Журнал "Биология внутренних вод"
№ 1 за 2020 год
В. И. Гонтарьa, *
Мшанки (Bryozoa) Каспийского моря
aЗоологический институт РАН, г. Санкт-Петербург, Россия
e-mail: gontarvi@gmail.com
В Каспийском море распространены пять видов мшанок класса Gymnolaemata и единственный вид Plumatella emarginata класса Phylactolaemata. Гимнолематные мшанки представлены отрядами Ctenostomatida (Amathia caspia, Paludicella articulata, Victorella pavida) и Cheilostomatida (Conopeum grimmi и Lapidosella ostroumovi). Два вида (Conopeum grimmi и Amatia caspia) – каспийские эндемики. Lapidosella ostroumovi впервые отмечена в Каспийском море. Даны систематическое положение, иллюстрированное морфологическое описание и экология выявленных видов.
Ключевые слова: Каспийское море, мшанки, эндемичная фауна, первая находка..
Показать список литературы
Cписок литературы
Абрикосов Г.Г. 1959а. Новый вселенец в Каспийское море // Зоол. ж. Т. 38. № 11. С. 1754.
Абрикосов Г.Г. 1959б. Мшанки Каспийского и Аральского морей // Зоол. ж. Т. 38. № 5. С. 694.
Абрикосов Г.Г. 1969. Тип Мшанки Bryozoa // Атлас беспозвоночных Каспийского моря. М.: Пищ. пром-сть.
Гримм О.А. 1874. Предварительное сообщение о результатах исследования фауны Каспийского моря, произведенного по поручению Петербургского общества естествоиспытателе // Труды Санкт-Петербургского общества естествоиспытателей. СПб., Т. 5. Вып. 2. С. 113.
Гримм О.А. 1876. Каспийское море и его фауна // Труды Арало-Каспийской экспедиции. СПб. Т. 1. Вып. 2. Тетрадь 1. 186 с.
Гонтарь В.И., Тарасов А.Г., Шамионова Н.Ш. 2009. Морфологическая изменчивость, географическое распространение и экология Conopeum grimmi (Cheilostomatida, Anasca) Gontar et Tarasov // Мир науки, культуры и образования. № 7. C. 57.
Гонтарь В.И. 2010. Азовский представитель рода Lapidosella gen. nov. (Cheilostomatida, Anasca) новый вид Lapidosella ostroumovi Gontar и его экология // Мир науки, культуры и образования. № 5(24). C. 274.
Зевина Г.Б. 1957. К вопросу обрастания судов Каспийского моря // Тр. Всес. гидробиол. о-ва. Т. 3. С. 305.
Зевина Г.Б. 1959. Новые организмы в Каспийском море // Природа. № 7. С. 79.
Зевина Г.Б., Кузнецова Н.А. 1965. Роль судоходства в изменении фауны Каспийского моря // Океанология. Т. 5. № 5. С. 518.
Ковалевский А.О. 1870. Заметка о поездке на Каспийское море // Зап. Киев. о-ва естествоиспыт. Т. 1.
Audouin J.V. 1826. Explication sommaire des planches de polypes de l'Egypte et de la Syrie, publiees par Jules-Cesar Savigny. Description de l'Egypte, ou recueil des observations et des recherches qui ont été faites en Egypte pendant l'expédition de l'armée francaise ... Histoire naturelle, T. 1, 4, partie: 339. (Imprimerie Impériale, Paris).
Blainville H.M.D. 1834. Manuel d'Actinologie ou de Zoophytologie. Paris: Levrauly.
Bobin G. 1962. Les Espéces Francais du Genre CONOPEUM Gray (Briozoirés, Chilostomes) // Cahiers de Biologia Marine. T. 3. № 4. Р. 275.
Busk G. 1854. Catalogue of marine Polyzoa in the collection of the British Museum, II. Cheilostomatida (part). L.: Trustees of the British Museum (Natural History). Р. 55.
Cook P. 1962. The early larval development of Membranipora seurati (Canu) and Electra crustulenta (Pallas), Polyzoa // Cahiers de Biologia Marine. T. 3. № 1. Р. 57.
Gray J.E. 1848. List of the specimens of British animals in the collections of the British Museum. Part 1. Centrionae or radiated animals L.: Trustees of the British Museum. V. 173. Р. 91.
Jebram D. 1977. Monsterzooide and Doppelpolypide bei fossilen and rezenten Cheilostomatida Anasca (Bryozoa) // Abh. Verh. Naturwiss. Ver. Hamburg. № 20. Р. 151.
Kasaei S. M., Nasrolahi A., Behrooz A., Taylor P.D. 2017. Bryozoa of the southern Caspian Sea, Iranian coast // Check List. № 13(4). P. 305.
Pallas P.S. 1771. Reise durch verschiedene Provinzen des Rußischen Reichs. Erster Theil. St. Petersburg (Kayserliche Academie der Wissenschaften).
Prenant M., Bobin G. 1966. Bryozoaires, deuxieme partie. Chilostomes Anasca // Faune de France. V. 68. P. 398.
В. Г. Гагаринa, *
Новый род и два новых для науки вида свободноживущих нематод (Nematoda, Monhysterida) из искусственных водоемов Вьетнама
aИнститут биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл.
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru
Приведено описание и рисунки нового рода и двух новых для науки видов свободноживущих нематод, обнаруженных в грунте четырех искусственных водоемов для выращивания креветок во Вьетнаме. Paradaptonema gen. n. морфологически близка к роду Daptonema Cobb, 1920, но характеризуется наличием трех желез вокруг кардия, отсутствующих у Daptonema, а также своеобразную структуру полового аппарата у самцов. Paradaptonema securum sp. n. характеризуется мелкокольчатой кутикулой, сравнительно длинными внешними губными щетинками, наличием поствульварной клетки и своеобразной формой спикул и рульков. Thalassomonhystera longisoma sp. n. морфологически близка к Th. minor Gagarin, Nguyen Thi Thu, 2008 и Th. elegans Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2013, но отличается от них длиной и стройностью тела, а также размерами внешних губных щетинок и спикул.
Ключевые слова: Вьетнам, искусственные водоемы для выращивания креветок, свободноживущие нематоды, Paradaptonema gen.n., Paradaptonema securum gen.n., sp.n., Thalassomonhystera longisoma sp.n..
Показать список литературы
Cписок литературы
Парамонов А.А. 1962. Основы фитогельминтологии. Москва: Изд-во АН СССР. Т. 1. 479 с.
Fonseca G., Decraemer W. 2008. State of the art of the free-living marine Monhysteridae (Nematoda) // J. Mar. Biol. Assoc. U. K. V. 88. № 7. P. 1371.
Gagarin V.G. 2017. An annotated checklist of the free-living nematodes from mangrove thickest of Vietnam // Zootaxa. V. 4403(2). P. 261.
Gusakov V.A., Gagarin V.G. 2017. An annotated checklist of the main representatives of meiobenthos from inland water bodies of Central and Southern Vietnam. I. Roundworms (Nematoda) // Zootaxa. V. 4300(1). P. 1.
Seinhorst J.V. 1979. A rapid method for the transfer of nematodes from fixative to anhydrous glycerin // Nematologica. V. 4. P. 67.
Л. Г. Корневаa, *, Г. Ю. Глущенкоb, **
Состав и сезонная сукцессия фитопланктона Таганрогского залива Азовского моря и Нижнего течения р. Дон в условиях изменяющегося климата
aИнститут биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
bЮжный научный центр РАН, Ростов-на-Дону, Россия
e-mail: korneva@ibiw.yaroslavl.ru **e-mail: gluschenko_gala@mail.ru
Принята к публикации 6.02.2019 г.
В январе–ноябре 2017 г. исследован фитопланктон Таганрогского залива Азовского моря и нижнего течения р. Дон. Идентифицировано 210 видов эукариотических водорослей и цианопрокариот. Анализ таксономического и эколого-географического состава, сезонной динамики биомассы и размерной структуры фитопланктона показал, что соотношение крупных таксономических и эколого-географических групп в альгофлоре не изменилось по сравнению с предыдущими годами исследования 1980-е – начало 2000-х гг. В условиях современной аридизации климата в составе альгоценозов увеличились пропорция миксотрофных фитофлагеллят и цианопрокариот из “планктотрихетового” комплекса и доля мелкоразмерных видов. Основной фактор, влияющий на формирование видового богатства, общей биомассы и структуры фитопланктона – соленость воды. Максимальное разнообразие и биомасса фитопланктона прослеживались в зоне хорогалиникума.
Ключевые слова: фитопланктон, сезонная сукцессия, размерная структура, факторы среды, соленость, климат, Таганрогский залив Азовского моря, Нижний Дон.
Показать список литературы
Cписок литературы
Брянцева Ю.В., Лях А.М., Сергеева А.В. 2005. Расчет объемов и площадей поверхности одноклеточных водорослей Черного моря. Севастополь, Препринт Институт биологии южных морей НАН Украины.
Вассер С.П., Кондратьева Н.В., Масюк Н.П., Паламарь-Мордвинцева Г.М., Ветрова З.И., Кордюм Е.Л., Мошкова Н.А., Приходькова Л.П., Коваленко О.В., Ступина В.В., Царенко П.М., Юнгер В.П., Радченко М.И., Виноградова О.Н., Бухтиярова Л.Н., Разумна Л.Ф. 1989. Водоросли: справочник. Киев: Наук. думка.
Глущенко Г.Ю., Лужняк О.Л. 2013. Роль водорослей разных размерных фракций в общей биомассе фитопланктона Таганрогского залива // Вестник Южного научного центра. Т. 9. № 1. С. 42.
Голлербах М.М., Коссинская Е.К., Полянский В.И. 1953. Определитель пресноводных водорослей СССР. М.: Сов. наука. Вып. 2.
Григоренко К.С., Московец А.Ю., Аршакян Г.Г., Мирко А.C. 2016. О взаимодействии пресных речных вод р. Дон и осолоненных вод Таганрогского залива Азовского моря // Наука юга России. Т. 12. № 1. С. 107.
Гусельникова Н.Е., Черкасова М.Н., Власова С.Н., Ларин В.Е., Щеголькова Н.М. 2007. Методика прямого учета бактерий в пробах воды с применением флуоресцентного красителя // Питьевая вода. № 1. С. 22–23.
Забелина М.М., Киселев И.А., Прошкина-Лавренко А.И., Шешукова В.С. 1950. Диатомовый анализ: Определитель ископаемых и современных диатомовых водорослей. Кн. 3. Л.: Госгеолиздат.
Заика В.Е., Шевченко В.А., Булатов К.В. 1989. Экология морского фототрофного пикопланктона. М.: Научный центр биологических исследований.
Ковалева Г.В. 2016. История изучения микроводорослей Азовского моря. Обзор // Наука Юга России. Т. 12. № 3. С. 51.
Корнева Л.Г. 2015. Фитопланктон водохранилищ бассейна Волги. Кострома: Костромской печатный дом.
Крахмальный А.Ф. 2011. Динофитовые водоросли Украины (иллюстрированный определитель). Киев: Альтерпрес.
Лужняк О.Л. 2017. Современное состояние фитопланктона нижнего течения реки Дон в условиях антропогенного преобразования стока // Вода: химия и экология. № 9. C. 11.
Макаревич П.Р. 2007. Планктонные альгоценозы эстуарных экосистем. Баренцево, Карское и Азовское моря. Москва: Наука.
Макаревич П.Р., Ларионов В.В. 2004. Сезонная сукцессия фитопланктонного сообщества Таганрогского залива // Комплексный мониторинг среды и биоты Азовского бассейна. Т. 6. Апатиты: Кольск. науч. центр. С. 106.
Матвiэнко O.М. 1965. Визначник прiсноводних водоростей Українскої РСР. ?III. Ч. 1. Киiв: Наук. думка.
Матишов Г.Г., Григоренко К.С., Московец А.Ю. 2017. Механизмы осолонения Таганрогского залива в условиях экстремально низкого стока Дона // Наука юга России. Т. 13. № 1. С. 35.
Матишов Д.Г., Ильин Г.В., Моисеев Д.В. 2007. Сезонная термохалинная изменчивость водных масс в Таганрогском заливе Азовского моря // Вестник Южного научного центра. Т. 3. № 1. С. 28.
Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. 1975. Москва: Наука.
Прошкина-Лавренко A.И. 1963. Диатомовые водоросли планктона Азовского моря. Москва: Наука.
Студеникина Е.И., Мирзоян З.А., Мартынюк М.Л., Сафронова Л.М., Фроленко Л.Н., Шляхова Н.А., Афанасьев Д.Ф. 2005. Методы сбора и обработки гидробиологических проб // Методы рыбохозяйственных и природоохранных исследований в Азово-Черноморском бассейне. Краснодар: АзНИИРХ, С. 50.
Царенко П.М. 1990. Краткий определитель хлорококковых водорослей Украинской ССР. Киев: Наук. думка.
Bellinger E.G., Sigee D.C. 2010. Freshwater Algae: Identification and Use as Bioindicators. Wilts: Chippenham.
Guiry M.D., Guiry G.M. 2018. AlgaeBase. World–wide electronic publication. Galway: National University of Ireland Press. Available at: http://www.algaebase.org (accessed 08.05.2018).
Komárek J. 2013. Süßwasserflora von Mitteleuropa: Cyanoprokaryota: Heterocytous Genera. Bd 19/3. Berlin: Springer.
Komárek J., Anagnostidis K. 1998. Süßwasserflora von Mitteleuropa: Cyanoprokaryota: Chroococcales. Bd 19/1. Heidelberg: Spektrum.
Komárek J., Anagnostidis K. 2005. Süßwasserflora von Mitteleuropa: Cyanoprokaryota: Oscillatoriales. Bd 19/2. München: Elsevier.
Reynolds C.S., Huszar V., Kruk C., Naselli-Flores L., Melo S. 2002. Towards a functional classification of the freshwater phytoplankton // J. Plankton Res. V. 24. № 5. P. 417.
Skarlato S.O., Telesh I.V. 2017. The development of the protistan species-maximum concept for the critical salinity zone // Russ. J. Mar. Biol. V. 43. № 1. Р. 1.
Tomas C.R. 1997. Identifying Marine Phitoplankton. San Diego: Academic Press.
Л. С. Кращукa, *, С. В. Шимараеваa, Е. А. Зиловa
Пространственно-временные изменения фитопланктона в озере Байкал в период позднего лета. I. Температура воды и численность фитопланктона
aНаучно-исследовательский институт биологии Иркутского государственного университета, Иркутск, Россия
e-mail: Krashchuk@gmail.com
Приведены результаты изучения температуры воды и численности фитопланктона в разных районах оз. Байкал по данным пятнадцати экспедиций, проводившихся в период позднего лета с 1994 по 2013 гг. Проанализированы пространственное распределение и межгодовая динамика численности фитопланктона. Показано, что общая численность фитопланктона в период позднего лета высока. Ее среднее многолетнее значение для всей открытой части озера достигает 532±17 тыс. кл./л. В Южном Байкале более высокой средней численностью фитопланктона выделяется западное прибрежье, в Среднем и Северном Байкале – восточное. Не выявлено значительных различий между котловинами озера по уровню развития позднелетнего фитопланктона. Средняя многолетняя численность фитопланктона в южной, средней и северной котловинах различается лишь в ≤1.2 раза, но в средней котловине она достоверно выше, чем в северной. В многолетней динамике не зарегистрировано значимого повышения численности позднелетнего фитопланктона ни в одном из районов озера. Зависимость общей численности фитопланктона от температуры воды слабая, коэффициенты корреляции между среднегодовыми значениями этих показателей ≤0.50.
Ключевые слова: температура воды, фитопланктон, многолетняя динамика численности, Байкал.
Показать список литературы
Cписок литературы
Антипова Н.Л. 1963. Сезонные и годовые изменения фитопланктона в озере Байкал // Труды Лимнологического института СО АН СССР. Т. 2(22). Ч. 2. С. 12.
Антипова Н.Л. 1974. Межгодовые изменения в фитопланктоне Байкала в районе Больших Котов за период 1960–1970 гг. // Продуктивность Байкала и антропогенные изменения его природы. Иркутск: Изд-во БГНИИ при ИГУ, С. 75.
Антипова Н.Л., Кожов М.М. 1953. Материалы по сезонным и годовым колебаниям численности руководящих форм фитопланктона оз. Байкал // Труды Иркутского государственного университета. Сер. Биол. Т. 7. Вып. 1, 2. С. 63.
Байкаловедение. 2012. Новосибирск: Наука.
Вотинцев К.К., Мещерякова А.И., Поповская Г.И. 1975. Круговорот органического вещества в озере Байкал. Новосибирск: Наука.
Закс Л. 1976. Статистическое оценивание. Москва: Статистика.
Кожов М.М. 1972. Очерки по байкаловедению. Иркутск: Вост.-Сиб. кн. изд-во.
Кожова О.М., Кобанова Г.И. 1974. Аномальные явления в структуре фитопланктона Байкала // Оценка состояния водных и наземных экологических систем. Новосибирск: Наука. С. 24.
Кожова О.М., Мельник Н.Г. 1978. Инструкция по обработке проб планктона счетным методом. Иркутск: Изд-во Иркутского университета.
Мейер К.И. 1930. Введение во флору водорослей оз. Байкала // Бюлл. Моск. о-ва испытателей природы. Отд. Биол. Т. 39. С. 179.
Поповская Г.И. 1977. Динамика фитопланктона пелагиали (1964–1974) // Биологическая продуктивность пелагиали Байкала и ее изменчивость. Новосибирск: Наука. С. 5.
Поповская Г.И. 1991. Фитопланктон Байкала и его многолетние изменения (1958–1990 гг.): Диссертация на соискание ученой степени доктора биол. наук. Новосибирск. 32 с.
Поповская Г.И., Усольцева М.В., Домышева В.М., Сакирко М.В., Блинов В.В., Ходжер Т.В. 2015. Весенний фитопланктон пелагиали озера Байкал в 2007–2011 годы // География и природные ресурсы. № 3. С. 74
Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. 2005. Количественная гидроэкология: методы, критерии, решения. М.: Наука. Кн. 1.
Яснитский В.Н. 1924. Планктон озера Байкал в районе Култука и Слюдянки // Зап. Сиб. отд. Русского геогр. о-ва.. Вып. 47. № 3. С. 142.
Coats R., Perez-Losada J., Schladow G., Richards R.,Goldman C. 2006. The warming of lake Tahoe // Climatic Change. V. 76. P. 121.
Goldman C.R., Jassby A., Powell T. 1989. Interannual fluctuations in primary production: Meteorological forcing at two subalpine lakes // Limnol., Oceanogr. V. 34. P. 310.
Hajnal E., Padisak J. 2008.Analysis of Long-Term Ecological Status of Lake Balaton Based on the ALMOBAL Phytoplankton Database // Hydrobiologia. V. 599(1). P. 227.
Huber V., Adrian R., Gerten D. 2008. Phytoplankton response to climate warming modified by trophic state // Limnol., Oceanogr. V. 53(1). P. 1.
Izmest’eva L.R., Moore M.V., Hampton S.E. et al. 2016. Lake-wide physical and biological trends associated with warming in lake Baikal // Journal of Great Lakes Research. V. 42. P. 6.
Kalff J. 2002.Limnology: Inland Water Ecosystems. New Jersey: Prentice Hall. 2002..
Kraemer B. M., Anneville O., Chandra S, Dix M. et al. 2015.Morphometry and average temperature affect lake stratification responses to climate change // Geophysical Research Letters. V. 42. № 12. P. 4981. https://doi.org/10.1002/2015GL064097
Kraemer B.M., Chandra S., Dell A.I. et al. 2017. Global patterns in lake ecosystem responses to warming based on the temperature dependence of metabolism // Global Change Biology. V. 23. № 5. P. 1881. https://doi.org/10.1111/gcb.13459
O'Reilly C.M., Sharma S., Gray D.K. et al. 2015. Rapid and highly variable warming of lake surface waters around the globe // Geophysical Research Letters. V. 42. https://doi.org/10.1002/2015GL066235
Parker B.R., Vinebrooke R.D., Schindler D.W. 2008. Recent climate change extremesalter alpine lake ecosystems // PNAS. V. 108. P. 12927.
Salmaso N. 2005.Effects of climatic fluctuations andvertical mixing on the interannual trophic variability of Lake Garda, Italy // Limnol., Oceanogr. 2005. V. 50. P. 553.
Schwoerbel J., Brendelberger H. 2005. Einführung in die Limnologie. 9 Auflage. München: Elsevier.
Sharma S., Gray D.K., Read J.S. et al. 2015. A global database of lake surface temperatures collected by in situ and satellite methods from 1985–2009 // Scientific Data. V. 2. 150008. 19 p. https://doi.org/10.1038/sdata.2015.8.
Tibby J., Tiller D. 2007. Climate-water quality relationships in three Western Victorian (Australia) lakes 1984–2000 // Hydrobiologia. V. 591. P. 219.
Verburg P., Hecky R.E., King H. 2003.Ecological consequences of a century of warming in Lake Tanganyika // Science. V. 301. P. 505.
Wetzel R.G. 2001. Limnology: Lake and River Ecosystems. Tokyo: Academic Press.
Weyhenmeyer G.A., Westöö A.-K., Willen E. 2008. Increasingly ice-free winters and their effects on water quality in Sweden’s largest lakes // Hydrobiologia. V. 599(1). P. 111.
Weyhenmeyer G.A. 2008.Rates of change in physical and chemical lake variables – are they comparable between large and small lakes? // Hydrobiologia. V. 599. P. 105.
Winder M., Hunter D.A. 2008. Temporal organization of phytoplankton communities linked to physical forcing // Oecologia. V. 156(1). P. 179.
Winder M., Renter J.E., Schladow S.G. 2008. Lake warming favours small-sized planktonic diatom species // Proc. Royal Soc. BV. 276(1656). P. 427.
Zohary T. 2004.Changes to the phytoplankton assemblage of Lake Kinneret after decades of a predictable, repetitive pattern // Freshwater Biol. V. 49(10). P. 1355.
А.В. Крылов
Распределение и межгодовые изменения зоопланктона Дургунского водохранилища и прилегающих водных объектов (Западная Монголия)
aИнститут биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
e-mail: krylov@ibiw.ru
Представлены количественные и структурные характеристики зоопланктона разнотипных участков водной системы, включающей озеро, протоку и водохранилище. Показано, что в литоральной зоне озера и водохранилища количество видов и численность сообществ больше, а биомасса меньше, чем в центральной зоне. В прибрежье мелководного озера основой численности были Rotifera, водохранилища – Rotifera и Cladocera; в центре озера основу биомассы представляли Cladocera и Copepoda, водохранилища – Copepoda. Наибольшим видовым богатством зоопланктона среди всех изученных объектов характеризовалась приплотинная зона водохранилища. В пределах водохранилища максимальные численность и биомасса зоопланктона отмечены в верховье, где сформировалась зона седиментации. В целом для системы исследованных водных объектов максимальными количественными показателями отличалось сообщество озера. Наиболее яркие межгодовые изменения наблюдались при увеличении температуры воды: в озере снижалось количество видов зоопланктона, в его литоральной зоне увеличивалась численность за счет Rotifera, в центральной зоне – биомасса за счет Cladocera; в приплотинном плесе водохранилища, напротив, повышались количество видов, численность и биомасса сообщества за счет Copepoda.
Ключевые слова: зоопланктон, система озеро – протока – водохранилище, распределение, температура воды .
Показать список литературы
Cписок литературы
Безносов В.Н., Кучкина М.А., Суздалева А.Л. 2002. Исследование процесса термического эвтрофирования в водоемах-охладителях АЭС // Водн. ресур. Т. 29. № 5. С. 610.
Вайнштейн Б.А. 1976. Об оценке сходства между биоценозами // Тр. Инст. биол. внутр. вод, акад. наук СССР. Вып. 31(34). Ленинград: Наука. С. 156.
Веригин Б.В. 1977. О явлении термического евтрофирования водоемов // Гидробиол. ж. Т. 13. № 5. С. 98.
Думнич Н.В., Крылов А.В. 2002. Зоопланктон // Современное состояние экосистемы Шекснинского водохранилища. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. тех. ун-та. С. 120.
Копылов А.И., Лазарева В.И., Минеева Н.М., Масленникова Т.С., Стройнов Я.В. 2012. Влияние аномально высокой температуры воды на развитие планктонного сообщества водохранилищ Средней Волги летом 2010 г. // Докл. акад. наук. Т. 442. № 1. С. 133.
Лимнология и палеолимнология Монголии // Биологические ресурсы и природные условия Монголии: Труды Совместной Российско-Монгольской комплексной биологической экспедиции РАН и АНМ. 2014. Т. 60. Москва: Издательский дом “Типография Россельхозакадемии”. С. 144.
Луферова Л.А. 1966. Формирование зоопланктона Череповецкого водохранилища // Тр. ИБВВ АН СССР. Вып. 12(15). Ленинград: Наука. С. 68.
Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. 1975. Москва: Наука. 240 с.
Ривьер И.К. 1988. Особенности функционирования зоопланктонных сообществ водоемов разных типов // Тр. Инст. биол. внутр. вод, акад. наук СССР. Вып. 55(58). Ленинград: Наука. С. 80.
Ривьер И.К. 1993. Современное состояние зоопланктона Рыбинского водохранилища // Тр. Инст. биол. внутр. вод, акад. наук СССР. Вып. 67(70). Санкт-Петербург: Гидрометеоиздат. С. 205.
Сиренко Л.А. 1981. Эвтрофирование континентальных водоемов и некоторые задачи по его контролю // Научные основы контроля качества вод по гидробиологическим показателям. Ленинград: Гидрометеоиздат. С. 137.
Углубленный обзор политики и программ в области энергоэффективности: Монголия. Секретариат Энергетической Хартии. 2011. Boulevard de la Woluwe, 56. B-1200. Belgium: Brussels.
Д. М. Безматерныхa, *, О. Н. Вдовинаa
Трофическая структура сообществ донных макробеспозвоночных озер различного уровня минерализации
aИнститут водных и экологических проблем СО РАН, Барнаул, Алтайский край, Россия
e-mail: bezmater@iwep.ru
Рассмотрена трофическая структура сообществ донных макробеспозвоночных озер различного уровня минерализации юга Обь-Иртышского междуречья – от олигогалинных до гипергалинных. В 48 изученных озерах выявлено четыре трофические группы макробеспозвоночных: 1. собиратели-детритофаги и факультативные фильтраторы, 2. соскребатели, 3. размельчители, 4. хищники. Показано, что при увеличении солености озерных вод меняется доля различных трофических групп в таксономическом составе и биомассе сообществ макробеспозвоночных.
Ключевые слова: донные макробеспозвоночные, трофическая структура, соленость, озера..
Показать список литературы
Cписок литературы
Батурина М.А., Лоскутова О.А., Щанов В.М. 2014. Структура и распределение зообентоса озер Харбейской системы // J. Sib. Fed. Univ., Biol. V. 7. P. 332.
Беляков В.П., Скворцов В.В. 1994. Макро- и мейобентос, их продукция // Особенности структуры экосистем озер Крайнего Севера (на примере озер Большеземельской тундры). Санкт-Петербург: Наука.
Благовидова Л.А. 1973. Влияние факторов среды на зообентос озер юга Западной Сибири // Гидробиол. ж. Т. 9. № 1. С. 55.
Вдовина О.Н., Безматерных Д.М. 2015. Фауна водных макробеспозвоночных озер юга Обь-Иртышского междуречья // Известия Алтайского отделения Русского географического общества. № 3. С. 46.
Водоемы Алтайского края. 1999. Новосибирск: Наука.
Гусаков В.А. 2007. Мейобентос Рыбинского водохранилища. Москва: Товарищество научных изданий КМК.
Долматова Л.А., Котовщиков А.В. 2013. Оценка экологического состояния озер Новосибирской области по химическому составу воды и пигментным характеристикам фитопланктона // Вода: химия и экология. № 7. С. 28.
Емельянова Л.В. 1994. Гаммариды литорали днепровских водохранилищ. Киев: Наукова думка.
Жукова О.Н., Безматерных Д.М. 2013. Минерализация как фактор формирования зообентоса озер юга Обь-Иртышского междуречья // Тр. Зоол. ин-та РАН. Прил. № 3. С. 120.
Зинченко Т.Д., Головатюк Л.В., Выхристюк Л.А., Шитиков В.К. 2010. Разнообразие и структура сообществ макрозообентоса высокоминерализованной р. Хара (Приэльтонье) // Поволжский экологический журнал. № 1. С. 14.
Кириллов В.В., Безматерных Д.М., Зарубина Е.Ю., Митрофанова Е.Ю., Кириллова Т.В., Ермолаева Н.И., Долматова Л.А., Ким Г.В., Котовщиков А.В., Соколова М.И., Жукова О.Н. 2008. Состав и структура экосистем степных озер Алтайского края в 2008 г. // Наука – Алтайскому краю. Барнаул: Изд-во Азбука. Вып. 2. С. 237.
Кириллов В.В., Зарубина Е.Ю., Безматерных Д.М., Ермолаева Н.И., Кириллова Т.В., Яныгина Л.В., Долматова Л.А., Котовщиков А.В., Жукова О.Н., Соколова М.И. 2009. Сравнительный анализ экосистем разнотипных озер Касмалинской и Кулундинской долин древнего стока // Наука – Алтайскому краю. Барнаул: Изд-во Азбука. Вып. 3. С. 311.
Кириллов В.В., Зарубина Е.Ю., Котовщиков А.В. Безматерных Д.М., Ермолаева Н.И., Кириллова Т.В., Долматова Л.А., Жукова О.Н., Соколова М.И. 2010. Состав и структура водных экосистем бассейна реки Бурлы в 2010 году // Наука – Алтайскому краю. Барнаул: Изд-во Алтайский дом печати. Вып. 4. С. 239.
Курашов Е.А. 1994. Мейобентос как компонент озерной системы. Санкт-Петербург: Алга-фонд.
Монаков А.В. 1998. Питание пресноводных беспозвоночных. Москва: Институт проблем экологии и эволюции РАН.
Никитенко Е.В. 2014. Макрозообентос водоемов долины Восточного Маныча: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок.
Опыт комплексного изучения и использования Карасукских озер. 1982. Новосибирск: Наука.
Поползин А.Г. 1967. Озера Обь-Иртышского бассейна (Зональная комплексная характеристика). Новосибирск: Зап.-Сиб. кн. изд-во.
Прокин А.А. 2008. Водные жесткокрылые (Coleoptera) малых рек Европейской части России: разнообразие, биоценотическая и индикационная роль // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Лекции и матер. докл. Всерос. шк.-конф. Борок, 18–21 ноября. Ярославль. С. 38.
Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. 1992. Санкт-Петербург: Гидрометеоиздат.
Савченко Н.В. 1997. Озера южных равнин Западной Сибири. Новосибирск: Издательство Сибирского отделения РАН.
Удалов А.А., Бурковский И.В., Мокиевский В.О., Столяров А.П., Мазей Ю.А., Сабурова М.А., Чертопруд М.В., Чертопруд Е.С., Ильинский В.В. 2004. Изменение основных характеристик микро-, мейо- и макробентоса по градиенту солености в эстуарии Белого моря // Океанология. Т. 44. № 4. С. 549.
Хлебович В.В. 1974. Критическая соленость биологических процессов. Ленинград: Наука.
Цихон-Луканина Е.А. 1987. Трофология водных моллюсков. Москва: Наука.
Экология озера Чаны. 1986. Новосибирск: Наука.
Электронный учебник по статистике. 2012. http://www.statsoft.ru/home/textbook/default.htm
Яковлев В.А. 2005. Пресноводный зообентос северной Фенноскандии (разнообразие, структура и антропогенная динамика). Апатиты: Изд-во Кольск. науч. центра РАН. Ч. 2.
Яковлев В.А. 2000. Трофическая структура зообентоса – показатель состояния водных экосистем и качества воды // Водные ресурсы. Т. 27. № 2. С. 237.
Barahona J., Millon A., Velasco J. 2005. Population dynamics, growth and production of Sigara selecta (Fieber, 1848) (Hemiptera, Corixidae) in a Mediterranean hypersaline stream // Freshwater Biol. V. 50. P. 2101.
Bezmaternykh D.M., Zhukova O.N. 2013. Composition, structure and factors of formation of communities of benthic invertebrates in lakes of the South of the Ob-Irtysh interfluve // Russ. J. Ecol. V. 44. № 2. Р. 170. https://doi.org/10.1134/S1067413613020057
Cooper R.N., Wissel B. 2012. Interactive effects of chemical and biological controls on food-web composition in saline prairie lakes // Aquat. Biosyst. V. 8. № 29. P. 1. https://doi.org/ 10.1186/2046-9063-8-29
Cummins K.W. 1973. Trophic relation in aquatic insects // Ann. Rev. Entomol. V. 8. P. 183.
Hädicke C., Rebet D., Kment P. 2017. The diversity of feeding habits recorded for water boatmen (Heteroptera: Corixoidea) world-wide with implications for evaluating information on the diet of aquatic insects // Eur. J. Entomol. V. 114. P. 147. https://doi.org/10.14411/eje.2017.020
Hammer U.T. 1986. Saline Lake Ecosystems of the World. Dordrecht: Dr. W. Junk Publishers.
Kipriyanova L.M., Yermolaeva N.I., Bezmaternykh D.M., Dvurechenskaya S.Y., Mitrofanova E.Y. 2007. Changes in the biota of Chany Lake along a salinity gradient // Hydrobiologia. V. 576. № 1. P. 83. https://doi.org/10.1007/s10750-006-0295-9
Merritt R.W., Cummins K.W., Berg M.B. 2008. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. Dubuque: Kendall Hunt Publishing.
Merritt R.W., Cummins K.W., Berg M.B. 2017. Trophic Relationships of Macroinvertebrates // Methods in Stream Ecology. V. 1. Ecosystem Structure. Cambridge: Academic Press. P. 413.
Rawson D.S., Moore J.E. 1944. The saline lakes of Saskatchewan // Can. J. Res. D. V. 22. Р. 141.
Silina A.E., Prokin A.A. 2008. The trophic structure of macrozoobentos in march waterbodies of the forest-steppe zone in the Middle Russian Hills // Inland Water Biology. V. 1. № 3. Р. 231.
Specziar А., Biro P. 1998. Spatial distribution and short-term changes of benthic macrofauna in Lake Balaton (Hungary) // Hydrobiologia. V. 389. P. 203.
Timm Н., Mols Т. 2005. Macrozoobenthos of Lake Verevi // Hydrobiologia. V. 547. P. 185. https://doi.org/10.1007/s10750-005-4159-5
Vdovina O.N., Bezmaternykh D.M. 2016. Peculiarities of Macrozoobenthos in Lakes of Different Mineralization of the Southern Section of the Ob-Irtysh Interfluve // Hydrobiological J. V. 52. №. 3. Р. 65. https://doi.org/10.1615/HydrobJ.v52.i3.60
Williams W.D. 1998. Salinity as a determinant of the structure of biological communities in salt lakes // Hydrobiologia. V. 381. Р. 191.
Wolfram G., Donabaum K., Schagerl M., Kowarc V. 1999. The zoobenthic community of shallow salt pans in Austria – preliminary results on phenology and the impact of salinity on benthic invertebrates // Hydrobiologia. V. 408/409. Р. 193.
И. А. Барышев1, *
Зообентос плесовых участков порожистых водотоков: состав, обилие и трофическая структура (на примере Восточной Фенноскандии)
1Институт биологии КарНЦ РАН Федерального исследовательского центра КарНЦ РАН, Петрозаводск, Республика Карелия
e-mail: baryshev@bio.krc.karelia.ru
Исследованы состав и обилие зообентоса, выявлена структура сообществ донных беспозвоночных в условиях влияния биотопических, гидрологических и климатического факторов. Материал (106 количественных проб из 15 речных бассейнов, 61.6–67.1° с.ш.) собирали с 2003 по 2017 гг. на плесах порожистых рек. Основа фауны cформирована 151 видом, из них Diptera – 36 видов, Trichoptera – 23, Bivalvia – 21 и Ephemeroptera – 19. Наибольшая встречаемость в пробах отмечена для представителей Chironomidae (89%), Oligochaeta (72%), Sphaeriidae (58%), Ephemeroptera (40%), Trichoptera (28%). Разнообразие сообществ плесов было низким по сравнению с порогами. Обилие зообентоса многократно варьирует по участкам (0.06–42.6 тыс. экз./м2 и 0.06–100.8 г/м2). Средние значения (3106±642 экз./м2 и 6.6±1.27 г/м2) сопоставимы с обилием зообентоса порогов. Основу биомассы формировали Bivalvia (Euglesa spp.), Gastropoda (Radix intermedia, Gyraulus borealis), Diptera (Chironominae spp., Dicranota bimaculata) и Trichoptera (Brachycentrus subnubilus, Hydropsyche contubernalis borealis). Наименьшая биомасса зообентоса выявлена в плесах ручьев (1.4±0.37 г/м2), а наибольшая – в медиали рек (9.5±2.52 г/м2). Обнаружены локальные скопления (4% проб, преимущественно в медиали) крупных моллюсков (Anodonta cygnea, Unio pictorum, U. tumidus) с многократно увеличенной биомассой (0.5–3.6 кг/м2 при плотности 80–120 экз./м2). Из функциональных групп в составе зообентоса преобладали коллекторы-собиратели (32–60% биомассы), доли групп менялись в зависимости от особенностей биотопа, в частности характера грунта. Отмечено увеличение биомассы зообентоса в южной части региона – с 2.7±0.48 г/м2 севернее 65° с.ш. до 8.6±1.82 г/м2 южнее 63° с.ш. Сравнение структуры зообентоса плесов порожистых рек Фенноскандии с таковой в равнинных реках других территорий не выявило принципиальных различий, что указывает на важность локальных гидрологических и других факторов в формировании состава и обилия сообществ донных беспозвоночных.
Ключевые слова: донные беспозвоночные, фауна, сообщества, биомасса, Республика Карелия, Кольский полуостров..
Показать список литературы
Cписок литературы
Барышев И.А. 2014. Факторы формирования сообществ макрозообентоса каменистых порогов и перекатов водотоков Восточной Фенноскандии // Ж. общ. биол. Т. 75. № 2. С. 124.
Барышев И.А. 2015. Особенности формирования структуры макрозообентоса пороговых участков рек Карельского берега Белого моря // Труды Карельского научного центра Российской академии наук. № 1. С. 29.
Барышев И.А. 2016. История изучения макрозообентоса рек Карелии и Мурманской области // Труды Карельского научного центра Российской академии наук. Серия “Экологические исследования”. № 4. С. 3. https://doi.org/10.17076/eco98
Барышев И.А., Хренников В.В. 2016. Количественная характеристика макрозообентоса порогов рек Кандалакшского побережья Белого моря как основы кормовой базы для молоди лососевых рыб // Поволжский экологический журнал. № 3. С. 255. https://doi.org/10.18500/1684-7318-2016-3-255
Беляков В.П. 2006. Состав и структура зообентоса притоков Ладожского озера // Оценка экологического состояния рек бассейна Ладожского озера по гидрохимическим показателям и структуре гидробиоценозов. Санкт-Петербург: Лема. С. 108.
Бискэ Г.С. 1959. Четвертичная геология и геоморфология Карелии. Петрозаводск: Гос. изд-во Карельской АССР.
Богатов В.В., Федоровский А.С. 2017. Основы речной гидрологии и гидробиологии. Владивосток: Дальнаука.
Жадин В.И. 1950. Жизнь в реках. Бентос // Жизнь пресных вод СССР. Москва: Изд-во АН СССР. Т. 3. С. 149.
Зверева О.С. 1969. Особенности биологии главных рек Коми АССР в связи с историей их формирования. Ленинград: Наука.
Комулайнен С.Ф., Круглова А.Н., Барышев И.А. 2013. Структура сообществ водных организмов притоков Выгозерского водохранилища // Поволжский экологический журнал. № 3. С. 261.
Кочарина С.Л. 2005. Трофическая структура беспозвоночных некоторых водотоков бассейна реки Правая Соколовка (Верхнеуссурийский стационар, Приморский край) // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. Вып. 3. Владивосток: Дальнаука. С. 49.
Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. 2016. Т. 2: Зообентос. Москва: Товарищество науч. изданий КМК.
Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 1997. Т. 3: Паукообразные и низшие насекомые. Санкт-Петербург: Наука.
Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 1999. Т. 4: Высшие насекомые. Двукрылые. Санкт-Петербург: Наука.
Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. 2001. Т. 5: Высшие насекомые (ручейники, чешуекрылые, жесткокрылые, сетчатокрылые, большекрылые, перепончатокрылые). Санкт-Петербург: Наука.
Паньков Н.Н. 1997. Структурные и функциональные характеристики сообществ зообентоса реки Сылвы (бассейн Камы): Дис. ... канд. биол. наук. Пермь: Пермский государственный университет.
Перова С.Н. 2016. Структура макрозообентоса устьевой области притока Рыбинского водохранилища // Тр. Инст. биол. внутр. вод. РАН. Вып. 74(77). С. 113.
Попченко В.И., Александров В.М. 1983. Донная фауна Онежского озера и ее биоценоза // Пресноводные гидробионты и их биология. Ленинград: Наука. С. 102.
Рябинкин А.В. 2003. Макрозообентос водоемов бассейна реки Кеми (Карелия) и его динамика в условиях антропогенного влияния: Дис. ... канд. биол. наук. Петрозаводск: Петрозаводский государственный университет.
Рябинкин А.В. 2008. Фауна донных беспозвоночных бассейна р. Кеми // Труды Карельского научного центра. Биогеография. Вып. 12. Петрозаводск: Карельский научный центр РАН. С. 134.
Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. 2003. Количественная гидроэкология: методы системной идентификации. Тольятти: Институт экологии Волжского бассейна РАН.
Шубина В.Н. 2006. Бентос лососевых рек Урала и Тимана. Санкт-Петербург: Наука.
Яковлев В.А. 2004. Фаунистический обзор пресноводного зообентоса северо-восточной части Фенноскандии // Биология внутр. вод. № 3. С. 16.
Яковлев В.А. 2005. Пресноводный зообентос Северной Фенноскандии (разнообразие, структура и антропогенная динамика). Апатиты: Изд-во Кольского научного центра РАН.
Baryshev I.A. 2017. Taxonomic Composition and Trophic Structure of Benthic Fauna in Rocky Rapids and Riffles in Rivers of the Republic of Karelia and Murmansk Oblast // Inland Water Biology. V. 10. № 4. P. 405. https://doi.org/10.1134/S1995082917040034
Cummins K.W., Klugg M.J. 1979. Feeding ecology of stream invertebrates // Annu. Rev. Ecol. Syst. V. 10. P. 147.
De Jong Y., Verbeek M., Michelsen V., Bjørn P., Los W., Steeman F., Bailly N., Basire C., Chylarecki P., Stloukal E., Hagedorn G., Wetzel F., Glöckler F., Kroupa A., Korb G. et al. 2014. Fauna Europaea – all European animal species on the web. Biodiversity Data Journal V. 2. https://doi.org/10.3897/BDJ.2.e4034
Magurran A.E. 1998. Ecological Diversity and Its Measurement. Princeton: Princeton Univ. Press. https://doi.org/10.1007/978-94-015-7358-0
Sladecek V. 1973. System of water quality from the biological point of view // Arch. Hydrobiol. Ergebn. Limnol. V. 7. P. 1.
Tiunova T.M. 2006. Trophic structure of invertebrate communities in ecosystems of salmon rivers in the Southern Far East // Rus. J. Ecol. V. 37. № 6. P. 419. https://doi.org/10.1134/S1067413606060099.
Vinarski M.V., Kantor Y.I. 2016. Analytical catalogue of fresh and brackish water mollusks of Russia and adjacent countries. Moscow: A.N. Severtsov Institute of Ecology and Evolution of RAS.
К. В. Кузищина, б, *, М. А. Груздеваа, В. А. Филенкоа, Д. С. Павлова, б
Сельдь-черноспинка Alosa kessleri kessleri (Grimm, 1887) реки Ахтуба, Нижневолжский бассейн: биологические и морфологические особенности
аМосковский государственный университет им. М.В. Ломоносова, Москва, Россия
бИнститут проблем экологии и эволюции РАН им. А.Н. Северцова, Москва, Россия
e-mail: KK_office@mail.ru
Приведены данные по динамике анадромной миграции, возрастному составу, длине, массе тела и морфометрической характеристике сельди-черноспинки из р. Ахтуба. Установлено, что в настоящее время сельдь-черноспинка из бассейна р. Ахтуба мономорфна, какие-либо темпоральные группировки не выявлены. Она представлена некрупными младшевозрастными раносозревающими (в 2–3 года) рыбами не старше 5 лет. По важнейшим диагностическим признакам – прежде всего, по числу жаберных тычинок и некоторым пластическим признакам сельдь-черноспинка из р. Ахтуба, в целом, соответствует типичным для формы рядам изменчивости.
Ключевые слова: сельдь-черноспинка, река Ахтуба, Нижневолжский бассейн, анадромная миграция, возраст, длина и масса тела, морфология .
Показать список литературы
Cписок литературы
Берг Л.С. 1948. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. Москва: Изд-во АН СССР. Т. 1.
Васильева Т.В., Власенко А.Д., Дегтярёва Н.Г. 2012. История и современное состояние рыбохозяйственных исследований на Каспии // Вопросы рыболовства. Т. 13. № 4 (52). С. 679.
Водовская В.В. 1974. Новые данные о внутривидовых формах каспийской проходной сельди (Alosa kessleri) // Труды Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии. Т. 1. С. 74.
Водовская В.В. 1977. О связи между численностью проходной сельди и ее распределением в Северном Каспии // Вопр. ихтиол. Т. 17. Вып. 1 (102). С. 179.
Водовская В.В. 1984. Экология каспийской проходной сельди (Alosa kessleri) на Нижней Волге в современных условиях гидрологического режима: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Москва: Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии. С. 24.
Водовская В.В. 1990. Проходная сельдь – важный объект охраны ихтиофауны Каспия // Матер. Всесоюзной конференции Экологические проблемы охраны живой природы. Москва: Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии. Ч. 3. С. 12.
Водовская В.В. 1994. Воспроизводство сельди на Волге // Рыбное хозяйство. № 6. С. 28.
Водовская В.В. 1996. Влияние гидрологического режима на воспроизводство и численность проходных сельдей // Гидрометеорология и гидрохимия морей. Т. 6. Вып. 2. С. 300.
Водовская В.В. 1998. Научные основы устойчивого рыболовства и регионального распределения промысловых объектов Каспийского моря. Москва: Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии.
Водовская В.В. 2001. Экологические аспекты биологии проходной сельди Каспия. Астрахань: Каспийское НИИ рыбного хозяйства.
Войнова Т.В. 2012. Современное состояние нерестовой части популяции проходной сельди-черноспинки Alosa kessleri kessleri // Экологический мониторинг и биоразнообразие. № 2. С. 75.
Войнова Т.В. 2013. Динамика уловов и биологические показатели сельди-черноспинки в Волго-Каспийском рыбохозяйственном подрайоне в современных условиях (река Волга и ее водотоки) // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. № 3. С. 25.
Войнова Т.В. 2016. Мониторинг современного состояния популяции сельди-черноспинки (Alosa kesselri kessleri Grimm) в р. Волге // Экологический мониторинг и биоразнообразие. № 1. С. 21.
Зволинский В.П., Овчинников А.С., Яковлев С.В., Рыбашлыкова Л.П. 2015. Комплексный мониторинг водных биологических ресурсов водоёмов Волго-Ахтубинской поймы. Волгоград: Волгоградский ГАУ.
Казанчеев Е.Н. 1965. О распределении осетровых рыб в промысловой зоне Северного Каспия в связи с запрещением их морского лова // Труды Каспийского НИИ рыбного хозяйства. Т. 20. С. 53.
Казанчеев Е.Н. 1981. Рыбы Каспийского моря. Москва: Легк. и пищ. пром-сть.
Ким А.И. 2012. О восстановлении Урало-Каспийской популяции сельди Alosa kessleri kessleri // Вестник Казанского национального университета. Серия экологическая. № 1(33). С. 79.
Лепилина И.Н., Войнова Т.В., Николаенков А.А., Степанова Т.Г. 2016. Состояние запасов сельди-черноспинки, биологические, физиолого-биохимические показатели и трофологический анализ производителей, мигрирующих в реку Волгу // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. Вып. 2. С. 43.
Николаев В.А. 1962. Геологическая история, рельеф и аллювиальные отложения р. Ахтуба // Природа и сельское хозяйство Волго-Ахтубинской долины и дельты. Москва: Изд-во МГУ. С. 11.
Павлов Д.С. 1979. Биологические основы управления поведением рыб в потоке воды. Москва: Наука.
Правдин И.Ф. 1966. Руководство по изучению рыб. Москва: Пищ. пром-сть.
Пятикопова О.В. 2019. Современные особенности нерестовой миграции производителей и покатной миграции личинок сельди-черноспинки (Alosa kessleri kessleri) в Волжско-Каспийском бассейне: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Астрахань: АГТУ.
Решетников Ю.С., Попова О.А. 2015. О методиках полевых ихтиологических исследований и точности полученных результатов // Труды Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии. Т. 156. С. 114.
Решетников Ю.С., Терещенко В.Г. 2017. Количественный уровень исследования в экологии рыб и ошибки, связанные с ним // Экология. № 3. С. 178.
Световидов А.Н. 1952. Фауна СССР. Рыбы. Т. 2. Вып. 1. Сельдевые (Clupeidae) Москва: Изд-во академии наук СССР.
Фомичёв О.А., Тарадина Д.Г. 2006. Оценка численности покатной молоди полупроходных и речных рыб в водоемах дельты Волги // Материалы Международной конференции Астрахань “Современное состояние и пути совершенствования научных исследований в Каспийском бассейне”. Астрахань: КаспНИРХ. С. 233.
Чугунова Н.И. 1959. Руководство по изучению возраста и роста рыб. Москва: Изд-во академии наук СССР.
Yilmaz S., Polat N. 2002. Age determination of shad (Alosa pontica Eichwald, 1838) inhabiting the Black Sea // Turkish Journal of Zoology. V. 26. № 4. С. 393.
А. А. Солдатовa, b, *, В. В. Севриковb
Роль миоглобина и липидов в коррекции диффузии кислорода в скелетных мышцах костистых рыб (обзор)
aИнститут биологии южных морей им. А.О. Ковалевского РАН, Севастополь, Россия
bСевастопольский государственный университет, Севастополь, Россия
e-mail: alekssoldatov@yandex.ru
Представлена информация об особенностях диффузии кислорода в скелетных мышцах костистых рыб. Показано, что она определяется рядом переменных величин. Отмечено, что эндотелий сосудов микроциркуляторного русла не следует рассматривать как основное препятствие для диффузии кислорода в виду наличия крупных пор и перфораций. Главный диффузионный барьер – цитоплазматическая и внутриклеточные мембраны мышечных волокон. Существенный вклад в понятие “облегченной диффузии” на клеточном уровне вносят миоглобин и содержание липидов, прежде всего, триацилглицеридов. Обобщены сведения о структуре и функциональных особенностях миоглобинов скелетных мышц и сердца костистых рыб. Представлена информация по особенностям организации полипептидной цепи данного белка, ключевым заменам, полиморфизму, кинетическим характеристикам связывания кислорода. На основе межвидового сравнения показана зависимость плотности капиллярной сети мышц от содержания в них миоглобина и липидов. Отмечено, что содержание миоглобина и липидов в мышечной ткани рыб достаточно лабильно и зависит как от состояния среды, так и самого организма. Все это позволяет рассматривать данные показатели как факторы, которые могут осуществлять направленную коррекцию кислородного режима мышечной ткани рыб, повышая ее устойчивость к дефициту кислорода.
Ключевые слова: миоглобин, липиды, скелетные мышцы, сердце, капиллярная сеть, диффузия кислорода, костистые рыбы.
Показать список литературы
Cписок литературы
Березовский В.А., Сушко Б.С. 1984. Профиль концентрации кислорода в клетке и некоторые спорные вопросы перемещения свободного кислорода в биологических объектах // Физиологический журнал. Т. 30. № 3. С. 345.
Забелинский С.А., Чеботарева М.А., Шуколюкова Е.П., Кривченко А.И. 2014. Жирнокислотный состав фосфолипидов эритроцитов миноги, лягушки, крысы и спектры поглощения их липидных экстрактов // Ж. эвол. биохим. физиол. Т. 50. № 4. С. 269.
Иванов И.И., Локтющкин А.В., Гуськова Р.А., Васильев Н.С., Федоров Г.Е., Рубин А.Б. 2007. Кислородные каналы мембраны эритроцитов // Докл. акад. наук. Т. 414. № 5. С. 746.
Колчинская А.З., Хацуков Б.Х., Закусило М.П. 1999. Кислородная недостаточность, деструктивное и контструктивное действие. Нальчик: Кабардино-балкарский науч. центр РАН.
Коробов В.Н. 1992. Роль миоглобина в адаптивной реактивности рыб // Тез. докл. VIII науч. конф. по экол. физиол. и биох. рыб. Т.1. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН. С. 161.
Крепс Е.М. 1977. Биохимические адаптации морских животных // Биология моря. № 5. С. 6.
Крепс Е.М. 1981. Липиды клеточных мембран. Ленинград: Наука.
Локтющкин А.В., Гуськова Р.А., Федоров Г.Е., Виноградова В.Г., Иванов И.И. 2014. Факторы, определяющие кинетику диссоциации оксигемоглобина эритроцитов человека в присутсвии хлорида ртути (II) // Естественные и технические науки. № 9-10 (77). С. 37.
Сидоров В.С. 1983. Экологическая биохимия рыб. Ленинград: Наука.
Солдатов А.А. 2018. Кислородный режим скелетных мышц костистых рыб и механизмы его функциональной коррекции (краткий обзор) // Ж. общ. биол. Т. 79. № 6. С. 471.
Солдатов А.А. 2005. Особенности организации и функционирования системы красной крови рыб (обзор) // Журн. эволюц. биохим. физиол. Т. 41. № 3. С. 217.
Шошенко К.А., Баранов В.И., Брод В.И., Вязовой В.В., Голубь А.С., Иванова С.Ф., Нешумова Т.В. 1984. Органное кровоснабжение и особенности кислородного транспорта в мышцах // Исслед. энерг. движ. рыб. Новосибирск: Наука. С. 78.
Шульман Г.Е., Остоловский Е.М., Шершов С.В., Крячко В.И. 1990. Фосфолипидный состав черноморских рыб // Биоэнергетика гидробионтов. Киев: Наук. Думка. С. 189.
Шульман Г.Е., Щепкин В.Я., Яковлева К.К., Хоткевич Т.В. 1978. Липиды и их использование при плавании рыб // Элементы физиол. и биох. общего и активного обмена у рыб. Киев: Наук. Думка. С. 100.
Щепкин В.Я., Минюк Г.С. 1990. Уровень энергетических запасов и реакция привлечения к свету черноморского шпрота // Биоэнергетика гидробионтов. Киев: Наук. думка. С. 207–220.
Юнева Т.В. 1990. Сезонная динамика жирно-кислотного состава липидов черноморских рыб – хамсы и шпрота // Биоэнергетика гидробионтов. Киев: Наук. Думка. С. 196.
Amono H., Hashimoto K., Matsuura F. 1976. Terminal structures of tuna and skipjack myoglobins // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. V. 42. № 5. P. 577.
Archer S.D., Johnston I.A. 1991. Density of cristae and distribution of mitochondria in the slow muscle fibers of Antarctic fish // Physiol. Zool. V. 64. № 1. P. 242.
Bailey J.R., Driedzic W.R. 1986. Function of myoglobin in oxygen consumption by isolated perfused fish hearts // Am. J. Physiol. V. 251. № 6. P. 1144.
Bailey J.R., Sephton D.H., Driedzic W.R. 1990. Oxygen uptake by isolated perfused fish hearts with differing myoglobin concentration under hypoxic conditions // J. Mol. Cell. Cardiol. V. 22. № 10. P. 1125.
Bannister J.V., Bannister W.H. 1976. Isolation and general characterization of myoglobin from the dolphin fish Coryphaena hippurus (L.) // Comp. Biochem. Physiol. V. 53. № 1. P. 57.
Blank M. 1962. Monolayer permeability and the properties of natural membranes // J. Phys. Chem. V. 66. № 10. P. 1911.
Brand M.D., Couture P., Else P.L. 1991. Evolution of energy metabolism. Proton permeability of the inner membrane of liver mitochondria is greater in a mammal than in a reptile // Biochem. J. V. 275. P. 81.
Cashon R.E., Vayda M.E., Sidell B.D. 1997. Kinetic characterization of myoglobins from vertebrates with vastly different body temperatures // Comp. Biochem. Physiol. V. 117B. № 4. P. 613.
Chanthai S., Ogawa M., Tamiya T., Tsuchiya T. 1996a. Studies on thermal denaturation of fish myoglobins using differential scanning calorimetry, circular dichroism and trypthophan fluorescence // Fish Sci. V. 62. № 6. P. 927.
Chanthai S., Ogawa M., Tamiya T., Tsuchiya T. 1996b. Studies on thermal denaturation of fish apomyoglobins using differential scanning calorimetry, circular dichroism and fluorescence // Fish Sci. V. 62. № 6. P. 933.
Chanthai S., Ogawa M., Tamiya T., Tsuchiya T. 1998a. Effect of heating on autoxidation rate of fish holo- reconstituted myoglobins // Fish Sci. V. 64. № 4. P. 574.
Chanthai S., Ogawa M., Tamiya T., Tsuchiya T. 1998б. Studies on thermal denaturation profiles of holo- and reconstituted myoglobins from bonito and sperm whale // Fish Sci. V. 64. № 3. P. 411.
Chauvet J-P., Acher R. 1972. Isolation of coelacanth (Latimeria chalumnae) myoglobin // FEBS Lett. V. 28. № 1. P. 16.
Chen H., Li D., Roberts G.J., Saldeen T., Mehta J.L. 2003. Eicosapentanoic acid inhibits hypoxia-reoxygenation-induced injury by attenuating upregulation of MMP-1 in adult rat myocytes // Cardiovasc. Res. V. 59. № 1. P. 7.
Chen S.C., Liu K.M., Wagner R.C. 1998. Three-dimensional analysis of vacuoles and surface invaginations of capillary endothelia in the eel rete mirabile // Anat. Rec. V. 252. P. 546.
Chow Ch-J., Ochiai Y., Watabe S., Hashimoto K. 1988. Autoxidation of bluefin tuna myoglobin at arround freezing point // Jap. Soc. Sci. Fish. V. 54. № 3. P. 473.
Couch J.A. 1990. Pericyte of a teleost fish: Ultrastructure, position, and role in neoplasia as revealed by a fish model // Anat. Rec. V. 228. P. 7.
Czopek J. 1980. Vascularization of the skeletal muscles in the river lamprey (Lampetra fluviatilis L.) // Zool. pol. V. 27. P. 577.
Desaulniers N.T., Sidell B.D. 1992. High lipid content enhances the rate oxygen diffusion in fish skeletal muscle // Amer. Zool. V. 32. № 5. P. 55A.
Dickson K.A. 1996. Locomotor muscle of high-performance fishes: What do comparisons of tunas with ectothermic sister taxa reveal? // Comp. Biochem. Physiol. V. 113A. № 1. P. 39.
Driedzic W. R., Phleger C.F., Fields J.H.A., French C. 1978. Alterations in energy metabolism associated with the transition from water to air breathing in fish // Can. J. Zool. V. 56. № 4(2). P. 730.
Driedzic W.R. 1988. Matching of cardiac oxygen delivery and fuel supply to energy demand in teleosts and cephalopods // Can. J. Zool. V. 66. № 5. P. 1078.
Driedzic W.R., Stewart J.M. 1982. Myoglobin content and the activities of enzymes of energy metabolism in red and white fish hearts // J. Comp. Physiol. V. 149B. № 1. P. 67.
Duncombe-Rae C.M., Bailey G.W., Neumann T., Plas A., Mouton D., Filipe V., Schuffenhauer I., Franz F., Nelson G. 2000. Low oxygen expression and the poleward undercurrent on the Angola-Namibia shelf, July 1999 // 10th SAMSS. Wilderness. P. 1.
Egginton S., Johnston I.A. 1984. Effect of acclimation temperature on routine metabolism muscle mitochondrial volume density and capillary supply in the eel (Anguilla anguilla) // J. Therm. Biol. V. 9. P. 165.
El-Jaick L.J., Wainberg E., Bemski G., Linhares M.P. 1988. Comparison of models for reassociation of carbon monoxide with carp haemoglobin // J. Biol. Macromol. V. 10. № 3. P. 185.
Ewart H.S., Canty A.A., Driedzic W.R. 1988. Scaling of cardiac oxygen consumption and enzyme activity levels in sea raven (Hemitripterus americanus) // Physiol. Zool. V. 61. № 1. P. 50.
Feller G, Gerday C. 1997. Adaptations of the hemoglobinless Antarctic icefish (Channichthyidae) to hypoxia tolerance // Comp. Biochem. Physiol. V. 118A. № 4. P. 981.
Feller G., Pauly J.P., Smal A., O’Carra P., Gerday C. 1991. The lactate dehydrogenase of the icefish heart: Biochemical adaptations to hypoxia tolerance // Biochem. Biophys. Acta. V. 1079. № 3. P. 343.
Ferguson A. 1975. Myoglobin polymorphism in the pollan (Osteichthyes: Coregoninae) // Amm. Blood Group Biochem. Genet. V. 6. № 1. P. 25.
Finn R.N., Cerda J. 2015. Evolution and Functional Diversity of Aquaporins // Biological Bulletin. V. 229. № 1. P. 6.
Fosmire G.J., Brown W.D. 1960. Yellowfin tuna (Thunnus albacares) myoglobin: characterization and comparative stability // Comp. Biochem. Physiol. V. 55. № 2. P. 293.
Fraser J., Vieira de Mello L., Ward D., Rees H.H., Williams D.R., Fang Y., Brass A., Gracey A.Y., Cossins A.R. 2006. Hypoxia-inducible myoglobin expression in nonmuscle tissues // PNAS. V. 103. № 8. P. 2977.
Froehlich R. 1991. Capillary permeability in the eel rete mirabile: A comparison of endothelium in two different states // Diss. Abst. Int. Pt. B. Sci. Eng. V. 51. P. 212.
Gamperl A.K., Pinder A.W., Boutilier R.G. 1994a. Effect of coronary ablation and adrnergic stimulation on in vivo cardiac performance in trout (Oncorhynchus mykiss) // J. Exp. Biol. V. 186. P. 127.
Gamperl A.K., Pinder A.W., Grant R.R., Boutilier R.G. 1994b. Coronary blood flow in trout: Control and importance for cardiac function // High performance fish. Intern. Fish Physiol. Symp., Vancouver, Canada. P. 256.
Giardina B., Mordente A., Zappacosta B., Calla C., Colacicco L., Gozzo M.L., Lippa S. 1998. The oxidative metabolism of Antarctic fish: Some peculiar aspects of cold adaptation // Fish. Antarc. Biol. P. 129.
Hamoir G. 1988. Biochemical adaptation of the muscles of the Channichthyidae to their lack in hemoglobin and myoglobin // Comp. Biochem. Physiol. V. 90B. № 3. P. 557.
Hargens A.R., Millard R.W., Johansen K. 1974. High capillary permeability in fishes // Comp. Biochem. Physiol. V. 48A. P. 675.
Harrison P., Zummo G., Farina F., Tota B., Johnston I.A. 1991. Gross anatomy, myoarchitecture, and ultrastructure of the heart ventricle in the haemoglobinless icefish Chaenocephalus aceratus // Can. J. Zool. V. 69. № 5. P. 1339.
Hashimoto K., Yamaguchi K., Takeda N., Ogawa K. 1979. Hemoproteid distribution in muscles of fish // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. V. 45. № 10. P. 1331.
Hills B.A., Hughes G.M., Koyama T. 1982. Oxygenation and deoxygenation kinetics of red cells in isolated lamellae of fish gills // J. Exp. Biol. V. 98. P. 269.
Huxley V.H., Kutchai H. 1981. The effect of the red cell membrane and a diffusion boundary layer on the rate of oxygen uptake by human erythrocytes // J. Physiol. V. 316. P. 75.
Ivanov I.I., Fedorov G.E., Gus'kova R.A., Ivanov K.I., Rubin A.B. 2004. Permeability of lipid membranes to dioxygen // Biochem. Biophys. Res. Commun. V. 322. № 3. P. 746.
Jasinski A. 1973. Fine structure of capillaries in the respiratory intestine of the pond loach, Misqurnus fossilis // Ann. Med. Sec. Pol. Acad. Sci. V.18. P. 74.
Jasinski A., Kilarski W. 1971. Capillaries in the rete mirabile and in the gas gland of the swim bladder in fishes, Perca fluviatilis L. and Misgurhus fossilis L. An electron microscopic study // Acta anat. V. 78. P. 210.
Johnston I.A., Ball D. 1997. Thermal stress and muscle function in fish. Cambridge: Cambrige University Press, № 61. P. 79.
Joseph M.M., George J.C. 1987. Iron content of red and white axial muscles of the Indian anadromous migratory fish, Hilsa ilisha, and non-migratory Hilsa toli, during different phases of life cycle // Adv. Aquat. Biol. and Fish. P. 163.
Joyce S. 2000. The dead zones: oxygen-starved coastal waters // Environ. Health Perspective. V. 108. № 3. P. A120-A125.
Kilarski W., Smialowska E., Friedhyber A. 1982. Histological analysis of fibres in myotomes of antarctic fish. II. Morphometry of muscle fibres and capillaries // Z. mikrosk.-anat. Forsch. V. 96. P. 791.
Kita J., Itazawa Y. 1990. Effects of adrenaline on the blood flow through the spleen of rainbow trout (Salmo gairdneri ) // Comp. Biochem. Physiol. V. 95A. P. 591.
Kita J., Itazawa Y. 1990. Microcirculatory pathways in the spleen of the rainbow trout Oncorhynchus mykiss // Jap. J. Ichthyol. V. 37. P. 265.
Kitahara Y., Matsuoka A., Kobayashi N., Shikama K. 1990. Autoxidation of myoglobin from bigeye tuna fish (Thunnus obesus) // Biochem. Biophys. Acta. V. 1038. № 1. P. 23.
Le-Coeur C., Zhao Q., Garreau I., Sannier F., Maurice M., Durand P., Piot J.M. 1995. Analytical peptide mapping of a complex yellowfin tuna myoglobin peptic hydrolysate by high performance liquid chromatography // J. Liq. Chromatogr. V. 18. № 12. P. 2353.
Legate N.J.N., Bailey J.R., Driedzic W.R. 1998. Oxygen consumption in myoglobin-rich and myoglobin-poor isolated fish cardiomyocytes // J. Exp. Zool. V. 280. No 4. P. 269.
Londraville R.L., Sidell B.D. 1990. Ultrastructure of aerobic muscle in antarctic fishes may contribute to maintenance of diffusive fluxes // J. Exp. Biol. V. 150. P. 205.
Longeville S., Doster W., Kali G. 2003. Myoglobin in crowded solutions: structure and diffusion // Chemical Physics. V. 292. № 2–3. P. 413.
Love R.M. 1980. The chemical biology of fish. V. 2. London: Academic Press.
Maina J.N. 2002. Fundamental structural aspects and feature in the bioengineering of the gas exchangers: comparative perspectives // Adv. Anat. Embriol. Cell Biol. V. 163. № 3–4. P. 1.
Mathieu-Costello O., Brill R.W., Hochachka P.W. 1996. Structural basis for oxygen delivery: muscle capillaries and manifolds in tuna red muscle // Comp. Biochem. Physiol. V. 113A. P. 25.
Matsuyama T., Iida T. 2000. Primary culture of tilapia endothelial cells // Fish Pathol. V. 35. P. 163.
Montgomery J., Clements K. 2000. Disaptation and recovery in the evolution of Antarctic fishes // Trends Ecol. Evol. V. 15. № 7. P. 267.
Moylan T.J., Sidell B.D. 2000. Concentrations of myoglobin and myoglobin mRNA in heart ventricle of Antarctic fishes // J. Exp. Biol. V. 203. № 8. P. 1277.
Moylan T.J., Sidell B.D. 1997. Quantification of myoglobin and myoglobin mRNA in heart ventricle of Antarctic fishes // Antarct. J. US. V. 32. № 5. P. 101.
Munoz-Chapuli R., Macias D., Ramos C., Gallego A., De-Andres V. 1996. Development of the subepicardial mesenchyme and early cardiac vessels in the dogfish (Scyliorhinus canicula) // J. Exp. Zool. V. 275. P. 95.
Nichols D.J. 1987. Fluid volumes in rainbow trout, Salmo gairdneri: Application of compartmental analysis // Comp. Biochem. Physiol. V. 87A. P. 703.
Nichols J.W., Weber L.J. 1989. Comparative oxygen affinity of fish and mammalian myoglobins // J. Comp.Physiol. V. 159. № 2. P. 205.
Nichols J.W., Weber L.J. 1990. Lack of myoglobin function in the isolated perfused buffalo sculpin (Enophrys bison) heart // Can. J. Zool. V. 68. № 5. P. 825.
Nichols J.W., Weber L.J. 1989. Oxidation of cardiac myoglobin in vivo by sodium nitrite or hydroxylamine // Arch. Toxicol. V. 63. P. 484.
Nikinmaa M., Soivio A., Railo E. 1981. Blood volume of Salmo gairdneri: Influence of ambient temperature // Comp. Biochem Physiol. V. 69. № 4. P. 767.
O'Brien K.M., Sidell B.D. 2000. The interplay among cardiac ultrastructure, metabolism and the expression of oxygen-binding proteins in Antarctic fishes // J. Exp. Biol. V. 203. № 8. P. 1287.
O'Brien K.M., Sidell B.D. 1997. The loss of hemoglobin and/or myoglobin affects cardiac ultrastructure in Antarctic fishes // Antarct. J. US. V. 32. № 5. P. 98.
O'Brien K.M., Xue H., Sidell B.D. 2000. Quantification of diffusion distance within the spongy myocardium of hearts from Antarctic fishes // Respir. Physiol. V. 122. P. 71.
Olson K.R. 1996. Secondary circulation in fish: Anatomical organization and physiological significance // J. Exp. Zool. V. 275. P. 172.
Phleger C.F. 1975. Lipid synthesis by Antimora rostrata an abyssal codling from the Kona coast // Comp. Biochem. Physiol. V. 52B. № 1. P. 97.
Pong Ch.Y., Chiou T.K., Nieh F.P., Jiang Sh.T. 2000. Purification and characterization of metmyoglobin reductase from ordinary muscle of blue-fin tuna // Fish Sci. V. 66. № 3. P. 599.
Postnikova G.B., Shekhovtsova E.A. 2012. Fluorescence studies on the interaction of myoglobin with mitochondria // Biochemistry (Moscow). V. 77. № 3. P. 280.
Potter L.C., Welsch U., Wright G.M., Honma Y., Chiba A. 1995. Light and electron microscope studies of the dermal capillaries in three species of hagfishes and three species of lampreys // J. Zool. V. 235. P. 677.
Poupa O., Lindstrom L., Maresca A., Tota B. 1981. Cardiac growth, myoglobin, proteins and DNA in developing tuna (Thunnus thynnus thynnus L.) // Comp. Biochem. Physiol. V. 70A. № 2. P. 217.
Raaij M.T.M., Thillart G.E.E.J.M., Vianen G.J., Pit D.S.S., Balm P.H.M., Steffens A.B. 1996. Substrate mobilization and hormonal changes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss L.) and common carp (Cyprinus carpio L.) during deep hypoxia and subsequent recovery // J. Comp. Physiol. V. 166. № 7. P. 443.
Rasio E.A., Bendayan M., Goresky C.A. 1992. Effect of temperature change on the permeability of eel rete capillaries // Circ. Res. V. 70. № 2. P. 272.
Rhodin I.A.G., Silversmith C. 1972. Fine structures of elasmobranch arteries, capillaries and veins in the spiny dogfish // Comp. Biochem. Physiol. V. 42A. P. 59.
Riehl R. 1983. Ultrastructure of the capillaries in the gonopodium of the mosquitofish, Heterandria formosa A. // Int. J. Acad. Ichthyol. Modinagar. V. 4. P. 29.
Rossi-Fanelli A., Antonini E., Giuffre R. 1960. Oxygen equilibrium of myoglobin from Thunnus thynnus // Nature. V. 186. P. 896.
Saha M.P., Pandey P.K., Ojha J., Datta M.J.S. 1976. Histochemical localization of lipid in the respiratory muscles of a fresh water air-breathing siluroid fish, Clarias batrachus Linn. // Z. Mikrosk.-anat. Forsch. V. 90. № 2. P. 290.
Shulman G.E., Love R.M. 1999. The Biochemical Ecology and Marine Fishes // Adv. Mar. Biol. V. 36. London: Academic press.
Sidell B.D., Driedzic W.R., Stowe D.B., Johnston I.A. 1987. Biochemical correlations of power development and metabolic fuel preferenda in fish hearts // Physiol. Zool. V. 60. № 2. P. 221.
Sidell B.D., Vayda M.E., Small D.J., Moylan T.J., Londraville R.L., Yuan M-L., Rodnick K.J., Eppley Z.A., Costello L. 1997. Variable expression of myoglobin among the hemoglobinless Antarctic icefishes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 94. № 7. P. 3420.
Small D.J. 1999. Analysis of myoglobin gene from three antarctic icefish // Diss. Abst. Int. Pt. B. Sci. Eng. V. 59. № 11. P. 5719.
Small D.J., Vayda M.E., Sidell B.D. 1998. A novel vertebrate myoglobin gene containing three A+T-rich introns is conserved among Antarctic teleost species which differ in myoglobin expression // J. Mol. Evol. V. 47. № 2. P. 156.
Soederstroem V., Nilsson G.E. 2000. Brain blood flow during hypercapnia in fish: No role of nitric oxide // Brain Res. V. 857. P. 207.
Soldatov A.A. 2012. On the Issue of Classification of the Hypoxic States of the Aquatic Organisms // Hydrobiol. J. V. 48. № 4. P. 3.
Soldatov A.A. 2006. Organ blood flow and vessels of microcirculatory bed in fish (review) // J. Evolut. Biochem. Physiol. V. 42. № 3. P.243.
Soldatov A.A. 2018. The Diffusion Capacity of the Hematoparenchymal Barrier in Mammalian and Marine Fish Skeletal Muscles // J. Evolut. Biochem. Physiol. V. 54. № 1. P.43.
Somero G.N., Fields P.A., Hofmann G.E., Weinstein R.B., Kawall H. 1998. Cold adaptation and stenothermy in Antarctic notothenioid fishes: What has been gained and what has been lost? // Fish. Antar. Biol. Overview. Milano: Springer. P. 97.
Steffensen J.F., Lomholt J.P., Vogel W.O.P. 1986. In vivo observations on a specialized microvasculature, the primary and secondary vessels in fishes // Acta Zool. V. 67. P. 193.
Suzuki T. 1987. Autoxidation of oxymyoglobin with the distal (E7) glutamine // Biochem. Biophys. Acta. V. 914. № 2. P. 170.
Suzuki T., Suzuki T., Yata T. 1985. Shark myoglobin. II. Isolation, characterization and amino acid sequence of myoglobin from Galeorhinus japonicus // Austral. J. Biol. Sci. V. 38. № 4. P.247.
Törnroth-Horsefield S., Gourdon P., Horsefield R., Brive L., Yamamoto N., Mori H., Snijder A., Neutze R. 2007. Crystal structure of AcrB in complex with a single transmembrane subunit reveals another twist // Structure. V. 15. № 12. P. 1663.
Torres F.I.P., Martuchelli F.V., Bouskela E. 1991. A method for studying microcirculatory and cardio-respiratory parameters in the fish (Hypostomus punctatus) // Comp. Biochem. Physiol. V. 99A. P. 41.
Tota B., Cerra M.C., Mazza R., Pellegrino D., Icardo J. 1997. The heart of the Antarctic icefish as paradigm of cold adaptation // J. Therm. Biol. V. 22. № 6. P. 409.
Vayda M.E., Small D.J., Sidell B.D. 1997. Expression of the myoglobin gene in Antarctic channichthyid fishes // Antarctic Communities: Species, Structure and Survival Battaglia. P. 57.
Vayda M.E., Small D.J., Yuan M-L., Costello L., Sidell B.D. 1997. Cons
В. Г. Терещенкоa, *, В. А. Кузнецовb, Ф. М. Шакироваc, Л. И. Терещенкоa
Погрешность оценки численности поколений популяций рыб при неполной исходной информации
aИнститут биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, пос. Борок, Ярославская обл., Некоузcкий р-н, Россия
bКазанский государственный (федеральный) университет, Казань, Россия
сВсероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии,
ТатарстанНИРО, Казань, Россия
e-mail: tervlad@ibiw.yaroslavl.ru
Проведен анализ влияния объема отсутствующей информации о возрастной структуре рыб на погрешность оценки относительной численности поколений их популяций. На примере леща Куйбышевского водохранилища показано, что при потере информации за 1–8 лет погрешность оценки численности поколений в среднем 5–15%. Это позволяет применять данную модификацию метода убыли от лова для оценки численности поколений популяций. С помощью предложенного метода можно анализировать популяции не только рыб, но и других групп гидробионтов.
Ключевые слова: метод, погрешность, рыбы, популяция, численность поколений.
Показать список литературы
Cписок литературы
Анохина О.К., Гончаренко К.С., Говоркова Л.К. 2013. Промыслово-биологическая характеристика, состояние промысловых запасов и допустимые уловы рыб в Куйбышевском водохранилище // Гидробиологические и ихтиологические исследования водоёмов Среднего Поволжья. № 13. С. 152.
Кондрашов А.П., Шестопалов Е.В. 1977. Основы физического эксперимента и математическая обработка результатов измерения. Москва: Атомиздат.
Коновалов А.Ф. 2004. Роль судака в экосистемах крупных озер Вологодской области: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Петрoзаводск.
Кузнецов В.А. 1980. Флюктуации численности промысловых рыб в условиях зарегулированного стока реки (на примере Куйбышевского водохранилища) // Вопр. ихтиол. Т. 20. Вып. 5(124). С. 805.
Лукин А.В. 1986. Основные этапы формирования ихтиофауны и состояние запасов рыб. Состояние запасов леща // Экологические особенности рыб и кормовых организмов Куйбышевского водохранилища. Казань: Изд-во КГУ. С. 5.
Монастырский Г.И. 1952. Динамика численности промысловых рыб // Тр. ВНИРО. Москва: ВНИРО. Т. 21. С. 3.
Никольский Г.В. 1974. Теория динамики стада рыб. Москва: Пищевая промышленность. 447 с.
Огнетов Г.Н., Светочева О.Н. 2000. Исследование половой и возрастной структуры беломорской нерпы // Вопросы рыболовства. Т. 1. № 2–3. С. 78.
Поддубный А.Г. 1982. Значение работ по оценке точности результатов биологических исследований // Оценка погрешностей методов гидробиологических и ихтиологических исследований. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР. С. 3.
Рабинович С.Г. 1978. Погрешности измерений. Ленинград: Энергия.
Рикер У.Е. 1979. Методы оценки и интерпретации биологических показателей популяций рыб. Москва: Пищевая промышленность.
Стрельников А.С. 1996. Состояние популяции судака Stizostedion lucioperca (L.) Рыбинского водохранилища в условиях новых коммерческих отношений // Вопр. ихтиол. Т. 36. Вып. 4. С. 481.
Стрельников А.С., Орлова С.С., Терещенко В.Г. 1997. Стратегия охраны запасов и прогнозирование уловов рыбы в Рыбинском водохранилище в условиях новых коммерческих отношений // Современное состояние рыбных запасов Рыбинского водохранилища. Ярославль: Ин-т биологии внутр. вод РАН. С. 178.
Трухин А.М. 1996. Межгодовая динамика возрастной структуры кольчатой нерпы северо-западной популяции Охотского // Известия Тихоокеанского научно-исследовательского рыбохозяйственного центра. Т. 121. С. 127.
Цыплаков Э.П. 1972. Лещ // Тр. Татар. отд. ГосНИОРХ. Вып. XII. Казань. С. 68.
Чакилев М.В., Кочнев А.А. 2017. Половозрастная структура тихоокеанского моржа Odobenus rosmarus divergens в районе мыса Сердце-Камень (Чукотское море) в летне-осенний период 2009–2014 гг. // Известия ТИНРО. Т. 190. С. 72. https://doi.org/10.26428/1606-9919-2017-190-72-78.
Чугунова Н.И. 1959. Руководство по изучению возраста и роста рыб. Москва: Изд-во АН СССР.
Boyd I.L., Croxall J.P., Lunn N.J., Reid K. 1995. Population demography of Antarctic fur seals: the costs of reproduction and implications for life-histories // J. Anim. Ecol. V. 64. P. 505.
Chen S., Watanabe S. 1989. Age dependence of natural mortality coefficient in fish population dynamics // Nippon Suisan Gakkaishi. V. 55. P. 205.
Dabin W., Beauplet G., Crespo E.A., Guinet Ch. 2004. Age structure, growth, and demographic parameters in breeding-age female subantarctic fur seals, Arctocephalus tropicalis // Can. J. Zool. V. 82(7). P. 1043. https://doi.org/10.1139/z04-079
Gibbens J., Arnould J.P.Y. 2009. Age-specific growth, survival, and population dynamics of female Australian fur seals // Can. J. Zool. V. 87. P. 902. https://doi.org/ 10.1139/Z09-080
Gongora M. 2010. Assessment of Spiny Lobster (Panulirus argus) of Belize based on fishery dependent data. United Nations University Fisheries Training Programme, Iceland [final project]. http://www.unuftp.is/static/fellows/document/mauro09prf.pdf
Kuzin A.E. 2010. The Intrapopulation Structure of the Northern Fur Seal (Callorhinus ursinus L.) on Tyuleniy Island during the Post-Depression Years (1993–2009) // Russ. J. Mar. Biol. V. 36. № 7. P. 507. https://doi.org/10.1134/S1063074010070047
Maxwell K.E., Matthews T.R., Bertelsen R.D., Derby Ch.D. 2013. Age and size structure of Caribbean spiny lobster, Panulirus argus, in a no-take marine reserve in the Florida Keys, USA // Fisheries Research. V. 144. P. 84.
Reshetnikov Yu.S., Tereshchenko V.G. 2017. Quantitative Level of Research in Fish Ecology and Errors Associated with It // Russ. J. Ecol. V. 48. № 3. P. 233. https://doi.org/ 10.1134/S1067413617030146
Roa R., Gallardo V.A., Ernst B., Baltazar M., Canete J.I., Enriquez-Brionnes S. 1995. Nursery ground, age structure and abundance of juvenile squat lobster Pleuroncodes monodon on the continental shelf off central Chile // Mar. Ecol.: Prog. Ser. V. 116. Р. 47.
Roa R., Erns B. 1996. Age structure, annual growth, and variance of size-at-age of the shrimp Heterocarpus reedi // Mar. Ecol.: Prog. Ser. V. 137. P. 59.
Sharifian S., Kamrani E., Safaie M., Sharifian S. 2017. Population structure and growth of freshwater crab Sodhiana iranica from the south of Iran // Fundam. Appl. Limnol. V. 189/4. P. 341. https://doi.org/10.1127/fal/2017/0965
Taylor R.L., Udevitz M.S., Jay Ch.V., Citta J.J., Quakenbush L.T., Lemons P.R., Snyder J.A. 2018. Demography of the Pacific walrus (Odobenus rosmarus divergens) in a changing Arctic // Mar. Mammal Sci. V. 34(1). P. 54. https://doi.org/ 10.1111/mms.12434
Tereshchenko V.G., Zuyanova О.V. 2006. The method of assessment of relative abundance of commercial fish species generations under conditions of incomplete initial information // Inland Water Biology. № 1. P. 88.
А. Е. Жоховa, *, М. Н. Пугачеваa
Первая находка метацеркарии Ornithodiplosthomum scardinii (Schulman, 1952) Sudarikov et Kurotschkin, 1968 (Trematoda, Diplostomidae) в Рыбинском водохранилище
aИнститут биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: zhokhov@ibiw.yaroslavl.ru
При изучении паразитов красноперки Scardinius erythrophthalmus – нового для Рыбинского водохранилища вида рыб – в ее головном мозге обнаружены метацеркарии трематоды Ornithodiplostomum scardinii. Это первая находка данного вида гельминтов в бассейне Верхней Волги. Зараженность красноперки 31.3%, интенсивность инвазии 1–12 паразитов. Приводятся данные о распространении трематоды O. scardinii в бассейне р. Волги
Ключевые слова: Ornithodiplostomum scardinii, виды-вселенцы, Trematoda, Diplostomidae, метацеркария, Волга, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
Герасимов Ю.В., Маврин А.С., Касьянов А.Н. Красноперка. Рыбы Рыбинского водохранилища: популяционная динамика и экология. Ин-т биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина, РАН. Ярославль: Филигрань, 2015. С. 294–295.
Голубев С.В., Русинов А.А. Луток. Красная книга Ярославской области. Ярославль: “Академия 76”, 2015. С. 338–339.
Ибрагимов Ш.Р. Паразиты и болезни рыб Каспийского моря (эколого-географический анализ, эпизоотологическая и эпидемиологическая оценка). Баку: Изд-во “Элм”, 2012. 400 с.
Иванов В.М. Мониторинг, структурные изменения и экологические особенности трематодофауны позвоночных животных дельты Волги и Северного Каспия (фауна, систематика, биология, экология, патогенное значение) // Дис. ... докт. биол. наук. Астрахань, 2002. 323 с.
Молодожникова Н.М., Жохов A.E. Таксономическое разнообразие паразитов рыбообразных и рыб бассейна Волги. III. Аспидогастры (Aspidogastrea) и трематоды (Trematoda) // Паразитология. 2007. Т. 41. № 1. С. 28–54.
Рауцкис Э.Ю. Паразиты рыб водоемов Литвы. Вильнюс: Мокслас, 1988. 207 с.
Семенова Н.Н., Иванов В.П., Иванов В.М. Паразитофауна и болезни рыб Каспийского моря: монография. Астрахань: Изд-во Аcтрахан. гос. тех. ун-та, 2007. 558 с.
Судариков В.Е. Отряд Strigeidida (La Rue, 1926) Sudarikov, 1959 // Трематоды животных и человека. Основы трематодологии. М.: Изд-во Наука, 1971. Т. 24. С. 71–272.
Судариков В.Е., Курочкин Ю.В. Систематическое положение и развитие метацеркарий Neodiplostomum scardinii – паразита головного мозга рыб // Тр. Астрахан. заповедника. 1968. Вып. 11. С. 255–274.
Dzika E. Changes in the parasitic fauna of rudd Scardinius erythrophthalmus (L.) from Lake Warniak, Poland // Helminthologia. 2005. V. 42. № 4. P. 219–222.
Grabda-Kazubska B., Baturo-Warszawska B., Pojmanska T. Dynamics of parasite infestation of fish in lakes Dgal Wielki and Warniak in connection with introduction of phytophagous species // Acta Parasitologica Polonica. 1987. V. 32. № 1. P. 1–28.
Kavetska K.M., Rząd I., Sitko J. Taxonomic structure of Digenea in wild ducks (Anatinae) from West Pomerania // Wiadomości Parazytologiczne. 2008. V. 54. № 2. P. 131–136.
Kirjušina M., Vismanis K. Checklist of the parasites of fishes of Latvia. FAO Fisheries Technical Paper. No. 369/3. Rome, FAO. 2007. 106 p.
Molnar K. Beitrage zur kenntnis der fischparasitenfauna Ungarns IV. Trematoden. Parasit. Hung., 1969. V. 2. P. 119–136.
Sitko J., Rząd I. Diplostomum and Ornithodiplostomum scardinii (Diplostomidae, Digenea) species from naturally infected birds (Anatinae) in the Czech Republic and in Poland: morphological, morphometric and ecological features // Helminthologia. 2014. V. 51. № 3. P. 215 – 224. DOI 10.2478/s11687-014-0232-9.
А. С. Соколоваa, *, Д. В. Микряковa,**, В. Р. Микряковa
Возрастные изменения уровня малонового диальдегида в тканях двустворчатого моллюска Anodonta cygnea (Linnaeus, 1758)
aИнститут биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
e-mail: Aleksandrasokol@rambler.ru **e-mail: daniil@ibiw.ru
Исследован уровень перекисного окисления липидов в гемолимфе, гепатопанкреасе, жабрах и мышцах двустворчатого моллюска Anodonta cygnea (Linnaeus, 1758) разного возраста. Выявлена зависимость содержания малонового диальдегида в гемолимфе и исследуемых тканях от возраста моллюска и структурно-функциональной характеристики тканей. У более старых особей, по сравнению с молодыми, в гепатопанкреасе, жабрах и гемолимфе увеличивается содержание малонового диальдегида, в тканях ноги – уменьшается.
Ключевые слова: моллюск Anodonta cygnea, возраст, малоновый диальдегид, перекисное окисление липидов, окислительный стресс, гемолимфа, гепатопанкреас, жабры, мышцы..
Показать список литературы
Cписок литературы
Алимов А.Ф. 1967. О возможной роли животных-фильтраторов в процессах самоочищения водоемов // Моллюски и их роль в биоценозах и формировании фаун. Ленинград: Наука.
Андреева Л.И., Кожемякин Н.А., Кишкун А.А. 1988. Модификация методов определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой // Лабораторное дело. № 11. С. 41.
Анисимова А.А. 2013. Морфофункциональные параметры гемоцитов в оценке физиологического состояния двустворчатых моллюсков // Биол. моря. Т. 39. № 6. С. З89.
Барабой В.А. 1991. Механизмы стресса и перекисного окисления липидов // Успехи современной биологии. Т. 3. Вып. 6. С. 923.
Барабой В.А., Брехман И.И., Голотин В.Г., Кудряшов Ю.Б. 1992. Перекисное окисление и стресс. Санкт-Петербург: Наука.
Бельчева Н.Н., Кудряшова Ю.В., Истомина А.А., Чижов Т.Л. 2014. Возрастное изменение реакций антиоксидантных ферментов в жабрах приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis на окислительный стресс // Вопросы рыболовства. Т. 15. № 3. С. 306.
Владимиров Ю.А., Азизова О.А., Деев А.И., Козлов А.В., Осипов А.Н., Рощупкин Д.И. 1991. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники. Сер. Биофизика. Т. 29. С. 1.
Власов Б.В. 1935. Методы определения возраста (Unionidae) по раковине и их значение в научно-промысловых исследованиях // Записки Болшевской биологической станции. Вып. 7–8. С. 133.
Гидулянов А.А. 2014. Сравнительное изучение процессов пероксидации в тканях у отдельных представителей позвоночных и беспозвоночных животных // Ученые записки Таврического национального университета им. В. И. Вернадского. Сер. Биология, химия. Т. 27(66). № 2. С. 48.
Гостюхина О.Л., Солдатов А.А., Головина И.В., Столбов А.Я. 2005. Антиоксидантный ферментный комплекс тканей различных цветовых морф черноморского моллюска Mytilus galloprovincialis Lam. // Экол. моря. Вып. 68. С. 42.
Журавлев А.И., Пантюшенко В.Т. 1989. Свободнорадикальная биология. Москва: Моск. Вет. Акад. им. К. И. Скрябина.
Заварзин А.Л. 1953. К сравнительной гистологии крови и соединительной ткани. IV. О воспалительном новообразовании соединительной ткани у беззубки (Anodonta anatina L.). Избранные труды. Mосква: АН СССР. Т. 2.
Зенков Н.К., Лапкин В.З., Меньшикова Е.Б. 2001. Окислительный стресс: биохимический и патофизиологический аспекты. Москва: МАИК “Наука/Интерпериодика”.
Канунго М. 1982. Биохимия старения. Москва: Мир. (Kanungo M. S. 1982. Biochemistry of Ageing. Varanasi: Banaras Hindu University.)
Кольтовер В.К. 2000. Свободнорадикальная теория старения: исторический очерк // Успехи геронтологии № 4. С. 33.
Комфарт А. 1967. Биология старения. Москва: Мир. (Comfort A. 1964. The biology of senescence. New York: Holt, Rinehart and Winston).
Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К., Лапкин В.З. Бондарь И.А., Труфакин В.А. 2008. Окислительный стресс: патологические состояния и заболевания. Новосибирск: АРТА.
Метлицкий Л.В., Озерецковская О.Л., Кораблева Н.П., Давыдова М.А., Васюкова Н.И., Салькова Е.Г., Буланцева Е.А., Васильева К.В., Платонова Т.А., Любимова Н.В., Проценко М.А., Гладких Т.А., Караваева К.А., Ладыженская Э.П., Звягинцева Ю.В. 1984. Биохимия иммунитета, покоя, старения растений. Москва: Наука.
Присный А.А., Кулько С.В. 2012. Морфофункциональные особенности гемоцитов брюхоногого моллюска Stenomphalia ravergieri (Ferussac) // Научные ведомости Белгородского государственного университета. Сер. Естественные науки. № 9 (128). Вып. 19. С. 90.
Скулачев В.П. 2009. Новые сведения о биохимическом механизме запрограммированного старения организма и антиоксидантной защите митохондрий // Биохимия. Т. 74. Вып. 12. С. 1718.
Соколова А.С., Микряков В.Р., Жаворонкова О.Д., Кузьмичёва С.В. 2015. Морфо-физиологические показатели моллюска Anodonta cygnea (Linne, 1758) инвазированного водными клещами из рода Unionicola Haldeman, 1842 // Расширенные материалы IV международной конференции: Проблемы патологии, иммунологии и охраны здоровья рыб и других гидробионтов. Ярославль: Филигрань. С. 445.
Солдатов А.А., Гостюхина О.Л., Головина И.В. 2007. Антиоксидантный ферментный комплекс тканей двустворчатого моллюска Mytilus galloprovincialis Lam. в норме и условиях окислительного стресса (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. Т. 43. № 5. С. 621.
Старобогатов Я.И. 1988. Раки, моллюски. Ленинград: Лениздат.
Тарусов Б.Н. 1957. Физико-химические механизмы биологического действия ионизирующих излучений // Успехи современной биологии. Т. 44. Вып. 2. С. 171.
Тодоров И.Н., Тодоров Г.И. 2003. Стресс, старение и их биохимическая коррекция. Москва: Наука.
Тоцкий В.Н., Ершова О.Н., Топтиков В.А., Ковтун О.А., Драгоева А.Г., Лавренюк Т.И. 2013. Состояние антиоксидантной системы у представителей Rapana venosa (Valenciennes, 1846), обитающих в разных акваториях Одесского залива (Черное море) // Вісник Одеського національного університету. Сер. Біологія. Т. 18. Вып. 1(30). С. 7.
Хэм Ф., Кормак Д. Гистология. Москва: Мир, 1982. Т. 1. 272 с. (Ham A.W., Cormack D.H. 1979. Histology. Philadelphia: Lippincott.)
Физиологические механизмы старения. Ленинград: Наука. 1982.
Черников О.В., Молчанова В.И., Чикаловец И.В., Кондрашина А.С., Ли В., Лукьянов П.А. 2013. Лектины морских гидробионтов // Биохимия. Т. 78. Вып. 7. С. 977.
Черноморские моллюски: элементы сравнительной и экологической биохимии. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика. 2014.
Экотоксикологические исследования прибрежной черноморской ихтиофауны в районе Севастополя. Москва: ГЕОС. 2016.
Abele D., Brey T., Philipp E. 2009. Bivalve models of aging and the determination of molluscan lifespans // Exp. Gerontol. V. 44. P. 307.
Cheng T.C. 1981. Bivalves. In Invertebrate blood cells. London: Acad. Press. V. 2. P. 233.
Fiho W.D. 1996. Fish antioxidant defences – A comparative approach // Braz. J. Med. Biol. Res. V. 29. № 12. P. 1735.
Harman D. 1956. Aging: a theory based on free radical and radiation biology // J. Geronthol. V. 11. P. 298.
Hole L.M., Moore M.N., Bellamy D. 1995. Age-related cellular and physiological reactions to hypoxia and hyperthermia in marine mussels // Mar. Ecol.: Prog. Ser. V. 122. P. 173.
Radi A.R., Matkovics B. 1988. Effects of metal ions on the antioxidant enzyme activities, proteins contents and lipid peroxiidation of carp tissues // Comp. Biochem. Physiol. V. 906. № 1. P. 69.
Viarengo A., Pertica M., Canesi L., Accomando R., Mancinelli G., Orunesu M. 1989. Lipid peroxidation and level of antioxidant compounds (GSH, vitamin E) in the digestive glands of mussels of three different age groups exposed to anaerobic and aerobic conditions // Mar. Environ. Res. V. 28. P. 2991.
Winston G.W. 1991. Oxidants and antioxidants in aquatic animals // Comp. Biochem. Physiol. V. 100. № 1–2. P. 173.
Wootton E.C., Pipe R.K. 2003. Structural and functional characterization of the blood cells of the bivalve mollusc Scrobularia plana // Fish Shellfish Immunol. V. 15. P. 249.