Журнал "Биология внутренних вод"
№ 2 за 2018 год
О. А. Гоголева *, Ж. В. Корнева **, Н. Е. Гоголева ***,**** , А. О. Плотников *,*****
УЛЬТРАСТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ НОВОГО ГАЛОТОЛЕРАНТНОГО ШТАММА АКТИНОБАКТЕРИИ Kocuria sp. ICIS A2.2 ПРИ СМЕНЕ ИСТОЧНИКА УГЛЕРОДА.
* Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН, 460000 Оренбург, ул. Пионерская, д. 11
** Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
*** Казанский институт биохимии и биофизики КНЦ РАН, 420111 Казань, ул. Лобачевского, д. 2/31
**** Казанский (Приволжский) Федеральный университет, 420008 Казань, ул. Кремлевская, 18
***** Оренбургский государственный медицинский университет, 460000 Оренбург, ул. Советская, д. 6
e-mail: protoz@mail.ru
Охарактеризованы морфо-физиологические свойства, частичная последовательность гена 16S pPHK и ультраструктура нового штамма галотолерантной углеводородокисляющей бактерии Kocuria sp. (штамм ICIS A2.2), выделенной из ассоциации с инфузорией Cyclidium sp. Выявлены морфологические и ультраструктурные изменения клеток исследуемого штамма при выращивании на средах с различными источниками углерода (сахарозой и дизельным топливом). На клеточном уровне происходит укрупнение клеток, изменение их формы, образование скоплений, на субклеточном уровне – увеличение количества и размеров внутрицитоплазматических мембранных структур, появление электронно-прозрачных включений. Выявленные изменения предложено рассматривать как результат адаптации к среде, содержащей углеводороды.
Ключевые слова: углеводородокисляющие бактерии, Kocuria sp., ультраструктура клетки, ген 16S pPHK.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аристархова В.И. Почвенные нокардиоподобные организмы: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 1981. 20 с.
2. Баулина О.И. Ультраструктурная пластичность цианобактерий. М.: Науч. мир, 2010. 240 с.
3. Бирюкова Е.Н., Аринбасарова А.Ю., Сузина Н.Е. и др. Изменение ультраструктуры клеток Yarrowia lipolytica в стрессовых условиях // Микробиология. 2011. Т. 80. No 3. С. 344–348.
4. Борзенков И.А., Милехина Е.И., Готоева М.Т. и др. Свойства углеводородокисляющих бактерий, изолированных из нефтяных месторождений Татарстана, Западной Сибири и Вьетнама // Микробиология. 2006. Т. 75. No 1. С. 82–89.
5. Глазачева Л.Е., Ившина И.Б., Оборин А.А. Клеточные приспособления Rhodococcus rhodochrous и Rhodococcus ruber, усваивающих пропан и н-бутан // Микробиология. 1990. Т. 59. No 2. С. 301–306.
6. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1998. 459 с.
7. Ившина И.Б., Каменских Т.Б., Анохин Б.А. Адаптационные механизмы выживания алканотрофных родококков, реализованные в неблагоприятных условиях среды // Вестн. Перм. ун-та. 2007. Вып. 5(10). С. 107–112.
8. Ившина И.Б., Куюкина М.С. Селективное выделение пропанокисляющих родококков с использованием антибиотических веществ // Микробиология. 1997. Т. 67. No 4. С. 494–500.
9. Нестеренко О.А., Квасников Е.И., Ногина Т.М. Нокардиоподобные и коринеподобные бактерии. Киев: Наук. думка, 1985. 336 с.
10. Определитель бактерий Берджи. М.: Мир, 1997. 800 с. (Holt J.G., Krieg N.R., Sneath P.H.A. et al. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology. Baltimore: Lippincott Williams and Wilkins, 1994. 787 p.).
11. Плотникова Е.Г., Рыбкина Д.О., Ананьина Л.Н. и др. Характеристика микроорганизмов, выделенных из техногенных почв Прикамья // Экология. 2006. No 4. С. 261–268.
12. Сазыкина М.А., Цыбульский И.Е., Сазыкин И.С. и др. Выделение ассоциаций нефтеокисляющих бактерий, участвующих в биоремедиации Азовского моря // Экологические проблемы промышленных городов: Сб. науч. тр. Саратов, 2009. С. 58–60.
13. Смирнова Т.А., Диденко Л.В., Азизбекян Р.Р., Романова Ю.М. Структурно-функциональная характеристика бактериальных биопленок (обзор) // Микробиология. 2010. Т. 79. No 4. С. 435–446.
14. Смирнова Т.А., Диденко Л.В., Андреев А.Л. и др. Электронно-микроскопическое изучение биопленок, образуемых бактериями Burkholderia cepacia // Микробиология. 2008. Т. 77. No 1. С. 63–70.
15. Стрелкова Е.А., Журина М.В., Плакунов В.К., Беляев С.С. Стимуляция антибиотиками процесса формирования бактериальных биопленок // Микро¬биология. 2012. Т. 81. No 2. С. 282–285.
16. Шемарова И.В., Нестеров В.П. Сa 2+ сигнализация у прокариот (обзор) // Микробиология. 2014. Т. 83. No 5. С. 511–518.
17. Beaman B.L., Serrano J.A., Serrano A.A. Compara¬ tive ultrastructure within the nocardiae // Nocardia and Streptomyces. Stuttgart; N.Y.: Fischer, 1978. P. 201–220.
18. Gartemann K.H., Eichenlaub R. Isolation and characterization of IS1409, an insertion element of 4-chlorobenzoate-degrading Arthrobacter sp. strain TM1, and development of a system for transposon mutagenesis // J. Bacteriol. 2001. V. 183. P. 3729–3736.
19. Biology of Rhodococcus. Berlin; Heidelberg: Springer Verlag, 2010. 372 р.
20. Rensch R.N., Huang R., Bramble L.L. Poly‐3-hydroxybutyrate, polyphosphate complexes form voltage-activated Ca 2+ channels // Biophys. J. 1995. V. 69. P. 754–766.
21. Wang Q., Garrity G.M., Tiedje J.M. et al. Classifier for Rapid Assignment of rRNA Sequences into the New Bacterial Taxonomy // Appl. Environ. Microbiol. 2007. V. 73(16). P. 5261–5267.
Е. Н. Патова *, А. С. Стенина *, И. Н. Стерлягова * , Е. А. Рябова **
ФИТОПЛАНКТОН ВОДНЫХ ОБЪЕКТОВ БАССЕЙНА р. ВЫЧЕГДЫ.
* Институт биологии Коми Научного центра Уральского отделения РАН, 167982 Сыктывкар, ул. Коммунистическая, д.28
** Коми бассейновое управление по рыболовству и сохранению водных биологических ресурсов, 167000 Сыктывкар, ул. Куратова, 15
e-mail: patova@ib.komisc.ru
В 2014 г. впервые за последние 55 лет изучили фитопланктон водных объектов бассейна р. Вычегды. Основу планктонных сообществ формировали водоросли из отделов Bacillariophyta, Chlorophyta и Cyanoprokaryota. По количественным показателям выявлены ведущие группы с преобладанием диатомей. Диапазон численности и биомассы водорослей составил соответственно 3.92–27.82 млн кл./л и 0.3–2.9 мг/л. Биомасса фитопланктона и гидрохимические показатели позволяют отнести исследованные водные объекты ко второму-четвертому классам качества воды с повышением трофического статуса в условиях усиления антропогенной нагрузки.
Ключевые слова: фитопланктон, численность, биомасса, реки, озера, бассейн реки Вычегды.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас Республики Коми. М.: Феория, 2011. 448 с.
2. Баринова С.С., Медведева Л.А., Анисимова О.В. Биоразнообразие водорослей-индикаторов окружающей среды. Tel-Aviv: Pilies Studio, 2006. 498 p.
3. Власова Т.А. Гидрохимия главных рек Коми АССР. Сыктывкар: Коми науч. центр УрО АН СССР, 1988. 152 с.
4. Водоемы бассейнов рек Печоры и Вычегды (сов¬ ременное состояние и перспективы использования) // Тр. Коми фил. АН СССР. Сыктывкар, 1983. No 57. 147 с.
5. Водоросли-индикаторы в оценке качества окружающей среды. Ч. I: Методические аспекты анализа биологического разнообразия водорослей. Ч. II: Экологические и географические характеристики водорослей-индикаторов. М.: ВНИИПрироды, 2000. 150 с.
6. Воронихин Н.Н. Опыт сравнительного изучения микрофлоры озера Дон-ты (обл. Коми) и его отложений // Изв. сапропелевого комитета АН СССР. Л., 1929. Вып. 5. С. 117–186.
7. Габышев В.А., Габышева О.И. Современное состояние фитопланктона и химического состава вод р. Амга // Сиб. экол. журн. 2011. No 1. С. 23–31.
8. Габышев В.А., Габышева О.И. Структура летнего фитопланктона реки Олекмы (Восточная Сибирь) и среда его обитания // Изв. Коми науч. центра УрО РАН. 2013. Вып. 1 (13). С. 25–31.
9. Гецен М.В., Попова Э.И., Стенина А.С., Шубина В.Н. Водоросли и водные беспозвоночные // Природа Сыктывкара и окрестностей. Сыктывкар: Коми кн. изд-во, 1972. С. 90–103.
10. Государственный доклад “О состоянии окружающей среды Республики Коми в 2013 г.”. Сыктывкар: Мин. природ. ресурсов и охраны окружающей среды Республики Коми, 2014. 199 с.
11. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и сов¬ ременные). Л.: Наука, 1974. Т. 1. 403 с.
12. Доровских Г.Н., Турбылева В.А., Вострикова А.В., Шергина Н.Н. Опухоли у гольяна Phoxinus phoxinus (L.) из бассейнов рек Северная Двина и Печора // Паразитология. 2009. Т. 43. No 3. С. 259–269.
13. Еникеева Т.В. К оценке сапробности р. Печоры по фитопланктону // Водоемы бассейнов Печоры и Вычегды. Сыктывкар. Изд-во: Коми фил. АН СССР, 1983. С. 5–9.
14. Зверева О.С. Особенности биологии главных рек Коми АССР в связи с историей их формирования. Л.: Наука, 1969. 279 с.
15. Кордэ Н.В. Количественный планктон реки Вычегды // Изв. Коми фил. Всес. гидробиол. о-ва. 1959. Вып. 5. С. 111–120.
16. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 239 с.
17. Минеева Н.М., Щур Л.А. Сравнительный анализ условий функционирования фитопланктона крупных речных систем различных климатичес¬ ких зон на примере Волги и Енисея // Вод. ресурсы. 2014. Т. 41. No 2. С. 191–199.
18. Оксиюк О.П., Жукинский В.Н., Брагинский Л.П. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиол. журн. 1993. Т. 29. No 4. С. 62–76.
19. Охапкин А.Г., Генкал С.И., Корнева Л.Г. Bacil¬ lariophyta фитопланктона рек и водохранилищ бассейна Средней Волги // Ботан. журн. 2010. Т. 95. No 5. С. 618–630.
20. Охапкин А.Г., Горохова О.Г., Генкал С.И. и др. К альгофлоре нижнего течения реки Ока // Ботан. журн. 2010. Т. 95. No 10. С. 1422–1436.
21. Пономарева Ю.А., Щур Л.А. Сезонная и межгодовая динамика фитопланктона реки Енисей в районе водозабора Гремячий Лог // Биология внутр. вод. 2014. No 1. С. 38–40.
22. Проблемы экологического мониторинга и моделирования экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. Т. 14. 220 с.
23. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. 239 с.
24. Соловьева В.В., Корнева Л.Г. Характеристика сапробности Рыбинского водохранилища по фитопланктону // Вода: химия и экология. 2012. No 5. С. 18–23.
25. Стенина А.С. Диатомовые водоросли Озельских озер (бассейн Вычегды) // Тр. Коми фил. АН СССР. Сыктывкар, 1983. No 57. С. 88–94.
26. Штина Э.А. Флора водорослей бассейна реки Вятки. Киров: Киров. обл. типография, 1997. 96 с.
27. Sládeček V. System of Water Quality from the Biological Point of View // Arch. Hydrobiol. 1973. Bd 7. H. 7. 218 S.
28. Sládeček V. Diatoms as Indicators of Organic Pollution // Acta hydrochim. et hydrobiol. 1986. V. 14. No 5. P. 555–566.
29. Van Dam H., Mertens A., Sinkeldam J. A coded checklist and ecological indicator values of freshwater diatoms from the Netherlands // Neth. J. Aquat. Ecol. 1994. V. 1. No 28. P. 117–133.
С. М. Жданова
Diaphanosoma mongolianum Ueno, 1938 (Cladocera: Sididae) В ОЗЕРАХ ЯРОСЛАВСКОЙ ОБЛАСТИ (РОССИЯ).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: zhdanova83@gmail.com
В озерах Плещеево (с 2004 г.) и Неро (с 2007 г.) Ярославской обл. на северной границе ареала зарегистрированы находки рачка Diaphanosoma mongolianum. Близкий вид D. brachyurum, который указывали для этих озер ранее, встречен в незначительном количестве. В 2004–2015 гг. исследованы сезонная динамика, пространственное распределение и суточные вертикальные миграции D. mongolianum в глубоководном мезотрофном оз. Плещеево. Вид отмечен в планктоне с начала июня до октября с максимумом обилия в июле–августе. Для его популяции характерно позднее (сентябрь) появление самцов и гамогенетических самок. D. mongolianum наиболее обильна в эпилимнионе глубоководной зоны, здесь летом она совершала суточные вертикальные миграции. В ночные часы рачки поднимались в поверхностный слой (0–2 м), в дневные – концентрировались в слое 2–6 м.
Ключевые слова: Diaphanosoma mongolianum, озера, новые местонахождения, вертикальное распределение, динамика численности.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бикбулатов Э.С., Бикбулатова Е.М., Литвинов А.С., Поддубный С.А. Гидрология и гидрохимия озера Неро. Рыбинск: Дом печати, 2003. 192 с.
2. Волга и ее жизнь. Л.: Наука, 1978. 348 с.
3. Гладышев М.И. Суточная динамика вертикального распределения массовых видов зоопланктона в Сыдинском заливе Красноярского водохранилища // Изв. Сиб. отд. АН СССР. Сер. биол. 1990. No 3. С. 78–85.
4. Добрынин А.Э. Суточная динамика вертикального распределения зоопланктона в олиготрофном озере // Биология внутр. вод. 2009. No 2. С. 62–71.
5. Коровчинский Н.М. Ветвистоусые ракообразные отряда Ctenopoda мировой фауны (морфология, систематика, экология, зоогеография) М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2004. 410 с.
6. Лазарева В.И. Сезонная динамика численности и параметры жизненного цикла Diaphanosoma brachyurum (Lievin) (Crustacea, Sididae) в водоемах разного типа // Экология водных беспозвоночных. Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007. С. 144–199.
7. Лазарева В.И. Распространение видов рода Diaphanosoma (Crustacea, Cladocera) в водохранилищах рек Волги и Шексны: влияние факторов среды // Биология внутр. вод. 2012. No 3. С. 33–42.
8. Лазарева В.И., Болотов С.Э. Анализ сосуществования недавнего вселенца Diaphanosoma orghidani Negrea с аборигенным видом D. brachyurum (Lievin) (Crustacea, Cladocera) в Рыбинском водохранилище // Рос. журн. биол. инвазий. 2013. No 2. С. 18–34.
9. Лазарева В.И., Болотов С.Э. Особенности биологии двух видов рода Diaphanosoma Fischer (Crustacea, Cladocera) в Рыбинском водохранилище // Биология внутр. вод. 2014. No 2. С. 13–21.
10. Луферова Л.А. Формирование зоопланктона Горьковского водохранилища // Биологические аспекты изучения водохранилищ. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1963. С. 130–142.
11. Луферова Л.А., Монаков А.В. Зоопланктон Рыбинского водохранилища в 1956–1963 гг. // Планктон и бентос внутренних водоемов. М.; Л.: Наука, 1966. С. 40–55.
12. Маркевич Г.И., Добрынин А.Э. Суточные вертикальные миграции зоопланктона Сиверского озера // Экология, биоразнообразие и систематика водных беспозвоночных. Ч. 1. Борок, 2000. С. 188–209. Деп. в ВИНИТИ. 17.01.2000, No 73-В00.
13. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Зоопланктон и его продукция // Л.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1984. 33 с.
14. Ривьер И.К. Особенности популяции Bythotrephes brevimanus Lilljeborg, 1901 в оз. Плещеево (бассейн Верхней Волги) // Биология внутр. вод. 2012. No 3. С. 52–58. doi: 10.1134/S199508291203011X
15. Ривьер И.К., Столбунова В.Н. Зоопланктон озера Неро // Современное состояние экосистемы озера Неро. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 1991. С. 74–108.
16. Рыбинское водохранилище и его жизнь. Л.: Наука, 1972. 364 с.
17. Семенова А.С. Изменение зоопланктона Куршского залива в период “гиперцветения” воды // Поволжск. экол. журн. 2010. No 1. С. 86–93.
18. Состояние экосистемы озера Неро в начале XXI века. М.: Наука, 2008. 406 с.
19. Столбунова В.Н. Зоопланктон озера Плещеево. М.: Наука, 2006. 152 с.
20. Экологические проблемы верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос.-техн. ун-та, 2001. 427 с.
21. Экосистема озера Плещеево. Л.: Наука, 1989. 264 с.
22. Erhan M.G. Diel vertical migration of planktonic crustacean populations in the Izvoru Muntelui– Bicaz Reservoir // Analele Ştiienţifice ale Universităţii “Al.I. Cuza” Iaşi, ec. Biol. 2008. T. 54. P. 145–151.
23. Herzig A. Temperature and life cycle strategies of Diaphanosoma brachyurum. An experimental study on development, growth and survival // Arch. Hydrobiol. 1984. Bd 101. Н. 1–2. P. 143–178.
24. Jaume D. The genus Diaphanosoma (Ctenopoda: Sididae) in Spain // Hydrobiologia. 1991. 225. P. 23–35.
25. Khalifa Nehad, El-Damhogy Khaled A., Fishar M. Reda et al. Vertical distribution of zooplankton in Lake Nasser // Egypt. J. Aquat. Res. 2015. V. 41. P. 177–185.
26. Kiss A., Ágoston-Szabo E., Dinka M. Microcrustacean community structure in the different water bodies of the Lake Fertő/Neusiedler See (Fertő-Hanság National Park, Hungary): new invaders, recurring and missing taxa // Opusc. Zool. Budapest. 2014. V. 45. No 1. P. 3–16.
27. Korovchinsky N.M. A Study of Diaphanosoma Species (Crustacea: Cladocera) of the “Mongolianum” Group // Int. Rev. gesamt. Hydrobiol. und Hydrogr. 1987. Bd 72. Н. 6. S. 727–758.
28. Vadadi-Fülöp Cs. Zooplankton (Cladocera, Copepoda) dynamics in the River Danube upstream and down¬ stream of Budapest, Hungary // Opusc. Zool. Budapest. 2009. V. 40. No 2. P. 87–98.
Р. З. Сабитова * , О. В. Мухортова **, Н. Я. Поддубная *** , Р. А. Федоров *,***
ЗООПЛАНКТОН ОЗ. КАНДРЫКУЛЬ (РЕСПУБЛИКА БАШКОРТОСТАН, РОССИЯ) В УСЛОВИЯХ АНТРОПОГЕННОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ.
* Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина РАН, 152742 пoc. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
** Институт экологии Волжского бассейна РАН, 445003 Тольятти, Самарская обл., ул. Комзина, 10
*** Череповецкий государственный университет, 162600 Череповец, Вологодская обл., Советский пр., д. 10
e-mail: muhortova-o@mail.ru
Изучено видовое разнообразие, численность и биомасса зоопланктона пелагиали и прибрежной зоны оз. Кандрыкуль. В видовом составе сообщества преобладали крупные Cladocera. Макси¬ мальные показатели обилия зоопланктона наблюдали в аномальном 2010 г. В июле наибольшая численность зоопланктона (1300 тыс. экз./м 3 ) отмечена у южного берега в зарослях хвостника, биомасса (9 г/м 3 ) – у северного берега в зарослях рогоза. Наименьшие значения численности и биомассы гидробионтов зарегистрированы в пелагиали, соответственно 32 тыс. экз./м 3 и 0.1 г/м 3 и у северо-восточного берега вдоль автотрассы М5, 188 тыс. экз./м 3 и 0.5 г/м 3 . Индекс Шеннона (1.3–2.1) соответствовал мезо-эвтрофному типу водоемов. По индексу трофности Мяэметса (Е) в 2007 г. экосистему озера относили к олиготрофному типу (Е 0.11), в 2010–2012 гг. – к мезотро¬ фному (Е пелагиали 0.54, открытой литорали 0.76) или слабо эвтрофному типу (Е закрытой ли¬ торали 1.52). Полученные по зоопланктону оценки трофности близки к таковым по численности и биомассе фитопланктона (мезо-эвтрофный тип). Выявлено быстрое эвтрофирование экоси¬ стемы оз. Кандрыкуль, за шесть лет трофический статус изменился от олиго-мезотрофного до мезо-эвтрофного.
Ключевые слова: озеро Кандрыкуль, пелагиаль, литораль, зоопланктон, ракообразные.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андроникова И.Н. Структурно-функциональная ор¬ ганизация зоопланктона озерных экосистем раз¬ ных трофических типов. СПб.: Наука, 1996. 189 с.
2. Биккинин Р.Ф., Дьяченко И.П. О проблемах ак¬ климатизации сиговых рыб в Башкирии // Ма¬ териалы по фауне и экологии животных Южного Урала. Башкирск. гос. ун-т, 1977. С. 101–121. Деп. в ВИНИТИ. 27.12.1977. No 4545-77.
3. Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2004. 436 с.
4. Всероссийский научно-исследовательский ин¬ ститут гидрометеорологической информации – Мировой центр данных [Электронный ресурс] // Чрезвычайные ситуации в России, связан¬ ные с неблагоприятными условиями погоды в 2010 году. Режим доступа: http://www.meteo.ru (дата обращения 28.04.2012).
5. Гиляров А.М. Динамика численности пресново¬ дных планктонных ракообразных. М.: Наука, 1987. 189 с.
6. Горбунов М.Ю., Уманская М.В. Современное со¬ стояние и тенденции изменения трофического статуса озера Кандрыкуль // Вода: химия и эко¬ логия. 2015. No 6(108). С. 3–9.
7. Государственный доклад о состоянии и охране окружающей среды Республики Башкортостан в 2004 году [Электронный ресурс] // Экологиче¬ ский портал Республики Башкортостан. http:// ecorb.ru/files/gosdoklad/GosDoklad2004u1f.pdf (дата обращения 18.08.2010).
8. Государственный доклад о состоянии природных ресурсов и окружающей среды Республики Баш¬ кортостан в 2012 году [Электронный ресурс] // Уфа: Министерство природопользования и эко¬ логии Республики Башкортостан. https://ecology. bashkortostan.ru/presscenter/lectures/ (дата обращения: 31.10.2013).
9. Гуламанова Г.А. Автотрофный планктон как пока¬ затель степени эвтрофирования (на примере раз¬ нотипных озер Республики Башкортостан): Авто¬ реф. дис. ... канд. биол. наук. Уфа, 2008. 16 c.
10. Деревенская О.Ю. К изучению зоопланктона пела¬ гиали Куйбышевского водохранилища в пределах акватории Саралинского участка Волжско-Кам¬ ского заповедника // Тр. Волжск.-Камск. гос. заповед. 2005. Вып. 6. С. 54–70.
11. Деревенская О.Ю., Унковская Е.Н. Структура со¬ обществ зоопланктона озер Волжско-Камского заповедника // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2016. Т. 320. No 3. С. 294–303.
12. Иванова М.Б. Влияние активной реакции и об¬ щей минерализации воды на формирование со¬ обществ зоопланктона в озере при приближе¬ нии этих факторов к экстремальным // Реакция озерных экосистем на изменение биотических и абиотических условий. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 1997. С. 71–86.
13. Кордаков И.А. Прибрежно-водная растительность вторичных прудов и водохранилищ и ее роль в очистке промышленных сточных вод: Сб. тр. НИИ по обогащению руд цветных металлов. М.: Наука, 1971. С. 34–37.
14. Коровчинский Н.М. Ветвистоусые ракообразные отряда Ctenopoda мировой фауны (морфология, систематика, экология, зоогеография). М.: Това¬ рищество науч. изданий КМК, 2004. 410 с.
15. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Касьянов Н.А. и др. Зоо¬ планктон защищенного зарастающего мелково¬ дья Рыбинского водохранилища в условиях вли¬ яния колониального поселения птиц // Биология внутр. вод. 2009. No 2. С. 56–61.
16. Лазарева В.И. Структура и динамика зоопланкто¬ на Рыбинского водохранилища. М.: Товарище¬ ство науч. изданий КМК, 2010. 183 с.
17. Лазарева В.И., Болотов С.Э. Особенности био¬ логии двух видов рода Diaphanosoma Fischer (Crustacea, Cladocera) в Рыбинском водохрани¬ лище // Биология внутр. вод. 2014. No 2. С. 1–9.
18. Липин А.Н., Липина Н.Н. Макрофлора стоячих водоемов и связь ее с гидросферой // Тр. Всерос. НИИ пруд. рыб. хоз-ва. 1950. Вып. 2. С. 235–240.
19. Маматов А.Ф. Водоплавающие птицы Южного Урала: Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Казань, 2006. 42 c.
20. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
21. Мухортова О.В., Болотов С.Э. Модуль экологи¬ ческого анализа фитофильных сообществ прес¬ новодного зоопланктона “FWZooplankton– PHYTO” // Вода: химия и экология. 2015. No 10(108). С. 63.
22. Мяэметс А.Х. Изменения зоопланктона // Антро¬ погенное воздействие на малые озера. Л.: Наука, 1980. С. 54–64.
23. Определитель зоопланктона и зообентоса прес¬ ных вод Европейской части. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. Т. 1. 495 с.
24. Подкина Н.М. Биология и промысловое значение местных рыб озера Увильды // Биологические ос¬ новы повышения рыбопродуктивности водоемов Урала: Тр. УрО Сиб. НИИ рыб. хоз-ва. Сверд¬ ловск, 1975. Т. 9. С. 147–161.
25. Пушкин Ю.А., Шерстнева Л.А., Сейма Ф.А. Рыбо¬ хозяйственная характеристика озер Белое и АслыКуль Башкирской АССР // Основные рыбохозяй¬ ственные проблемы Урала: Тр. Пермск. лаб. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1977. Т. 1. С. 59–75.
26. Сабитова Р.З. Зоопланктон озера Кандрыкуль // Экология водных беспозвоночных: Матер. Между¬ нар. конф. Ярославль: Принтхаус, 2010. С. 267–269.
27. Столбунова В.Н. Зоопланктон озера Плещеево. М.: Наука, 2006. 152 с.
28. Уманская М.В., Краснова Е.С., Горбунов М.Ю. Ор¬ ганический пикосейстон озера Кандры-Куль (Респ. Башкортостан, Россия) в летний период // Изв. Самарск. науч. центра РАН. 2013. Т. 15. No 3(7). С. 2234–2239.
29. Шитиков В.К., Зинченко Т.Д., Розенберг Г.С. Мак¬ роэкология речных сообществ: концепции, мето¬ ды, модели. Тольятти: Кассандра, 2011. 255 с.
30. Шкундина Ф.Б. Основные тенденции антропо¬ генного эвтрофирования озер Республики Баш¬ кортостан // Вiсник Одес. держ. ун-ту. 2008. Т. 13. Вып. 4. С. 106–111.
31. Gollasch S. Assessment of the introduction potential of aquatic alien species in new enwironments // Assessment and Control of Biological Invasion Risks. Kioto: Shoukadoch Book Sellers and Gland, 2006. P. 88–91.
32. Sladecek V. System of water quality from biological point of view // Ergebnisse Limnol. 1973. H. 7. S. 1–218.
А. А. Прокин
НАЧАЛЬНЫЙ ЭТАП ФОРМИРОВАНИЯ МАКРОЗООБЕНТОСА ВОДОХРАНИЛИЩ ЗАПАДНОЙ МОНГОЛИИ.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: prokina@mail.ru
Обобщены данные 2010–2015 гг. о начальном этапе формирования макрозообентоса Тайширского и Дургунского водохранилищ Западной Монголии. Приведен таксономический список макрозообентоса, 15 видов указаны для Монголии впервые. В Дургунском водохранилище формирование донных отложений и сообществ беспозвоночных приплотинного бьефа ускоряется за счет транспорта течением куртин тростника и беспозвоночных из оз. Хар-Ус. Макрозообентос Тайширского водохранилища формируется сначала за счет потребителей терригенного органического вещества (разлагающейся наземной растительности и почв), затем – обитателей сапропеля; в профундали образуются комплексы фильтраторов – Spongilla lacustris (L.). Процесс развития макрозообентоса здесь напоминает таковой в равнинных водохранилищах. После сооружения водохранилища выросли количественные характеристики макрозообентоса в р. Дзабхан ниже плотины, реофильные виды сменились лимнофильными.
Ключевые слова: водохранилище, Западная Монголия, макрозообентос, видовое богатство, численность, биомасса, межгодовые изменения.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Волга и ее жизнь. Л.: Наука, 1978. 438 с.
2. Иванов В.К. Трофическая структура, пищевые сети макрозообентоса прибрежья мелководного озера и их пространственно-временные отличия в масштабе двух станций // Успехи соврем. биол. 1999. Т. 119. No 5. С. 504–510.
3. Иоффе Ц.И. К методике изучения сноса бентических организмов рекой и его роль в заселении водохранилища // Изв. ВНИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1949. Т. 29. С. 96–105.
4. Мэндсайхан Б., Дулмаа А., Крылов А.В. и др. Формирование экосистемы озерного типа в полупустынной зоне: Тайширское водохранилище на реке Завхан (Западная Монголия) // Аридные экосистемы. 2016. Т. 22. No 3 (68). С. 84–91.
5. Прокин А.А. Макрозообентос в начале XXI века // Лимнология и палеолимнология Монголии. М., 2014. Т. 60. С. 170–185.
6. Разумовский С.М. Закономерности динамики биоценозов. М.: Наука, 1981. 231 с.
7. Скальская И.А. Зооперифитон водоемов бассейна Верхней Волги. Рыбинск: Дом печати, 2002. 256 с.
8. Скальская И.А., Баканов А.И., Флеров Б.А. Особенности формирования перифитонных и бентосных сообществ в Волжских водохранилищах (обзор) // Биология внутр. вод. 2005. No 1. С. 3–10.
9. Углубленный обзор политики и программ в области энергоэффективности: Монголия. Brussels: Секретариат Энергетической Хартии, 2011. 132 c.
А. М. Камакин, Р. П. Ходоревская
ВЛИЯНИЕ ПОПУЛЯЦИИ ВСЕЛЕНЦА Mnemiopsis leidyi A. Agassiz, 1865 НА РЫБНОЕ НАСЕЛЕНИЕ КАСПИЙСКОГО МОРЯ.
Каспийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства, 414056 Астрахань, ул. Савушкина, 1
e-mail: kamakin_a@mail.ru
Представлены данные многолетних (1999–2014 гг.) экологических исследований о влиянии нового для Каспийского моря вселенца гребневика Mnemiopsis leidyi A. Agassiz, 1865 на морские и анадромные виды рыб. Вселение гребневика и его массовое развитие в Каспийском море в первую очередь отразилось на рыбах-планктофагах, особенно на самом массовом виде – анчоусовидной кильке (Clupeonella engrauliformis Borodin, 1904) и конечно же затронула осетровых (сем. Acipenseridae). Mnemiopsis leidyi – один из основных негативных факторов, препятствующих восстановлению численности популяций каспийских рыб, в первую очередь анчоусовидной тюльки. Критическое состояние ресурсной базы нерестовых частей популяций осетровых (сем. Acipenseridae) усилилось негативным влиянием массового развития M. leidyi.
Ключевые слова: Каспийское море, тюлька, вселенец, гребневик, зоопланктон, меропланктон.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аббаси К., Адели Ю., Сабкьара Д. Изучение численности и некоторых биологических характеристик пузанков на иранском побережье Каспийского моря в 2002–2003 гг. // IX Всерос. конф. По проблемам рыбопромыслового прогнозирования: Тез. докл. Мурманск, 2004. С. 18–20.
2. Адели Ю., Аббаси К., Ганинежад Д. Изучение улова и размерно-массовой структуры пузанков на иранском побережье Каспийского моря // IX Всерос. конф. по проблемам рыбопромыслового прогнозирования: Тез. докл. Мурманск, 2004. С. 22–23.
3. Камакин А.М., Егоров С.Н. Влияние популяции Mnemiopsis leidyi на различные трофические уровни экосистемы Каспийского моря // Актуальные проблемы современной науки. Естественные науки. Ч. 13: Экология. Самара: Изд-во Самар. гос. техн. ун-та, 2005. С. 65–72.
4. Камакин А.М., Ушивцев В.Б., Коренек В.Г. Вертикальное распределение популяции гребневика Mnemiopsis leidyi в Каспийском море // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Издво Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2004. С. 191–198.
5. Каспийское море: гидрология и гидрохимия. М.: Наука, 1986. 261 с.
6. Молодцова А.И., Полянинова А.А. Питание осетровых рыб в Каспийском море в 2005 году. Астрахань: Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2006. С. 133–140.
7. Молодцова А.А., Полянинова А.А. Питание осетра, севрюги и белуги в Каспийском море // Вопр. рыболовства. 2009. Т. 10. No 4 (40). С. 718–740.
8. Парицкий Ю.А., Разинков В.П. Биология и состояние запасов большеглазой тюльки (Clupeonella grimmi) в 2013 году // Современное состояние биоресурсов внутренних вод: Матер. докл. II Всерос. конф. М., 2014. Т. 2. С. 437–442.
9. Полянинова А.А., Татаринцева Т.А., Терлецкая О.В. и др. Гидробиологическая обстановка в Среднем и Южном Каспии при биологической инвазии водоема гребневиком Mnemiopsis leidyi // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Астрахань: Изд-во Каспийск. НИИ рыб. хоз-ва, 2003. С. 121–134.
Е. В. Есин *, Е. В. Шульгина * , Д. А. Широков *** , Д. В. Зленко *** , В. Н. Леман *
ФИЗИОЛОГИЧЕСКАЯ АДАПТАЦИЯ МОЛОДИ ГОЛЬЦА Salvelinus malma (Salmonidae) К ОБИТАНИЮ В ЗАГРЯЗНЕННЫХ РЕКАХ ВУЛКАНИЧЕСКИХ ТЕРРИТОРИЙ КАМЧАТКИ.
* Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, 107140 Москва, ул. В. Красносельская, 17
** Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины, 119435 Москва, ул. М. Пироговская, 1а
*** Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, 119234 Москва, Ленинские горы, 1, стр. 12
e-mail: esinevgeniy@yandex.ru
Изучено влияние избыточного содержания в воде растворенных токсикантов и минеральных взвесей на биохимический статус речной молоди гольца. Рассмотрены процессы биоаккумуля¬ ции токсикантов, изменения силы окислительного стресса, активизации обмена веществ и де¬ токсикации в широком диапазоне интенсивности загрязнения. Выявлены фоновые условия и критические уровни загрязнения в местах обитания. Обнаружены специфические черты фи¬ зиологической реакции молоди гольца проходной и жилой форм.
Ключевые слова: биохимические признаки, стресс, хроническое загрязнение, вулканизм, лососевые рыбы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Авдеева H.A. Оценка методов определения кон¬ центрации гемоглобина, применяемых в клини¬ ко-диагностических лабораториях // Лаб. дело. 1987. No 10. С. 786–788.
2. Биота северных озер в условиях антропогенно¬ го воздействия. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2012. 30 с.
3. Богдан В.В., Сидоров В.С., Зекина Л.М. Липиды рыб при адаптации к различным экологическим условиям // Экологические проблемы онтогене¬ за рыб: физиолого-биохимические аспекты. М.: Москов. гос. ун-т, 2001. С. 188–202.
4. Власов Г.М., Чемеков Ю.Ф. Основные этапы фор¬ мирования рельефа полуострова Камчатки в чет¬ вертичный период и его геоморфологическое районирование // Изв. Всесоюз. геогр. о-ва. 1950. Т. 82. No 3. С. 262–272.
5. Гаврилов В.Б., Гаврилова А.Р., Мажуль Л.М. Ана¬ лиз методов определения продуктов перекисного окисления липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой // Вопр. мед. химии. 1987. No 1. С. 118–121.
6. Гаврилов В.Б., Мишкорудная М.И. Спектрофото¬ метрическое определение содержания гидропере¬ кисей липидов в плазме крови // Лаб. дело. 1983. No 3. С. 33–35.
7. Голованова Л.И. Влияние тяжелых металлов на физиолого-биохимический статус рыб и водных беспозвоночных // Биология внутр. вод. 2008. No 1. С. 99–108. doi: 10.1007/s12212-008-1014-1
8. Досон Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. Спра¬ вочник биохимика. М.: Мир, 1991. 54 4 с. (Dawson R.M.C., Elliott D.C., Elliott W.H., Jones K.M. Data for biochemical research. Oxford: Oxford Sci. Publ., 1986. 580 p.).
9. Ермакова А.С. Русловые процессы рек Камчатки: Автореф. дис... канд. геогр. наук. М., 2009. 26 с.
10. Есин Е.В. Обзор токсичности основных элемен¬ тов-загрязнителей лососевых нерестовых рек Камчатки // Изв. ТИНРО. 2015. Т. 180. С. 210– 225.
11. Есин Е.В. Ручьевая мальма Salvelinus malma по¬ луострова Камчатка // Вопр. ихтиологии. 2015. Т. 55. No 2. С. 180–195.
12. Есин Е.В., Сорокин Ю.В. Влияние вулканизма на условия обитания и фауну рек Восточной Кам¬ чатки (на примере водотоков, стекающих с вулка¬ на Кихпиныч) // Биология внутр. вод. 2015. No 4. С. 31–44. doi: 10.7868/S0320965215040063
13. Зенков Н.К., Ланкин В.З., Менщикова Е.Б. Окис¬ лительный стресс: биохимический и патофизио¬ логический аспекты. М.: МАИК, 2001. 343 с.
14. Кашулин Н.А., Решетников Ю.С. Накопление и распределение никеля, меди и цинка в органах и тканях рыб в субарктических водоемах // Вопр. ихтиологии. 1995. Т. 35. No 5. С. 687–697.
15. Кейтс М. Техника липидологии. М.: Мир, 1975. 322 с. (Kates M. Techniques of lipidology: Isolation, analysis and identification of lipids. Saint Louis: Elsevier Sci. Ltd., 1972. 342 p.).
16. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г., Токарева В.Е. Метод определения активности катала¬ зы // Лаб. дело. 1988. No 1. С. 16–19.
17. Лозовик П.А., Кулакова Н.Е. Методические подхо¬ ды к оценке загрязнения водных объектов в зоне действия предприятий горнодобывающей про¬ мышленности // Вод. ресурсы. 2014. Т. 41. No 4. С. 429–438.
18. Лукьяненко В.И. Общая ихтиотоксикология. М.: Легк. и пищ. пром-cть, 1983. 320 с.
19. Мархинин Е.К. Вулканизм и биосфера // Вулк. сейсмол. 1985. No 4. С. 16–25.
20. Методика определения элементного состава природных и питьевых вод методом МС-ИСП. НСАМ No 480-Х. М.: Ин-т проблем технологии микроэлектроники и особочистых материалов РАН, 1998. 9 с.
21. Моисеенко Т.И. Гемотологические показатели рыб в оценке их токсикозов // Вопр. ихтиологии. 1998. Т. 38. No 2. С. 371–380.
22. Моисеенко Т.И. Водная экотоксикология. Теоре¬ тические и прикладные аспекты. М.: Наука, 2009. 400 с.
23. Нормативы качества воды водных объектов ры¬ бохозяйственного значения. М.: Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океанол., 2011. 257 с.
24. Павлов Д.С., Немова Н.Н., Кириллов П.В. и др. Ли¬ пидный статус и характер питания молоди лосо¬ севых (Salmonidae) в год, предшествующий ми¬ грации в море, как факторы, определяющие их будущую смолтификацию // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. No 2. С. 247–252.
25. Петухов С.А., Глубоков И.А., Горкин И.Н. Роль металлотионеина в концентрировании тяжелых металлов рыбами. Экологические аспекты хи¬ мического и радиоктивного загрязнения водной среды. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1983. С. 36–41.
26. Пичугин М.Ю. Особенности роста и развития ске¬ лета ранней молоди северной мальмы Salvelinus malma malma из рек Западной Камчатки в связи с температурным режимом нерестилищ // Вопр. ихтиологии. 2015. Т. 55. No 4. С. 435–452.
27. Савваитова К.А., Чеботарева Ю.В., Пичугин М.Ю., Максимов С.В. Аномалии в строении рыб как пока¬ затели состояния природной среды // Вопр. ихти¬ ологии. 1995. Т. 35. No 2. С. 182–188.
28. Сидоров В.С. Экологическая биохимия рыб. Ли¬ пиды. Л.: Наука, 1983. 238 с.
29. Сидоров В.С., Немова Н.Н., Высоцкая Р.У., Такшеев С.А. Вариабельность интегрального биохими¬ ческого индекса у рыб под влиянием техногенных вод горно-обогатительного комбината // Эколо¬ гия. 2003. No 4. С. 274–280.
30. Смирнов Л.П., Кирилюк С.Д. Влияние загрязне¬ ния окружающей среды на фракционный состав низкомолекулярных пептидов из различных тка¬ ней сигов // Тр. Карельск. науч. центра РАН. Сер. биол. 1994. No 4. С. 617–622.
31. Юдаев Н.А., Афиногенова С.А., Булатова А.А. Био¬ химия гормонов и гормональной регуляции. М.: Наука, 1976. 380 с.
32. Adams S.M., Ryon M.G. A comparison of health assessment approaches for evaluating the effects of contaminant-related stress on fish populations // J. Aquat. Ecosyst. Health. 1994. V. 3. P. 15–25.
33. Armstrong R.H., Morrow J.E. The Dolly Varden charr, Salvelinus malma. Charrs: Salmonid fishes of the genus Salvelinus. The Hague: Dr.W. Junk Publ., 1980. P. 99–140.
34. Chowdhury M.J., Baldisserotto B., Wood C.M. Tissuespecif ic calcium and metallothionein levels in Rainbow trout chronically acclimated to waterborne of dietary cadmium // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2005. V. 48. No 3. Р. 381–390.
35. Effects of pollution on fish: molecular effects and population responses. Oxford: Blackwell Sci. Ltd., 2003. 77 p.
36. Ellman G.L. Tissue sulf hydryl froups // Arch. Biochem. Biophys. 1959. V. 82. No 70. P. 70–77.
37. Folch J., Lees M., Sloan-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. No 1. P. 497–509.
38. Goth L. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range // Clin. Chimica Acta. 1991. V. 196. P. 143–152.
39. Grosell M., Wood C.M. Cooper uptake across Rainbow trout gills: mechanisms of apical entry // J. Exp. Biol. 2002. V. 205. No 8. Р. 1179–1188.
40. Heath A.G. Water pollution and fish physiology. Boca Raton: CRS press, 1995. 373 p.
41. Hemelraad J., Holwerda D., Herung H. Effect of cadmium in freshwater dams. Interaction with energy metabolism in Anodonta cydnea // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1990. V. 19. No 15. P. 699–703.
42. Houlihan D.F., Mathers E.M., Foster A. Biochemical correlates of growth rate in fish. Fish ecophysiology. L.: Chapman and Hall, 1993. P. 45–71.
43. Kaya H., Akbulut M., Yilmaz S. Influence of sublethal lead concentrations on glucose, serum enzymes and ion levels in Tilapia (Oreochromis mossambicus) // Proc. Of 7 th Int. Conf. of Inform. and communic. technol. in agricult., food and environ. Kavala, 2016. P. 858–866.
44. Knicht J.A., Anderson S., Rawle J.M. Chemical basis of the sulfo-phospho-vanillin reaction for estimating total serum lipids // Clin. Chem. 1972. V. 18. No 3. Р. 199–202.
45. Kooijman S.A .L., Baas J., Bontje D. et. al. Ecotoxicological applications of dynamic energy budget theory // Ecotoxicol. Model.: Emer. Top. Ecotoxicol. 2009. V. 2. P. 237–259.
46. Levesque H.M., Moon T.W., Campbell P.G.C., Honte¬ la A. Seasonal variation in carbohydrate and lipid metabolism of yellow perch (Perca f lavescens) chronically exposed to metals in the field // Aquat. Toxicol. 2002. V. 60. P. 257–267.
47. McKean C.J.P., Deniseger J., Imber B.E., Suther¬ land A.E. Metallothionein-copper relationships as an indication of chronic stress in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) from Vancouver Island, British Columbia, Canada // Can. Tech. Rep. Fish. Aquat. Sci. 1991. V. 1774. No 1. P. 255–296.
48. The effects of social status on life-history variation in juvenile salmon // Can. J. Zool. 1990. V. 68. P. 2630– 2636.
49. Montaser M., Mahfouz M.E., El-Shazly S.A.M. et. al. Toxicity of heavy metals on fish at Jeddah Coast KSA: metallothionein expression as a biomarker and histopathological study on liver and gills // World J. Fish Mar. Sci. 2010. V. 2. No 3. P. 174–185.
50. Newcombe C.P., Jensen J.O.T. Channel suspended sediment and fisheries: a synthesis for quantitative assessment of risk and impact // N. Amer. J. Fish. Manag. 1996. V. 16. P. 693–727.
51. Olsson P.-E., Kling P., Hogstrand C. Mechanisms of heavy metal accumulation and toxicity in fish. Metal metabolism in aquatic environments. Amsterdam: Springer publ., 1998. P. 321–350.
52. Rehulka J., Minarik B., Adamec V., Rehulkova E. Investigations of physiological levels of total plasma protein in Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) // Aquacult. Res. 2005. V. 36. No 1. P. 22–32.
53. Sokolova I.M., Lannig G. Interactive effects of metal pollution and temperature on metabolism in aquatic ectotherms: implications of global climate change // Clim. Res. 2008. V. 37. P. 181–201.
54. Speranza E.D., Colombo J.C. Biochemical composi¬ tion of a dominant detritivorous fish Prochilodus lineatus along pollution gradients in the Paraná-Río de la Plata Basin // J. Fish. Biol. 2009. V. 74. No 6. P. 1226–1244.
55. Thomson A., Hemphill D., Jeejeebhoy K.N. Oxidative stress and antioxidants in intestinal disease // Dig. Dis. 1998. V. 16. P. 152–158.
56. Tiligada E. Chemotherapy: induction of stress responses // Endocrinol. Relat. Cancer. 2006. V. 13. P. 115–124.
57. Water quality guidelines for the protection of aquatic life Can. CME, http://ceqg-rcqe.ccme.ca/; дополни¬ тельный список CCME для Британской Колум¬ бии http://www.env.gov.bc.ca/wat/wq/BCguidelines/ working.htm.
58. Winterbourn С.С., Metodiewa D. The reaction of superoxide with reduced glutathione // Arch. Biochem. Biophys. 1994. V. 314. P. 284–290.
В. В. Халько
ПОЛОВОЙ ДИМОРФИЗМ ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ТУЛОВИЩНЫХ МЫШЦ У ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ УКЛЕЙКИ (Alburnus alburnus L.) (Сypriniformes, Cyprinidae) В РЫБИНСКОМ ВОДОХРАНИЛИЩЕ В ПРЕДНЕРЕСТОВЫЙ ПЕРИОД.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: khalko@ibiw.yaroslavl.ru
Проанализирован половой диморфизм физиолого-биохимических показателей туловищных мышц у производителей уклейки – массового непромыслового вида рыб в Рыбинском водохранилище накануне нереста. Оценены половые различия общего биохимического и липидного состава туловищных мышц, а также его вариабельности у одноразмерных и одновозрастных особей. Установлено, что распределение самок по жирности туловищных мышц носит бимодальный, самцов – мономодальный характер. Вариабельность липидных показателей мышц на уровне совокупных выборок у самок оказалась выше, чем у самцов. Обсуждены возможные причины выявленных особенностей физиолого-биохимических параметров мышечных тканей у разнополых особей уклейки в преднерестовый период.
Ключевые слова: уклейка, липиды, мышцы, водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бабкина И.Б., Петлина А.П., Шестакова А.С. Морфо-экологические особенности уклейки (Alburnus alburnus L.) Нижней Томи // Вестн. Томск. гос. пед. ун-та (TSPU Bulletin). 2013. No 8 (136). C. 61–68.
2. Геодакян В.А. Роль полов в передаче и преобразовании генетической информации // Проблемы передачи информации. 1965. Т. 1. No 1. C. 105–112.
3. Кейтс М. Техника липидологии. Выделение, анализ и идентификация липидов. М.: Мир, 1975. 322 c. (Kates M. Techniques of lipidology. Isolation, analysis and identification of lipids. Amsterdam; L.; N.Y.: North Holland Publ. Comp.; Amer. Elsevier Publ. Co., Inc., 1972. 300 p.).
4. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
5. Лапин В.И., Чернова Е.Г. О методике экстракции жира из сырых тканей рыб // Вопр. ихтиологии. 1970. Т. 10. Вып. 4. C. 753–756.
6. Ляшенко Г.Ф. Уклейка (Alburnus alburnus L.) Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2001. No 1. C. 75–79.
7. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1966. 376 c.
8. Сидоров В.С. Экологическая биохимия рыб. Липиды. Л.: Наука, 1983. 240 с.
9. Сидоров В.С., Лизенко Е.И., Болгова О.М., Нефедова З.А. Липиды рыб. 1. Методы анализа. Тканевая специфичность липидов ряпушки Coregonus albula L. // Лососевые (Salmonidae) Карелии. Петрозаводск: Карельск. фил. АН СССР, 1972. Вып. 1. C. 150–161.
10. Халько В.В. Закономерности формирования продукционных показателей молоди рыб разных экологических групп: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 1983. 24 c.
11. Халько В.В., Комова Н.И. Дифференциация производителей леща в преднерестовый период по биохимическим признакам (на примере липидов) // Экологическая физиология и биохимия рыб: Тез. докл. VII Всесоюз. конф. Ярославль, 1989. Т. 2. C. 203–205.
12. Шатуновский М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. М.: Наука, 1980. 281 с.
13. Шульман Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1972. 368 c.
14. Engelbrecht F.M., Mori F., Anderson I.T. Cholesterol determination in serum. A rapid direct method // S. Afric. Med. J. 1974. No 48. P. 250–256.
15. Folch J., Lees M., Stonley A. A simple method for isolation and purification of total lipids from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. No 1. P. 497–509.
16. Walsh D.E., Banasik O.I., Gilles K.A. Thin-layer chromatographic separation and colorimetric analysis of barley or malt lipid classes and their fatty acids // J. Chromatogr. 1965. V. 17. No 2. P. 278–294.
Е. А. Мамонтова *, Е. В. Лепская **, Е. Н. Тарасова *, М. В. Коваль ** , А. А. Мамонтов *
ХЛОРОРГАНИЧЕСКИЕ ПЕСТИЦИДЫ И ПОЛИХЛОРИРОВАННЫЕ БИФЕНИЛЫ В ТКАНЯХ ЖИЛОЙ ФОРМЫ НЕРКИ ТОЛМАЧЁВСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА, п-ов КАМЧАТКА.
* Институт геохимии им. А.П. Виноградова СО РАН, 664033 Иркутск, ул. Фаворского, 1А, а/я 421
** Камчатский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, 683000 Петропавловск-Камчатский, ул. Набережная, 18
e-mail: elenam@igc.irk.ru
Полученные концентрации хлорорганических пестицидов (ХОП) и полихлорированных бифенилов (ПХБ) в кокани – жилой форме тихоокеанского лосося нерки (Oncorhynchus nerka kennerlyi), Толмачёвского водохранилища на п-ове Камчатка соответствуют уровням, найденным в пресных водоемах фоновых районов мира. Пространственное распределение ПХБ и ХОП в кокани на нерестилище и в пелагиали водохранилища и распределение в органах рыб свидетельствуют об атмосферном поступлении токсикантов и продолжающемся техногенном влиянии, которое возникло при создании и эксплуатации Толмачёвского водохранилища. Токсиканты, поступающие из этих источников в водную толщу, включаются в пищевую цепь водоема. Допустимое годовое потребление населением составляет 10–26 кг филе кокани Толмачёвского водохранилища и 1.2 кг икры нерки оз. Курильское.
Ключевые слова: полихлорированные бифенилы, хлорорганические пестициды, кокани, рыба, п-ов Камчатка.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бугаев В.Ф., Кириченко В.Е. Нагульно-нерестовые озера Азиатской нерки. Петропавловск-Камчатский: Камчатпресс, 2008. 280 с.
2. Галиулин Р.В., Галиулина Р.А. Эколого-геохимическая оценка “отпечатков” стойких хлорорганических пестицидов в системе почва–поверхностная вода // Агрохимия. 2008. No 1. С. 52–56.
3. Гигиенические нормативы ГН 1.2.3111–13 “Гигиенические нормативы содержания пестицидов в объектах окружающей среды (перечень)”. М.: Фед. центр гигиены и эпидемиол. Роспотребнадзора, 2014. 131 с.
4. Карпенко В.И., Андриевская Л.Д., Коваль М.В. Питание и особенности роста тихоокеанских лососей в морских водах. Петропавловск-Камчатский: Камчатск. НИИ рыб. хоз-ва и океанол., 2013. 304 с.
5. Лепская Е.В., Коваль М.В., Базаркина Л.А. и др. Становление и современное состояние экосистемы Толмачёвского водохранилища и акклиматизированной в нем популяции кокани (Oncorhinchus nerka kennerlyi) // Изв. Тихоокеан. н.-и. рыб.-хоз. центра. 2014. Т. 178. С. 95–115.
6. Лукьянова О.Н., Цыганкова В.Ю., Боярова М.Д., Христофорова Н.К. Биотранспорт пестицидов тихоокеанскими лососями в северо-западной Пацифике // Докл. РАН. 2014. Т. 456. No 3. С. 363–365.
7. Мамонтова Е.А., Тарасова Е.Н., Кузьмин М.И. и др. Распределение стойких органических загрязнителей в системе почва – атмосферный воздух в Сибири и на Дальнем Востоке // Геоэкология. 2014. No 5. С. 418–428.
8. Маркевич Г.Н. Результаты интродукции жилой формы нерки Oncorhynchus nerka в Толмачёвское озеро (Камчатка) // Вопр. ихтиологии. 2009. Т. 49. No 1. С. 85–92.
9. Полихлорированные бифенилы (ПХБ) в Байкальском регионе: источники, дальний перенос и оценка риска (результаты гранта INTAS 2000– 00140). Иркутск: Изд-во Ин-та геогр. СО РАН, 2005. 52 с.
10. Приказ Министерства здравоохранения и со¬ циального развития РФ от 2 августа 2010 г. No 593н “Об утверждении рекомендаций по рациональным нормам потребления пищевых продуктов, отвечающим современным требованиям здорового питания”. М.: Фед. центр гигиены и эпидемиол. Роспотребнадзора, 2010. 2 с.
11. Руководство по оценке риска для здоровья населения при воздействии химических веществ, загрязняющих окружающую среду (Р 2.3.10.1920–04). М.: Фед. центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2004. 143 с.
12. Санитарно-эпидемиологические правила и нормативы СанПиН 2.3.2.1078–01 “Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов”. М.: Фед. центр Госсанэпиднадзора Минздрава России, 2002. 273 с.
13. Худолей В.В., Гусаров Е.Е., Клинский А.В. и др. Стойкие органические загрязнители: Пути решения проблемы. СПб.: Ин-т химии Санкт-Петербург. гос. ун-та, 2002. 363 с.
14. Цыганков В.Ю., Боярова М.Д., Лукьянова О.Н., Христофорова Н.К. Гексахлорциклогексан и ДДТ в морских организмах Охотского и Берингова морей // Изв. Тихоокеан.н.-и. рыб.-хоз. центра. 2014. Т. 176. С. 225–232.
15. Чуйко Г.М., Законнов В.В., Морозов А.А. и др. Пространственное распределение и качественный состав полихлорированных бифенилов (ПХБ и хлорорганических пестицидов (ХОП в донных отложениях и леще (Abramis brama L.) Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2010. No 2. С. 98–108.
16. Datta S., Ohyama K., Dunlap D.Y., Matsumura F. Evidence for Organochlorine Contamination in Tissues of Salmonids in Lake Tahoe // Ecotoxicol. and Environ. Safety. 1999. V. 42. P. 94–101.
17. Harner T., Bidleman T.F., Jantunen L.M.M., Mac¬ kay D. Soil-air exchange model of persistent pesticides in the United States cotton belt // Environ. Toxicol. Chem. 2001. V. 20. P. 1612–1621.
18. Hoekstra P.F., O`Hara T.M., Fisk A.T. et al. Trophic transfer of persistent organochlorine contaminants (OCs) within an Arctic marine food web from the southern Beaufort–Chukchi Seas // Environ. Pollut. 2003. V. 124. P. 509–522.
19. Ivanov V., Sandell E. Characterization of poly¬ chlorinated biphenyl isomers in Sovol and Trichlorodiphenyl formulations by high-resolution gas chromatography with electron capture detection and high-resolution gas chromatography – mass spectrometry techniques // Environ. Sci. Technol. 1992. V. 26. P. 2012–2017.
20. Iwata H., Tanabe S., Sakal N., Tatsukawa R. Distribution of Persistent Organochlorines in the Oceanic Air and Surface Seawater and the Role of Ocean on Their Global Transport and Fate // Environ. Sci. Technol. 1993. V. 27. P. 1080–1098.
21. Jaffal A., Givaudan N., Betoulle S. et al. Polychlo¬ rinated biphenyls in freshwater salmonids from the Kerguelen Islands in the Southern Ocean // Environ. Pollut. 2011. V. 159. P. 1381–1389.
22. Johnson A. PCB and Dioxin levels in resident fish from Washington background lakes and rivers. Washington: Department Ecol., 2008. 36 p. www.ecy. wa.gov/biblio/0803102.html.
23. Johnson A., Friese M. An assessment of the chlorinated pesticide background in Washington State freshwater fish and implications for 303(d) listings. Publ. No 13-03-007. Washington: Department Ecol., 2013. 90 p. https://fortress.wa.gov/ecy/publications/SummaryPages/1303007.html.
24. Johnson A., Seiders K., Norton D. An assessment of the PCB and dioxin background in Washington freshwater fish. Washington: Department Ecol., 2010. 80 p. https://fortress.wa.gov/ecy/publications/ SummaryPages/1003007.html.
25. Kozlova T. Additional testing for contaminants in fish used by first nation members in the Okanagan Basin. Prepared for BC Regional first nations environmental contaminants, Health Canada. Westbank, BC: Okanagan Nation Alliance Fish. Department, 2009. 56 p.
26. Ondarza P.M., Gonzalez M., Fillmann G., Miglio¬ ranza K.S.B. Polybrominated diphenyl ethers and organochlorine compound levels in brown trout (Salmo trutta) from Andean Patagonia, Argentina // Chemosphere. 2011. V. 83. P. 1597–1602.
27. O’Toole S., Metcalfe C., Craine I., Gross M. Release of persistent organic contaminants from carcasses of Lake Ontario Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) // Environ. Pollut. 2006. V. 140. P. 102–113.
28. Rae R., Jensen V. Contaminants in Okanagan fish: recent analyses and review of historic data. Final Report. Westbank, BC: Okanagan Nation Alliance Fish. Department, 2007. 57 p.
29. Rowan D.J., Rasmussen J.B. Why don’t Great Lakes fish reflect environmental concentrations of organic contaminants? An analysis of between-lake variability in the ecological partitioning of PCBs an DDT // J. Great Lakes Res. 1992. V. 18. No 4. P. 724–741.
30. Vives I., Grimalt J.O., Ventura M. et al. Age depen¬ dence of the accumulation of organochlorine pollutants in brown trout (Salmo trutta) from a remote high mountain lake (Redor, Pyrenees) // Environ. Pollut. 2005. V. 133. P. 343–350.
И. А. Столбунов, В. В. Кузьмина
СУТОЧНАЯ ДИНАМИКА АКТИВНОСТИ ПЕПТИДАЗ В РАННЕМ ОНТОГЕНЕЗЕ УКЛЕЙКИ Alburnus alburnus (L.) В ПРИБРЕЖНОМ МЕЛКОВОДЬЕ РЫБИНСКОГО ВОДОХРАНИЛИЩА.
Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: sia@ibiw.yaroslavl.ru
Впервые определена суточная динамика активности пептидаз личинок рыб на примере уклейки Alburnus alburnus (L.) как преобладающего по численности вида в открытом и защищенном мелководном прибрежье Рыбинского водохранилища. Выявлено два максимума ферментативной активности слизистой оболочки кишечника личинок рыб: утренний и ночной. Приведены данные по видовому составу и суточной динамике численности личинок рыб в условиях мелководий разного типа.
Ключевые слова: личинки рыб, видовой состав, численность, суточная динамика, активность пептидаз, мелководья, водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ананичев А.В. Аминокислотный состав белков некоторых пресноводных беспозвоночных и рыб // Материалы по биологии и гидрологии волжских водохранилищ. Л.: Наука, 1963. С. 38–41.
2. Васнецов В.В. Этапы развития костистых рыб // Очерки по общим вопросам ихтиологии. М.; Л.: Наука, 1953. С. 207–217.
3. Коблицкая А.Ф. Определитель молоди пресноводных рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1981. 208 с.
4. Кузьмина В.В. Физиология питания рыб. Влияние внешних и внутренних факторов. Ярославль: Принтхаус, 2008. 276 с.
5. Кузьмина В.В., Стрельникова А.П. Влияние суточных ритмов питания на общую амилолитическую активность и активность щелочной фосфатазы кишечника у молоди рыб // Биология внутр. вод. 2008. No 2. С. 81–90.
6. Anson M. The estimation of pepsin, trypsin, papain and cathepsin with hemoglobin // J. Gen. Phys. 1938. V. 22. P. 79–83.
7. Durstewitz D., Seamans J.K., Sejnowski T.J. Dopaminemediated stabilization of delay-period activity in a network model of prefrontal cortex // J. Neurophysiol. 2000. V. 83. No 3. P. 1733–1750.
8. Kane J. The feeding habits of co-occurring cod and haddock larvae from Georges Bank // Mar. Ecol. Prog. 1984. Ser. 16. P. 9–20.
9. McLaren I.A., Avendano P. Prey field and diet of larval cod on Western Bank, Scotland Shelf // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1995. V. 52. P. 448–463.
10. Murray H.M., Perez-Casanova J.C., Gallant J.W. et al. Trypsinogen expression during the development of the exocrine pancreas in winter flounder (Pleuronectes americanus) // Comp. Biochem. Physiol. A. 2004. V. 138. P. 53–59.
11. Rønnestad I., Yúfera M., Ueberschär B. et al. Feeding behaviour and digestive physiology in larval fish: current knowledge, and gaps and bottlenecks in research // Rev. Aquaculture. 2013. V. 5. P. S59–S98.
12. Seamans J.K., Yang C.R. The principal features and mechanisms of dopamine modulation in the prefrontal cortex // Prog. Neurobiol. 2004. V. 74. No l. P. 1–58.
13. Zeytina S., Schulza C., Ueberschär B. Diurnal patterns of tryptic enzyme activity under different feeding regimes in gilt-head sea bream (Sparus aurata) larvae // Aquaculture. 2016. V. 457. P. 85–90.
Е. М. Коргина
ПЕРВАЯ НАХОДКА РЕСНИЧНОГО ЧЕРВЯ Castrada papii Luther, 1963 (Turbellaria, Typhloplanidae) В ФАУНЕ РОССИИ.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: korgina@ibiw.yaroslavl.ru
Дано иллюстрированное описание впервые найденного на территории России представителя ресничных червей Castrada papii Luther, 1963 (Rhabdocoela, Typhloplanoida, Typhloplanidae), приведены сведения по биологии и распространению вида.
Ключевые слова: турбеллярии, Castrada papii, Иваньковское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Коргина Е.М. Фауна турбеллярий водоемов Северо-Двинской системы // Зоол. журн. 1999. Т. 78. No 10. С. 1245–1247.
2. Каталог растений и животных водоемов бассейна Волги. Ярославль: Ярослав. гос. техн. ун-т, 2000. 309 с.
3. Luther A. Die Turbellarien Ostfennoskandiens. IV. Neorhabdocoela 2. Typhloplanoida: Typhloplanidae, Solenopharyngidae und Carcharodopharyngidae // Fauna Fennica. 1963. Bd 16. S. 1–163.
4. Tyler S., Schilling S., Hooge M., Bush L.F. Turbellarian Taxonomic Database. Version 1.7. 2006–2013. http://turbellaria.umaine.edu.
С. Н. Перова, Е. Г. Пряничникова, А. В. Тютин
О РАСШИРЕНИИ АРЕАЛА ОБИТАНИЯ ПРИЧЕРНОМОРСКОГО МОЛЛЮСКА Lithoglyphus naticoides (C. Pfieffer, 1828) И АССОЦИИРОВАННЫХ С НИМ ВИДОВ ТРЕМАТОД В БАССЕЙНЕ ВЕРХНЕЙ ВОЛГИ.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: perova@ibiw.yaroslavl.ru
Причерноморский моллюск Lithoglyphus naticoides (C. Pfieffer, 1828) (Mollusca: Gastropoda: Lithoglyphidae) впервые обнаружен в Угличском водохранилище летом 2013 г. К 2015 г. несколько новых локальных поселений моллюска выявлено в Угличском и Рыбинском водохранилищах, что свидетельствует о его успешной натурализации в бассейне Верхней Волги. При паразитологическом исследовании L. naticoides из этих поселений найдены партениты трех видов трематод.
Ключевые слова: моллюски, Lithoglyphus naticoides, трематоды, новые поселения, чужеродные виды, Угличское водохранилище, Верхняя Волга.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Зинченко Т.Д., Антонов П.И. Биоинвазивные виды макрозообентоса в поверхностных водах бассейна Средней и Нижней Волги и возможные пути их проникновения // Чужеродные виды в Голарктике: Тез. докл. Второго междунар. симп. по изучению инвазийных видов. Рыбинск; Борок, 2005. С. 78–79.
2. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
3. Пирогов В.В. О нахождении Lithoglyphus naticoides в дельте Волги // Зоол. журн. 1972. Т. 51. No 6. С. 912–913.
4. Bij de Vaate A., Jazdzewski K., Ketelaars H.A.M. et al. Geographical patterns in range extension of PontoCaspian macroinvertebrate species in Europe // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2002. V. 59. P. 1159–1174.
5. Butkus R., Šidagytė E., Rakauskas V., Arbačiauskas K. Distribution and current status of non-indigenous mollusc species in Lithuanian inland waters // Aquat. Invasions. 2014. V. 9. No 1. P. 95–103. doi: 10.3391/ ai.2014.9.1.08
6. Perova S.N. Taxonomic composition and abundance of macrozoobenthos in the Rybinsk Reservoir at the beginning of the 21st century // Inland Water Biology. 2012. V. 5. No 2. P. 199–207. doi: 10.1134/ S1995082912020125
7. Tyutin A.V., Verbitsky V.B., Verbitskaya T.I., Medya¬ ntseva E.N. Parasites of alien aquatic animals in the Upper Volga basin // Rus. J. Biol. Invasions. 2013. V. 4. No 1. P. 54–59. #: 10.1134/S2075111713010098
8. Yakovlev V.A., Akhmetzyanova N.S., Yakovleva A.V. Distributional patterns and size-weight parameters of Lithoglyphus naticoides (Gastropoda: Hydrobiidae) in the upper reach of the Kuibyshev Reservoir // Rus. J. Biol. Invasions. 2010. V. 1. No 4. P. 313–322. doi: 10.1134/S2075111710040090
9. Zhgareva N.N. Underyearlings of dreissenid mus¬sels (Dreissenidae, Bivalvia) in the phytophylic communities in the mouth area of the Rybinsk reservoir tributary // Biol. Bull. Rus. Acad. Sci. 2016. V. 43. No 10. P. 1308–1312. doi:10.1134/S106235901610023X.