Circadian Rhythms of Self-feeding and Locomotor Activity in Zebrafish (Danio rerio) // Chronobiol. Internat. 2011. V. 28(1). P. 39–47. doi 10.3109/07420528.2010.530728
34. Samejima M., Shavali S., Tamotsu S. et al. Light and temperature-dependence of the melatonin secretion rhythm in the pineal organ of the lamprey, Lampetra japonica // Jap. J. Physiol. 2000. V. 50. P. 437–442.
35. Thiel R., Salewski V. Verteilung und Wanderung von Neuenaugen im Elbeästuar (Deutschland) // Limnologica. 2003. Bd 33. S. 214–226. doi 10.1016/S00759511(03)80015-4
36. Tuunainen P., Ikonen E., Auvinen H. Lamprey and lamprey fishing in Finland // Can. J. Fish Aquat. Sci. 1980. V. 37. P. 1953–1959.
37. Waterstraat A., Krappe M. Beiträge zur Ökologie und Verbreitung von FFH-Fischarten und Rundmäulern in Mecklenburg-Vorpommern: 1. Das Flußneuenauge (Lampetra fluviatilis L.) im Peenesystem // Natur. Mecklenburg-Vorpommern. 2000. Bd 35. S. 64–79.
38. Zhdanova I.V., Reebs S.G. Circadian rhythms in fish // Behav. and Physiol. of Fish. 2006. V. 24. P. 197–238. doi 10.1016/S1546-5098(05)24006-2
Н. А. Панкова 1, *, А. А. Болотовский 1 , Б. А. Левин 1,2 , В. А. Непомнящих 1
ОРГАНИЗАЦИЯ ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКОГО ПОВЕДЕНИЯ ТРЕХИГЛОЙ КОЛЮШКИ Gasterosteus aculeatus L. (Gasterosteidae: Pisces) В КРЕСТООБРАЗНОМ ЛАБИРИНТЕ
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2 Череповецкий государственный университет, 162600 Череповец, Вологодская обл., Россия
e-mail: stellaria1985@yandex.ru
В незнакомом крестообразном лабиринте трехиглые колюшки разного возраста используют различные простые стратегии исследовательского поведения. Эти стратегии заключаются в посещении коридоров лабиринта в определенном порядке и сменяют одна другую в процессе исследования. Одна из стратегий заключается в систематическом обходе коридоров лабиринта по часовой стрелке или в противоположном направлении. Она снижает вероятность возвращения в недавно посещавшиеся коридоры, но при этом не требует запоминания рыбой последовательности уже посещавшихся коридоров. Другая стратегия состоит в повторяющихся челночных переходах между какими-либо двумя коридорами. Наблюдаются также беспорядочные перемещения между коридорами, которые трудно объяснить какой-либо простой стратегией. Предполагается, что изучение стратегий исследования лабиринта может быть использовано для сравнения организации поведения организмов разного таксономического уровня и занимающих разные экологические ниши.
Ключевые слова: рыбы, Gasterosteus aculeatus, поведение, лабиринт.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Зюганов В.В. Семейство колюшковых (Gasterosteidae) мировой фауны // Фауна СССР. Рыбы. Л.: Наука, 1991. Т. 5. Вып. 1. 261 с.
2. Михеев В.Н. Неоднородность среды и трофические отношения у рыб. М.: Наука, 2006. 191 с.
3. Непомнящих В.А., Панкова Н.А., Осипова Е.А. и др. Спонтанная организация поведения животных в незнакомой обстановке // XVIII Междунар. науч.техн. конф. “Нейроинформатика-2016”. Лекции по нейроинформатике. М.: НИЯУ МИФИ, 2016. С. 171–192.
4. Рунион Р. Справочник по непараметрической статистике. Современный подход. М.: Финансы и статистика, 1982. 198 с.
5. Balcı F., Ramey-Balcı P.A., Ruamps P. Spontaneous alternation and locomotor activity in three species of marine crabs: green crab (Carcinus maenas), blue crab (Callinectes sapidus), and fiddler crab (Uca pugnax) // J. Comp. Psychol. 2014. V. 128. No 1. P. 65–73.
6. Benureau F., Oudeyer P.Y. Diversity-driven selection of exploration strategies in multi-armed bandits // Joint IEEE International Conference on Development and Learning and Epigenetic Robotics (ICDL-EpiRob), 2015. Providence: IEEE, 2015. P. 135–142.
7. Dubreuil D., Tixier C., Dutrieux G., Edeline J.M. Does the radial arm maze necessarily test spatial memory? // Neurobiol. learn. and memory. 2003. V. 79. No 1. P. 109–117.
8. Gottlieb J., Oudeyer P.Y., Lopes M., Baranes A. Information-seeking, curiosity, and attention: computational and neural mechanisms // Trends in Cognitive Sci. 2013. V. 17. No 11. P. 585–593.
9. Grossman L., Stewart A., Gaikwad S. et al. Effects of piracetam on behavior and memory in adult zebrafish // Brain Res. Bull. 2011. V. 85. No 1. P. 58–63.
10. Hliňák Z., Krejčí I. Spontaneous alternation behaviour in rats: kynurenic acid attenuated deficits induced by MK-801 // Behav. Brain Res. 2006. V. 168. No 1. P. 144–149. 19.
11. Hölter S.M., Tzschentke T.M., Schmidt W.J. Effects of amphetamine, morphine and dizocilpine (MK-801) on spontaneous alternation in the 8-arm radial maze // Behav. Brain Res. 1996. V. 81. No 1. P. 53–59. 20.
12. Hughes R.N., Blight C.M. Algorithmic behaviour and spatial memory are used by two intertidal fish species to solve the radial maze // Anim. Behav. 1999. V. 58. No 3. P. 601–613.
13. Jones M.A., Mason G.J., Pillay N. Correlates of birth origin effects on the development of stereotypic behaviour in striped mice, Rhabdomys // Anim. Behav. 2011. V. 82. No 1. P. 149–159.
14. Lennarz R.C. The role of extramaze cues in spontaneous alternation in a plus-maze // Learn. and Behav. 2008. V. 36. No 2. P. 138–144.
15. Loh E.A., Smith A.M., Roberts D.C.S. Evaluation of response perseveration of rats in the radial arm maze following reinforcing and nonreinforcing drugs // Pharmacol., Biochem. and Behav. 1993. V. 44. No 3. P. 735–740.
16. Makukhin K., Bolland S. Exploring the periphery of knowledge by intrinsically motivated systems // Artificial Life and Computational Intelligence. Cham. Springer Int. Publ., 2015. P. 49–61.
17. Maximino C., de Brito T.M., da Silva Batista A.W. et al. Measuring anxiety in zebrafish: a critical review // Behav. Brain Res. 2010. V. 214. No 2. P. 157–171.
18. Montgomery K.C. The relation between exploratory behavior and spontaneous alternation in the white rat // J. Comp. and Physiol. Psychol. 1951. V. 44. No 6. P. 582–589.
19. Montgomery K.C. Exploratory behavior and its relation to spontaneous alternation in a series of maze exposures // J. Comp. and Physiol. Psychol. 1952. V. 45. No 1. P. 50–57.
20. Mueller-Paul J., Wilkinson A., Hall G., Huber L. Response-stereotypy in the jewelled lizard (Timon lepidus) in a radial-arm maze // Herpetol. Notes. 2012. V. 5. No 2. P. 243–246.
21. Ragozzino M.E., Pal S.N., Unick K. et al. Modulation of hippocampal acetylcholine release and spontaneous alternation scores by intrahippocampal glucose injections // J. Neurosci. 1998. V. 18. No 4. P. 1595–1601.
22. Ramey P.A., Teichman E., Oleksiak J., Balci F. Spontaneous alternation in marine crabs: Invasive versus native species // Behav. Processes. 2009. V. 82. No 1. P. 51–55.
23. Red’ko V.G., Nepomnyashchikh V.A., Osipova E.A. Model of fish exploratory behavior in mazes // Biologically Inspired Cognitive Architectures. 2015. V. 13. No 1. P. 9–16.
24. Roitblat H. L., Tham W., Golub L. Performance of Betta splendens in a radial arm maze // Anim. Learn. and Behav. 1982. V. 10. No 1. P. 108–114.
25. Sison M., Gerlai R. Associative learning in zebrafish (Danio rerio) in the plus maze // Behav. Brain Res. 2010. V. 207. No 1. P. 99–104.
С. Г. Соколов*
ПАРАЗИТОФАУНА РОТАНА Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Actinopterygii, Odontobutidae) В ХРОНОЛОГИЧЕСКИ ПЕРВОЙ ТОЧКЕ ИНТРОДУКЦИИ ВИДА
Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Россия
e-mail: sokolovsg@mail.ru
Проведено паразитологическое обследование ротана Perccottus glenii в водоемах Санкт-Петербурга и его окрестностей. Обнаружено 27 видов/таксонов паразитов. Специфичные для ротана паразиты с гетероксенным жизненным циклом не зарегистрированы, что соотносится с происхождением местных популяций этого вида рыб от особей аквариумного содержания.
Ключевые слова: Perccottus glenii, паразиты, биологические инвазии, Финский залив.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Антонова Л.А. Определение зрелых глохидиев европейских видов Unioninae и Anodontinae // Тр. Зоол. ин-та. 1986. Т. 148. С. 46–53.
2. Анцулевич А.Е., Яковлев А.С. Ротан-головешка Perccottus glenii Dybowski, 1877 в Невской губе и восточной части Финского залива // Чужеродные виды в Голарктике (Борок-2): Тез. докл. 2-й Междунар. симп. Борок, 2005. С. 135.
3. Бауер О.Н. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Л.: Наука, 1984. Т. 1. 428 с.
4. Бауер О.Н. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Л.: Наука, 1987. Т. 3. 583 с.
5. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л.: Наука, 1985. 121 с.
6. Дмитриев М. Осторожно – ротан! // Рыбоводство и рыболовство. 1971. No 1. С. 26–27.
7. Коваль В.П. Трематоды рода Sphaerostomum Stiles et Hassal в рыбах водоемов Украины // Гидробиол. журн. 1970. Т. 6. No 6. С. 78–86.
8. Кудерский Л.А. Ротан в прудах Ленинградской области // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1982. No 191. С. 70–75.
9. Кулакова А.П. Новый вид рода Parasymphylodora Szidat, 1943 (Trematoda, Monorchiidae) и его личинка // Паразитология. 1972. Т. 6. Вып. 2. С. 137–142.
10. Мильто К.Д. Земноводные и пресмыкающиеся Северо-Запада России: оценка биоразнообразия: Автореф. дис ... канд. биол. наук. СПб., 2007. 22 с.
11. Попов И.Ю. Новые виды рыб в российской части Финского залива и в пресных водоемах Санкт-Петербурга и Ленинградской области // Рос. журн. биол. инвазий. 2014. No 1. С. 52–64.
12. Соколов С.Г., Мошу А.Я. Goussia obstinata sp. n. (Sporozoa: Eimeriidae) – новый вид кокцидий из кишечника ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Perciformes: Odontobutidae) // Паразитология. 2014. Т. 48. No 5. С. 382–392.
13. Соколов С.Г., Бакланов М.А., Зиновьев Е.А. Особенности паразитофауны ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Actinopterygii, Odontobutidae) в водоемах города Перми // Экология. 2014. No 5. С. 397– 400. doi 10.7868/S0367059714050138
14. Соколов С.Г., Протасова Е.Н., Решетников А.Н., Воропаева Е.Л. Взаимодействие интродуцированного ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Osteichthyes, Odontobutidae) с местными видами рыб: паразитологический аспект проблемы // Поволжск. экол. журн. 2011. No 2. С. 203–211.
15. Соколов С.Г., Решетников А.Н., Протасова Е.Н., Воропаева Е.Л. Новые данные о чужеродных видах паразитов и хозяев в экосистеме оз. Глубокое (Московская область, Россия) // Рос. журн. биол. инвазий. 2016. No 4. С. 118–125.
16. Спановская В.Д., Савваитова К.А., Потапова Т.Л. Об изменчивости ротана (Perccottus glenii Dyb. fam. Eleotridae) при акклиматизации // Вопр. ихтиологии. 1964. Т. 4. No 4. С. 632–643.
17. Судариков В.Е., Шигин А.А., Курочкин Ю.В. и др. Метацеркарии трематод – паразиты пресноводных гидробионтов Центральной России. М.: Наука, 2002. Т. 1. 298 с.
18. Хохлова И.Г. Акантоцефалы наземных позвоночных фауны СССР. М.: Наука, 1986. 277 с.
19. Golubkov S.M. Changes of biological communities in the eastern Gulf of Finland during the last century // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2009. Т. 313. No 4. С. 406–418.
20. Moravec F. Some notes on the larval stages of Camallanus truncatus (Rudolphi, 1814) and Camallanus lacustris (Zoega, 1776) (Nematoda; Camallanidae) // Helminthologia. 1971. V. 10. No 1–4. P. 129–135.
21. Moravec F. Parasitic nematodes of freshwater fishes of Europe. Praha: Academia, 1994. 473 p.
22. Niewiadomska K., Niewiadomska-Bugaj M. Optimal identification procedure for Diplostomum paracaudum (Iles, 1959) and D. pseudospathaceum Niewiadomska, 1984 metacercariae (Digenea) based on morphological characters // Syst. Parasitol. 1995. V. 30. No 3. P. 165– 171. doi 10.1007/BF00010467
23. Orlova M.I., Telesh I.V., Berezina N.A. et al. Effects of nonindigenous species on diversity and community functioning in the eastern Gulf of Finland (Baltic Sea) // Helgol. Mar. Res. 2006. V. 60. P. 98–105. doi 10.1007/s10152-006-0026-7
24. Reshetnikov A.N., Sokolov S.G., Protasova E.N. The host-specific parasite Nippotaenia mogurndae confirms introduction vectors of the fish Perccottus glenii in the Volga river basin // J. Appl. Ichthyol. 2011. V. 27. No 5. P. 1226–1231. doi 10.1111/j.1439-0426.2011.01792.x
25. Reshetnikov A.N., Sokolov S.G., Protasova E.N. Detection of a neglected introduction event of the invasive fish Perccottus glenii using parasitological analysis // Hydrobiologia. 2017. V. 788. P. 65–73. doi 10.1007/s10750-016-2987-0
26. Sokolov S.G., Reshetnikov A.N., Protasova E.N. A checklist of parasites in non-native populations of rotan Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Odontobutidae) // J. Appl. Ichthyol. 2014. V. 30. No 3. P. 574–596. doi 10.1111/jai.12281
Т. В. Фролова 1, *, А. Н. Паршуков 2 , Г. И. Извекова 1
АКТИВНОСТЬ ПИЩЕВАРИТЕЛЬНЫХ ФЕРМЕНТОВ ОКУНЯ Perca fluviatilis L. ПРИ ЗАРАЖЕНИИ ПЛЕРОЦЕРКОИДАМИ Triaenophorus nodulosus (Pallas)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2 Институт биологии Карельского научного центра РАН, 185910 Петрозаводск, Республика Карелия, Россия
e-mail: bianka28061981@gmail.com
Установлено, что заражение окуней старших возрастных групп плероцеркоидами Triaenophorus nodulosus снижает активность ферментов, обеспечивающих начальные этапы ассимиляции белковых компонентов пищи у рыб, но не влияет на активность гликозидаз. Это приводит к изменению соотношения активности ферментов указанных групп и, возможно, снижает эффективность питания рыб. Кроме того, показано снижение доли сериновых и металлопротеиназ, а также значительное увеличение доли неидентифицированных протеиназ в кишечнике зараженных рыб.
Ключевые слова: рыбы, цестоды, плероцеркоид Triaenophorus nodulosus, пищеварительные ферменты.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аникиева Л.В., Румянцев Е.А. Цестоды рыб озер Карелии // Проблемы цестодологии. СПб.: Рос. акaд. наук; Паразитол. о-во; Зоол. ин-т, 2005. С. 40–62.
2. Герасимов Ю.В., Иванова М.Н., Столбунов И.А., Павлов Д.Д. Окунь // Рыбы Рыбинского водохранилища: популяционная динамика и экология. Ярославль: Филигрань, 2015. С. 331–347.
3. Дятлов М.А. Рыбы Ладожского озера (распространение, морфометрия, экология, промышленное использование). Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2002. 281 с.
4. Извекова Г.И. Физиологическая специфика взаимоотношений между Triaenophorus nodulosus (Cestoda) и его хозяевами – рыбами // Паразитология. 2001. Т. 35. No 1. С. 60–68.
5. Извекова Г.И., Соловьев М.М. Активность пищеварительных гидролаз рыб при заражении цестодами // Успехи соврем. биол. 2012. Т. 132. No 6. С. 601–610.
6. Извекова Г.И., Соловьев М.М. Особенности влияния цестод, паразитирующих в кишечнике рыб, на активность протеиназ хозяев // Изв. РАН. Сер. биол. 2016. No 2. С. 182–187.
7. Куперман Б.И. Ленточные черви рода Triaenophorus – паразиты рыб. Л.: Наука, 1973. 207 с.
8. Куровская Л.Я. Сопряженность процессов пищеварения в системе Bothriocephalus acheilognathi–карп // Паразитология. 1991. Т. 25. No 5. С. 441–449.
9. Пронина С.В., Пронин Н.М. Взаимоотношения в системах гельминты–рыбы. М.: Наука, 1988. 176 с.
10. Сорвачев К.Ф. Основы биохимии питания рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1982. 247 с.
11. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н., Масевич Ц.Г. и др. Исследование пищеварительного аппарата у человека (обзор современных методов). Л.: Наука, 1969. 216 с.
12. Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
13. Alarcón F.J., Martínez T.F., Barranco P. et al. Digestive proteases during development of larvae of red palm weevil, Rhynchophorus errugineus (Olivier, 1790) (Coleoptera: Curculionidae) // Insect Biochem. Mol. Biology. 2002. V. 32. P. 265–274.
14. Dimes L.E., Garcia-Carreno F.L., Haard N.F. Estimation of protein digestibility-III. Studies on the digestive enzymes from the pyloric ceca of rainbow trout and salmon // Comp. Biochem. Physiol. 1994. V. 109A. No 2. P. 349– 360.
15. Eshel A., Lindner P., Smirnoff P. et al. Comparative study of proteolytic enzymes in the digestive tracts of the European sea bass and hybrid striped bass reared in freshwater // Comp. Biochem. Physiol. 1993. V. 106A. No 4. P. 621–634.
16. Filippov A.A., Golovanova I.L. Separate and Joint Effect of Copper and Zinc in vitro on a Velocity of Carbohydrate Hydrolysis in Freshwater Teleosts // Inland Water Biol., 2010. V. 3, No 1, pp. 96–101. doi 10.1134/S199508291001013X
17. Garcґía-Carreño F.L., Albuquerque-Cavalcanti C. et al. Digestive proteinases of Brycon orbignyanus (Characidae, Teleostei): characteristics and effects of protein quality // Comp. Biochem. Physiol. 2002. V. 132B. P. 343–352.
18. Golovanova I. L., Kuz’mina V. V., Chuiko G. M. et al. Impact of polychlorinated biphenyls on the activity of intestinal proteinases and carbohydrases in juvenile roach Rutilus rutilus (L.) // Inland Water Biol., 2011, V. 4, No 2, pp. 249–255. doi 10.1134/S1995082911020064
19. Izvekova G.I., Tyutin A.V. Activity of Digestive Enzymes and Distribution of the Trematode Bunodera luciopercae (Müller) in the Intestine of Juvenile Perch Infected with Plerocercoids of Triaenophorus nodulosus (Pallas) // Inland Water Biol., 2014, V. 7, No 2, pp. 167–171. doi 10.1134/S1995082914010076
20. Jónás E., Rágyanszki M., Oláh J., Boross L. Proteolytic digestive enzymes of carnivorous (Silurus glanis L.), herbivorous (Hypuphthalmichthys molitrix val.) and omnivorous (Cyprinus carpio L.) fishes // Aquaculture. 1983. V. 30. P. 145–154.
21. Kumar S., Garcia-Carreño F.L., Chakrabarti R. et al. Digestive proteases of three carps Catla catla, Labeo rohita and Hypophthalmichthys molitrix: partial characterization and protein hydrolysis efficiency // Aquaculture Nutrition. 2007. V. 13. P. 381–388.
22. Lutterschmidt W.I., Schaefer J.F., Fiorillo R.A. The ecological significance of helminth endoparasites on the physiological performance of two sympatric fishes // Comp. Parasitol. 2007. V. 74. No 2. P. 194–203.
23. Munilla-Morán R., Saborido-Rey F. Digestive enzymes in marine species. I. Proteinase activities in gut from redfish (Sebastes mentella), seabream (Sparus aurata) and turbot (Scophthalmus maximus) // Comp. Biochem. Physiol. 1996. V. 113B. No 2. P. 395–402.
24. Natalia Y., Hashim R., Ali A., Chong A. Characterization of digestive enzymes in a carnivorous ornamental fish, the Asian bony tongue Scleropages formosus (Osteoglossidae) // Aquaculture. 2004. V. 233. P. 305– 320.
25. Siringan P., Raksakulthai N., Yongsawatdigul J. Autolytic activity and biochemical characteristics of endogenous proteinases in Indian anchovy (Stolephorus indicus) // Food Chemistry. 2006. V. 98. P. 678–684.
Т. Б. Лапирова 1, *, Е. А. Флерова 2, 3
ХАРАКТЕРИСТИКА ИММУНОФИЗИОЛОГИЧЕСКОГО СТАТУСА CЕНЕГАЛЬСКОГО ПОЛИПТЕРУСА (Polypterus senegalus Cuvier, 1829)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2 Ярославский государственный университет им. П.Г. Демидова, 150003 Ярославль, Россия
3 Ярославский научно-исследовательский институт животноводства и кормопроизводства, 152517 Ярославская обл., пос. Михайловский, Россия
e-mail: ltb@ibiw.yaroslavl.ru
Представлены результаты комплексного исследования основных морфофизиологических параметров крови и иммунокомпетентных органов сенегальского полиптеруса (Polypterus senegalus Cuvier, 1829) – одного из самых древних из ныне живущих видов рыб. Принципиальных различий морфологических и основных физиолого-биохимических параметров крови и иммунной системы полиптеруса по сравнению с рядом других видов рыб не выявлено. Вид обладает хорошо развитыми механизмами неспецифической защиты и высоким адаптационным потенциалом.
Ключевые слова: сенегальский полиптерус Polypterus senegalus, кровь, иммунокомпетентные органы, физиологические показатели, неспецифический иммунитет.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Анисимова И.М., Лавровский В.В. Ихтиология. М.: Высш. шк., 1983. 255 с.
2. Баканева Ю.М., Бычкова А.П., Баканев Н.М., Федоровых Ю.В. Природные цеолиты в продукционных комбикормах для осетровых // Вестн. АГТУ. Сер. Рыб. хоз-во. 2013. No 1. С. 162–166.
3. Балабанова Л.В. Ультраструктура иммунокомпетентных клеток некоторых видов осетровых рыб // Рыбоводство и рыб. хоз-во. 2009. No 1–2. С. 59–60.
4. Баранникова И.А., Баюнова Л.В., Семенкова Т.Б., Тренклер И.В. Изменения физиологического состояния озимой формы русского осетра Acipenser gueldenstaedtii Волги после выдерживания и гормональных воздействий // Вопр. ихтиологии. 2008. Т. 48. No 3. С. 415–420.
5. Берестовский Е.Г., Ерохина И.А. Физиолого-биохимические особенности щук тундровых и лесотундровых озер Кольского полуострова // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Матер. XXVIII Междунар. конф. Петрозаводск, 2009. С. 84–90.
6. Бикташева Ф.Х. Биохимические показатели крови рыб озера Асылыкуль (Россия, Республика Башкортостан) // Междунар. журн. приклад. и фундамент. исследований. 2010. No 9. С. 107–108.
7. Бичарева О.Н., Мусаев М.А. Особенности гематологических показателей и микроэлементного состава некоторых органов прудовых рыб // Вестн. АГТУ. Сер. Рыб. хоз-во. 2008. No 3. С. 71–74.
8. Виноградов Г.Д. Физиолого-биохимическое состояние промысловой ихтиофауны в условиях диссеминации ксенобиотиков в бассейне р. Белая: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 2011. 24 с.
9. Гриневич Ю.А., Алферов А.Н. Определение иммунных комплексов в крови онкологических больных // Лаб. дело. 1981. No 8. С. 493–496.
10. Житенева Л.Д., Рудницкая О.А., Калюжная Т.И. Эколого-гематологические характеристики некоторых видов рыб. Ростов-на-Дону: Молот, 1997. 152 с.
11. Захарова Л.А. Эволюция адаптивного иммунитета // Изв. РАН. Сер. биол. 2009. No 2. С. 143–154.
12. Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1983. 184 с.
13. Козиненко И.И., Исаева Н.М., Балахнин И.А. Гуморальные факторы неспецифической защиты рыб // Вопр. ихтиологии. 1999. Т. 39. No 3. С. 394–400.
14. Кокоза А.А., Марков Е.Е., Ноякшева Т.А. Некоторые морфофизиологические показатели молоди осетровых рыб, отловленной в северном Каспии и выращенной в искусственных условиях // Аквакультура осетровых рыб: достижения и перспективы развития: Матер. IV Междунар. науч.-практ. конф. Астрахань; М., 2006. С. 85–88.
15. Куровская Л.Я., Лысенко В.Н., Неборачек С.И. Морфофизиологические показатели некоторых видов осетровых рыб (Acipenseridae, Acipenseriformes) разного возраста, выращиваемых в аквакультуре // Рибогосподарська наука Украïни. 2015. No 1. С. 108–119.
16. Лапирова Т.Б. Влияние сублетальных концентраций ртути, меди и кадмия на иммунофизиологическое состояние молоди ленского осетра // Биология внутр. вод. 2001. No 3. С. 80–84.
17. Лапирова Т.Б. Некоторые особенности процесса образования иммунных комплексов у рыб // Сб. науч. тр., посвящ. 30-летию факультета биологии и экологии ЯрГУ. Ярославль: Ярослав. гос. ун-т, 2001. С. 242–245.
18. Лапирова Т.Б., Флерова Е.А. Сравнительный анализ некоторых иммунофизиологических параметров крови щуки Esox lucius (L.) и судака Stizostedion lucioperca (L.) // Вестн. АГТУ. Сер. Рыб. хоз-во. 2013. No 1. С. 140–146.
19. Лапирова Т.Б., Флерова Е.А., Юрченко В.В., Морозов А.А. Защитные системы иммунокомпетентных органов рыб разных экологических и систематических групп // Вопр. ихтиологии. 2017. Т. 57. No 3. С. 338–336.
20. Логинов С.И., Смирнов П.Н., Трунов А.Н. Иммунные комплексы у животных и человека: норма и патология. Новосибирск: РАСХН. Сиб. отд. ИЭВСиДВ, 1999. 144 с.
21. Лукьяненко В.И. Иммунобиология рыб: врожденный иммунитет. М.: Агропромиздат, 1989. 271 с.
22. Луценко В.К. Молекулярная патофизиология. М.: МАИК “Наука/Интерпериодика”, 2004. 270 с.
23. Макашев Е.К., Ким Т.Д., Смагулова З.Ш., Макарушко С.Г. Изменение биохимических показателей крови осетровых рыб при кормлении различными видами кормов // Вестн. НАН Республики Казахстан. 2011. No 5. С. 28–30.
24. Маянский Д.Н. Проблемы иммунитета в общей патологии // Методические аспекты современной иммунологии: Сб. науч. тр. Новосибирск: Наука, 1991. С. 74–84.
25. Нельсон Д.С. Рыбы мировой фауны. М.: Книжный дом “ЛИБРОКОМ”, 2009. 880 с.
26. Плисецкая Э.М. Гормональная регуляция углеводного обмена у низших позвоночных. Л.: Наука, 1975. 215 с.
27. Практикум по иммунологии: Уч. пособие. М.: Изд-во МГУ, 2002. 224 с.
28. Ромер А., Парсонс Т. Анатомия позвоночных. М.: Мир, 1992. Т. 1. 358 с.
29. Флерова Е.А. Клеточная организация почек костистых рыб (на примере отрядов Cypriniformes и Perciformes). Ярославль: Ярослав. гос. с.-х. акад., 2012. 140 с.
30. Agius C. Melano-macrophage centers and their role in fish pathology // J. Fish Dis. 2003. V. 26. No 9. P. 499–509.
31. Dalmo R.A., Ingerbrigtsen K., Bogwald J. Non-specific defence mechanism in fish with special reference to the reticuloendothelial system (RES) // J. Fish Dis. 1997. V. 20. P. 241–273.
32. Feng G., Shib X., Huanga X., Zhuanga P. Oxidative Stress and Antioxidant Defenses after Long-term Fasting in Blood of Chinese Sturgeon (Acipenser sinensis) // Proc. Environ. S. 2011. V. 8. P. 469–475.
33. Grinde B., Jolles J., Jolles P. Purification and characterization of two lysozymes from rainbow trout (Salmo gairdneri) // Eur. J. Biochem. 1988. V. 173. P. 269–73.
34. Lie O., Evensen O., Sorensen A., Froysadal E. Study on lysozyme activity in some fish species // Dis. Aquat. Org. 1989. V. 6. P. 1–5.
35. Magnadottir B. Innate immunity of fish (overview) // Fish & Shellfish Immunol. 2006. V. 20. P. 137–151.
36. Miriam D., Akihiro T., Makoto T. Effects of changes in environmental factors on the non-specific immune response of Nile tilapia, Oreochromis niloticus L. // Aquacult. Res. 2005. No 4. V. 36. P. 391–397.
37. Nair R.M., George K.C., Sanil N.K., Sobhana K.S. Reticuloendothelial system of defense in Oreochromis mossambicus (Peters) // Indian J. Fish. 2003. V. 50. No 2. P. 139–147.
38. Parker G.A., Picut C.A. Liver Immunobiology // Toxicol. Pathol. 2005. V. 33. P. 52–62.
39. Peyghan R., Khadjeh G.H., Enayati A. Effect of water salinity on total protein and electrophoretic pattern of serum proteins of grass carp, Ctenopharyngodon idella // Vet. Res. Forum. 2014. V. 5. No 3. P. 225–229.
40. Press C.M., Dannevig B.H., Landsverk T. Immune and enzyme histochemical phenotypes of lymphoid and nonlymphoid cells within the spleen and head kidney of Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Fish and Shellfish Immunol. 1994. V. 4. P. 79–93.
41. Satheeshkumar P., Ananthan G., Senthilkumar D. et al. Comparative investigation on haematological and biochemical studies on wild marine teleost fishes from Vellar estuary, southeast coast of India // Comp. Clin. Pathol. 2012. V. 21. P. 275–281.
42. Saurabh S., Sahoo P.K. Lysozyme: an important defence molecule of fish innate immune system // Aquat. Res. 2008. V. 39. No 3. P. 223–239.
43. Siwicki A.K., Zakês Z., Trapkowska S. et al. Selected hematological and biochemical parameters of pikeperch Sander lucioperca (L.) from intensive culture // Arch. Pol. Fish. 2003. V. 11. No 1. P. 17–22.
44. Tort L., Balasch J.C., Mackenzie S. Fish immune system. A crossroads between innate and adaptive responses // Immunologia. 2003. V. 22. No 3. P. 277–286.
45. Uribe C., Folch H., Enriquez R., Moran G. Innate and adaptive immunity in teleost fish: a review // Vet. Med. 2011. V. 56. No 10. P. 486–503.
46. Xie Z., Niu C., Zhang Z., Bao L. Dietary ascorbic acid may be necessary for enhancing the immune response in Siberian sturgeon (Acipenser baerii), a species capable of ascorbic acid biosynthesis // Comp. Biochem. and Physiol. 2006. Part A. V. 145. P. 152–157.
47. Zapata A., Diez B., Cejalvo T. et al. Ontogeny of the immune system of fish. Review // Fish Shellfish Immunol. 2006. V. 20. No 2. P. 126–136.
А. В. Гончаров 1, * , М. Г. Гречушникова 1 , В. В. Пуклаков 1
НОВЫЕ ВОЗМОЖНОСТИ КЛАССИЧЕСКОГО МЕТОДА: АВТОМАТИЗИРОВАННОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПЕРВИЧНОЙ ПРОДУКЦИИ И ДЕСТРУКЦИИ ОРГАНИЧЕСКОГО ВЕЩЕСТВА В ВОДОЕМЕ
1 Кафедра гидрологии суши, Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, 119234 Москва, Россия
e-mail: mama15333@mail.ru
Представлено устройство для автоматизированного определения первичной продукции и деструкции органического вещества в водоеме кислородным методом – светлый и темный сосуды с оптическими регистраторами растворенного кислорода и насоc, меняющий в них воду через заданный промежуток времени (3 ч). Результаты трехсуточных измерений, выполненных на Можайском водохранилище, показали удовлетворительное описание прибором изучаемых процессов. Величина валовой первичной продукции, полученная в ходе эксперимента, составила ~4 мг О 2 /(л · сут), что соответствует эвтрофному статусу водоема. Устройство может быть использовано для изучения функциональных характеристик водных экосистем в условиях изменения параметров среды – температуры, освещенности, содержания биогенных элементов.
Ключевые слова: кислородный метод, продукционная установка, автоматизация измерений, первичная продукция, деструкция, Можайское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алимов А.Ф. Элементы теории функционирования водных экосистем. СПб.: Наука, 2001. 147 с.
2. Бульон В.В. Закономерности первичной продукции в лимнических экосистемах // Тр. Зоол. ин-та РАН. Т. 216. СПб.: Наука, 1994. 219 с.
3. Винберг Г.Г. Опыт изучения фотосинтеза и дыхания в водной массе озера. К вопросу о балансе органического вещества. Сообщ. 1 // Тр. лимнол. ст. в Косине. 1934. Вып. 18. С. 5–24.
4. Винберг Г.Г. Первичная продукция водоемов. Минск: Изд-во АН БССР, 1960. 329 с.
5. Гречушникова М.Г., Кременецкая Е.Р. Внутрисуточные изменения валовой первичной продукции фитопланктона Можайского водохранилища при разных погодных условиях // Вода и экология: проблемы и решения. 2013. No 3. С. 65–79.
6. Кузнецов С.И., Романенко В.И. Микробиологическое изучение внутренних водоемов. Лабораторное руководство. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1963. 129 с.
7. Методические вопросы изучения первичной продукции планктона внутренних водоемов. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 168 с.
8. Минеева Н.М. Первичная продукция планктона в водохранилищах Волги. Ярославль: Принтхаус, 2009. 279 с.
9. Одум Ю. Экология. М.: Мир, 1986. Т. 1. 328 с.
10. Семин В.А., Хромов В.М. Методы определения первичной продукции и деструкции органического вещества // Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. С. 245–265.
11. Depew D., Smith R., Guildford S. Production and respiration in Lake Erie plankton communities // Great Lakes Res. 2006. V. 32. No 4. P. 817–831.
12. HOBO Dissolved Oxygen Data Logger. [Электронный ресурс]. Режим доступа: [http://www.onsetcomp.com/products/data-loggers/u26-001], свободный (дата обращения 16.12.2017).
13. Lauster G.H., Hanson P.C., Kratz T.K. Gross primary production and respiration differences among littoral and pelagic habitats in northern Wisconsin lakes // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2006. V. 63. No 5. P. 1130–1141.
14. Mineeva N.M., Korneva L.G., Solovyova V.V. Influence of environemntal factors on phytoplankton photosynthetic activity in the Volga River reservoirs // Inland Water Biol. 2016, 9: 258. https://doi.org/ doi 10.1134/S1995082916030160
15. ProODO Optical Dissolved Oxygen Instrument. [Электронный ресурс]. Режим доступа: [https://www.ysi.com./proODO 16.12.2017], свободный (дата обращения 16.12.2017).