Журнал "Биология внутренних вод"
№ 3 за 2017 год
А. Ф. Алимов
О продукции экосистемы.
Зоологический институт РАН, 199034 Санкт-Петербург, Университетская набережная, д. 1
e-mail: alimov@zin.ru
Обсуждены ряд аспектов формирования продукции и эффективности использования энергии в водных экосистемах. Продукция экосистемы рассмотрена как разность между суммарной первичной продукцией и суммарными тратами на обменные процессы всеми организмами в экосистеме. Получены уравнения зависимости продукции экосистемы от средней глубины водоема и доли первичной продукции фитопланктона в суммарной продукции. Среднее значение коэффициента эффективности экосистемы ряда водоемов (53%) показывает, что водные экосистемы эффективно используют энергию. Эффективность использования энергии увеличивается с возрастанием скорости оборота биомассы. Получение высокой продукции в экосистеме возможно только при упрощении ее структуры.
Ключевые слова: экосистема, продукция, эффективность использования энергии, фитопланктон, макрофиты, перифитон.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алимов А.Ф. Элементы теории функционирования водных экосистем. СПб.: Наука, 2000. 147 с.
2. Алимов А.Ф., Богатов В.В., Голубков С.М. Продукционная гидробиология. СПб.: Наука, 2013. 343 с.
3. Биологическая продуктивность северных озер. 2: Озера Зеленецкое и Акулькино. Л.: Наука, 1976. 182 с.
4. Многолетние изменения биологических сообществ мезотрофных озер в условиях климатических флуктуаций и эвтрофирования. СПб.: Лема, 2008. 260 с.
5. Розенберг Г.С. Волжский бассейн на пути к устойчивому развитию. Тольятти: Кассандра, 2009. 477 с.
6. Экологическая система Нарочанских озер. Минск: Университетское, 1985. 303 с.
7. Ecology of oligotrophic, subarctic Thingvallavatn // Oikos. 1992. V. 64. № 1–2. 539 p.
Т. В. Жукова*, Н. П. Радчикова**, Т. М. Михеева*, Е. В. Лукьянова*, Р. З. Ковалевская*, Ю. К. Верес*, А. Б. Медвинский***, Б. В. Адамович*
Многолетняя динамика взвешенного вещества Нарочанских озер: тренд или интервенция.
* Белорусский государственный университет, 220030 Минск, пр. Независимости, 4, Белоруссия
** Московский государственный психолого-педагогический университет, 127051 Москва, ул. Сретенка, 15
*** Институт теоретической и экспериментальной биофизики, 142290 Пущино, Московская обл., ул. Институтская, 3
e-mail: belaqualab@gmail.com
Проанализированы данные о многолетней динамике взвешенного вещества в Нарочанских озерах с помощью моделей авторегрессии и проинтегрированного скользящего среднего (АРПСС) и модели Хольта–Винтерса. Сравнение моделей показало, что помимо сезонных флуктуаций для всех озер Нарочанской группы имело место резкое воздействие, приведшее к быстрому уменьшению абсолютных величин и снижению колебаний концентрации сестона. Модели свидетельствуют, что в отличие от озер Нарочь и Мястро динамика концентрации сестона в эвтрофном оз. Баторино характеризуется более длительным периодом стабилизации после воздействия, основной пик которого пришелся на 1991 г.
Ключевые слова: взвешенное вещество, многолетняя динамика, модели авторегрессии и проинтегрированного скользящего среднего, линейный тренд, интервенция, эвтрофирование, бентификация.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Верес Ю.К. Органическое вещество, его компонентный состав и деструкция в воде озер разного трофического типа: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Минск, 2013. 113 с.
2. Верес Ю.К., Жукова Т.В., Остапеня А.П. Биогенный состав взвешенного органического вещества в водоемах Национального парка “Нарочанский” // Вестн. Белорус. гос. ун-та. 2012. Сер. 2. № 3. С. 40–44.
3. Верес Ю.К., Жукова Т.В., Остапеня А.П. Стехиометрический состав (C:N:P) взвешенного вещества в озерах разного трофического типа // Органическое вещество и биогенные элементы во внутренних водоемах и морских водах: Матер. V Всерос. симп. Петрозаводск, 2012. С. 208–212.
4. Деренговская Р.А. Биогенные механизмы седиментации сестона в озерах: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Минск, 2005. 23 с.
5. Жукова Т.В. Роль дрейссены (Dreissena polymorpha Pallas) в функционировании Нарочанских озер // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Лекции и матер. докл. II-ой Междунар. шк.-конф. Борок, 2013. С. 55–59.
6. Жукова Т.В., Радчикова Н.П., Адамович Б.В. и др. Температурный режим Нарочанских озер на фоне многолетних климатических изменений // Вестн. Белорус. гос. ун-та. 2014. Сер. 2. № 2. С. 26–35.
7. Остапеня А.П. Соотношение между легко- и трудноокисляемыми органическими веществами в сестоне озер разного типа // Биологические исследования на внутренних водоемах Прибалтики. Минск: Выш. шк., 1973. С. 22–25.
8. Остапеня А.П. Детрит и его роль в водных экосистемах // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 257–271.
9. Остапеня А.П. Сестон и детрит как структурные и функциональные компоненты водных экосистем: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Киев, 1989. 42 с.
10. Остапеня А.П. Деэвтрофирование или бентификация? // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды: Матер. III Междунар. науч. конф. Минск, 2007. С. 31–32.
11. Остапеня А.П., Жукова Т.В., Михеева Т.М. и др. Бентификация озерной экосистемы: причины, механизмы, возможные последствия, перспективы исследований // Тр. Белорус. гос. ун-та. 2012. Т. 7. Ч. 1. С. 135–148.
12. Adamovich B.V., Kovalevskaya R.Z., Radchikova N.P. et al. The divergence of chlorophyll dynamics in the Naroch Lakes // Biophysics. 2015. V. 60. № 4. P. 632–638.
13. Adamovich B.V., Zhukova T.V., Mikheeva T.M. et al. Long-term variations of the trophic state index in the Narochanskie lakes and its relation with the major hydroecological parameters // Water Res. 2016. V. 43. № 5. P. 809–817.
14. Burlakova L.E., Karatayev A.Y., Padilla D.K. Changes in the distribution and abundance of Dreissena polymorpha within lakes through time // Hydrobiologia. 2006. V. 571. Р. 133–146.
15. Callieri С. Sedimentation and aggregate dynamics in Lake Maggiore, a large, deep lake in Northern Italy // Mem. Ist. ital. Idrobiol. 1997. V. 56. P. 37–50.
16. Jun X., Min Z. Primary consumers as bioindicator of nitrogen pollution in lake planktonic and benthic food webs // Ecol. Indicators. 2012. V. 14. P. 189–196.
17. Kreeger D.A., Goulden C.E., Kilham S.S. et al. Seasonal changes in the biochemistry of lake seston // Freshwater Biol. 1997. V. 38. P. 539–554.
18. Mayer C.M., Keats R.A., Rudstam L.G., Mills E. L. Scale-dependent effects of zebra mussels on benthic invertebrates in a large eutrophic lake // J. North Amer. Benthol. Soc. 2002. V. 21. P. 616–633.
19. Mills E.L., Casselman J.M., Dermott R. et al. Lake Ontario: food web dynamics in a changing ecosystem (1970–2000) // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2003. V. 60. P. 471–490.
20. Niemisto J., Holmroos H., Pekcan-Hekim Z., Horppila J. Interactions between sediment resuspension and sediment quality decrease the TN: TP ratio in a shallow lake // Limnol., Oceanogr. 2008. V. 53. № 6. P. 2407–2415.
21. Ostapenia A.P., Parparov A., Berman T. Lability of organic carbon in lakes of different trophic status // Freshwater Biol. 2009. V. 54. P. 1312–1323.
22. Park S., Müller-Navarra D.-C., Goldman C.R. Seston essential fatty acids and carbon to phosphorus ratios as predictors for Daphnia pulex dynamics in a large reservoir, Lake Berryessa // Hydrobiologia. 2003. V. 505. P. 171–178.
23. Parparov A.S., Berman T., Grossart H.-P., Simon M. Metabolic activity associated with lacustrine seston // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 15. P. 77–87.
24. Sterner R.W., Andersen T., Elser J.J. et al. Scale-dependent carbon : nitrogen : phosphorus seston stoichiometry in marine and freshwaters // Limnol., Oceanogr. 2008. V. 53. № 3. P. 1169–1180.
25. Strayer D.L., Malcom H.M. Shell decay rates of native and alien freshwater bivalves and implications for habitat engineering // Freshwater Biol. 2007. V. 52. P. 1611–1617.
26. Van Donk E., Hessen D.O., Verschoor A.M., Gulati R.D. Re-oligotrophication by phosphorus reduction and effects on seston quality in lakes // Limnologica. 2008. V. 38. P. 189–202.
27. Zhukova T.V. Long-Term Dynamics of Phosphorus in the Narochanskie Lakes and Factors Determining It // Water Res. 2013. V. 40. № 5. P. 510–517.
Н. М. Минеева, А. М. Андреева, И. П. Рябцева, А. И. Копылов, Е. А. Соколова, И. В. Митропольская
Содержание свободных суммарных нуклеотидов в планктоне Рыбинского водохранилища (верхняя Волга).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: mineeva@ibiw.yaroslavl.ru
Определены свободные суммарные нуклеотиды (ССН) в планктоне Рыбинского водохранилища и его размерных фракциях с использованием авторской модификации спектрофотометрического метода. Содержание ССН, составлявшее весной, летом и осенью соответственно 58.1 ± 5.4, 75.2 ± 4.6 и 64.1 ± 7.3 мкг/л, тесно связано с суммарной биомассой планктона (r = 0.67), показатель ССН/Хл – с отношением биомассы гетеротрофных и автотрофных организмов (r = 0.96). Вклад фракции с размерами >3 мкм (микропланктон и нанопланктон) в фонд ССН составляет весной 77 ± 4%, летом 74 ± 3%, осенью 47 ± 3%, а фракции с размерами 0.45–3 мкм (ультрапланктон) – соответственно 23 ± 4, 26 ± 3 и 53 ± 3%. Получены регрессионные зависимости для оценки биомассы планктона по содержанию ССН.
Ключевые слова: свободные суммарные нуклеотиды, планктон, размерные фракции, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Бактериопланктон водохранилищ Верхней и Средней Волги. М.: Изд-во Соврем. гос. ун-та, 2008. 377 с.
2. Копылов А.И., Лазарева В.И., Пырина И.Л. и др. Микробная “петля” в планктонной трофической сети крупного равнинного водохранилища // Успехи соврем. биол. 2010. № 6. С. 544–556.
3. Лазарева В.И. Структура и динамика зоопланктона Рыбинского водохранилища. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. 183 с.
4. Луста К.А., Фихте Б.А. Методы определения жизнеспособности микроорганизмов. Пущино: Науч. центр биол. исследований; Ин-т биохимии и физиологии микроорганизмов АН СССР, 1990. 186 с.
5. Методика изучения биоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 239 с.
6. Минеева Н.М. Растительные пигменты в воде волжских водохранилищ. М.: Наука, 2004. 156 с.
7. Минеева Н.М., Абрамова Н.Н., Андреева А.М. Динамика хлорофилла и АТФ в планктоне крупного равнинного водохранилища в период вспышки трофии // Вода. Химия и экология. 2014. № 12. С. 26–34.
8. Минеева Н.М., Андреева А.М., Рябцева И.П. Содержание свободных нуклеотидов и хлорофилла в планктоне водохранилищ Верхней Волги // Поволжск. экол. журн. 2016. № 1. С. 61–71.
9. Минеева Н.М., Корнева Л.Г., Соловьева В.В. Влияние факторов среды на фотосинтетическую активность фитопланктона водохранилищ Волги // Биология внутр. вод. 2016. № 3. С. 47–56.
10. Минеева Н.М., Корнева Л.Г., Соловьева В.В. Содержание хлорофилла в единице биомассы фитопланктона водохранилищ Волжского каскада (Россия) // Альгология. 2014. Т. 24. № 4. С. 476–487.
11. Михеева Т.М. Проблемы изучения фитопланктона: нанофитопланктон (дефиниция, фракционирование и значимость в первичной продукции). Обзор // Гидробиол. журн. 1988. Т. 24. № 4. С. 3–21.
12. Практикум по биохимии. М.: МГУ, 1989. 508 с.
13. Рыбинское водохранилище и его жизнь. Л.: Наука, 1972. 364 с.
14. Сысоев А.А. Биохимические аспекты оценки стадий продукционно-деструкционной сукцессии микропланктона и физиологического состояния микроводорослей в культурах: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Севастополь, 2014. 23 с.
15. Сысоев А.А., Сысоева И.В. Биохимические основы оценки стадии продукционно-деструкционной сукцессии микропланктона вод пролива Брансфилда (Западная Антарктида) в ранне-осенний сезон 2002 г. // Укр. Антаркт. журн. 2005. № 3. С. 108–114.
16. Фитопланктон Волги. Экология фитопланктона Рыбинского водохранилища. Тольятти: Ин-т экологии Волжск. бассейна РАН, 1999. 264 с.
17. Beardall J., Young E., Roberts S. Approaches for determining phytoplankton nutrient limitation // Aquat. Sci. 2001. V. 63. P. 44–69.
18. Behrenfeld M.J., Prasil O., Babin M., Bruyant F. Review in search of a physiological basis for covariations in light-limited and light-saturated photosynthesis // J. Phycol. 2004. V. 40. P. 4–25.
19. Bianchi T.S., Canuel E.A. Chemical Biomarkers in Aquatic Ecosystems. Princeton: Princeton Univ. Press, 2011. 392 p.
20. Cano M.G., Casco M.A., Solari L.C. et al. Implications of rapid changes in chlorophyll a of plankton, epipelon, and epiphyton in a Pampean shallow lake: an interpretation in terms of a conceptual model // Hydrobiologia. 2008. V. 614. № 1. P. 33–45.
21. Carstensen J., Henriksen P. Phytoplankton biomass response to nitrogen inputs: a method for WFD boundary setting applied to Danish coastal waters // Hydrobiologia. 2009. V. 633. № 1. P. 137–149.
22. Cavari B. ATP in Lake Kinneret: indicator of microbial biomass or of phosphorus deficiency // Limnol., Oceanogr. 1976. V. 21. № 2. P. 231–236.
23. Chianda G., Pagnotta R. Ratio ATP/chlorophyll as an index of rivers water quality // Verh. Int. Ver. theor. und angew. Limnol. 1978. V. 20. № 3. P. 1897–1901.
24. Dumont H.J., Van de Velde I., Dumont S. The dry weight estimate of biomass in selection of Cladocera, Copepoda and Rotifera from the plankton, periphyton and benthos of continental waters // Oecologia. 1975. V. 19. № 1. P. 75–97.
25. Holm-Hansen O. ATP levels in algal cells as influenced by environmental conditions // Plant and Cell Physiol. 1970. V. 11. № 4. P. 689–700.
26. Holm-Hansen O. The use of ATP determination in ecological studies // Bull. Ecol. Res. Comm. Stokholm. 1973. V. 17. P. 215–222.
27. Holm-Hansen O., Booth C.R. The measurement of adenosine triphosphate in the ocean and its ecological significance // Limnol., Oceanogr. 1966. V. 17. № 4. P. 544–555.
28. Hunter B.L., Laws E.A. ATP and chlorophyll “a” as estimators of phytoplankton carbon biomass // Limnol., Oceanogr. 1981. V. 26. № 5. P. 944–956.
29. ICES Zooplankton Methodology Manual. L.; San Diego: Acad. Press, 2000. 684 p.
30. Karl D.M., Winn C.D. Adenine metabolism and nucleic acid synthesis: application to microbiological oceanography // Heterotrophic Activity in the Sea. N.Y.: Plenum Press, 1984. P. 197–216.
31. Kroon B.M.A., Thoms S. From electron to biomass: a mechanistic model to describe phytoplankton photosynthesis and steady-state growth rate // J. Phycol. 2006. V. 42. № 3. P. 593–609.
32. Naselli-Flores L., Barone R. Fight on plankton or phytoplankton shape and size as adaptive tools to get ahead in the struggle for life // Cryptogamie Algol. 2011. V. 32. № 2. P. 157–204.
33. Noges T. ATP as an index of phytoplankton productivity. The Chl a/ATP quotient // Int. Rev. gesamt. Hydrobiol. 1989. V. 74. № 2. P. 121–133.
34. Norland S. The relationship between biomass and volume of bacteria // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. L.: Lewis Publ., 1993. P. 303–308.
35. Paerl H.W., Tilzer M.M., Goldman C.R. Chlorophyll a versus adenosine triphophate as algal biomass indicator on lakes // J. Phycol. 1976. V. 12. № 2. P. 242–246.
36. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPY for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
37. Saad J.F., Schiaffino R.M., Vinocur A. et al. Microbial planktonic communities of freshwater environments from Tierra del Fuego: dominant trophic strategies in lakes with contrasting features // J. Plankton Res. 2013. V. 35. № 6. P. 1220–1233.
38. SCOR-UNESCO Working Group 17. Determination of photosynthetic pigments // Determination of photosynthetic pigments in sea water. Monographs on oceanographic methodology. Montreux: UNESСO, 1966. P. 9–18.
39. Steigenberger S., Terjung F., Grossart H.-P., Reuter R. Blue-fluorescence of NADPH as an indicator of marine primary production // EARSeL eProceedings. 2004. № 3 (1). P. 18–25.
40. Weithoff G. The concepts of ‘‘plant functional types’’ and ‘‘functional diversity’’ in lake phytoplankton, a new understanding of phytoplankton ecology? // Freshwater Biol. 2003. V. 48. № 9. P. 1669–1675.
41. Yacobi Y.Z., Zohary T. Carbon: chlorophyll-a ratio, assimilation numbers and turnover times of Lake Kinneret phytoplankton // Hydrobiologia. 2010. V. 639. P. 185–196.
Нгуен Динь Ты*, В. Г. Гагарин**
Свободноживущие нематоды из мангровых зарослей эстуария реки Иэн (Вьетнам).
* Институт экологии и биологических ресурсов, Вьетнамская академия наук и технологий, 10000 Ханой, 13 Хоанг Куок Вьет, Вьетнам
** Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru
В пробах из эстуария р. Иэн (Северный Вьетнам) обнаружено 50 видов свободноживущих нематод, из них 10 – новые для науки. По численности доминировали Valvaelaimoides macroamphida Gagarin, 2016, V. minor Gagarin, 2016, Micromicron cephalatum Cobb, 1920 и Sphaerotheristus nothus Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2008. Приведены видовой состав и иллюстрированное описание нового для науки вида Theristus consobrinus sp. n., основные морфологические признаки 13 видов, входящих в состав видовой группы “flevensis” рода Theristus и пикториальный ключ для определения самцов данной видовой группы.
Ключевые слова: Вьетнам, река Иэн, мангровые заросли, свободноживущие нематоды, Theristus consobrinus sp.n., видовая группа “flevensis” рода Theristus.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань. Свободноживущие нематоды дельты реки Меконг (Вьетнам) // Биология внутр. вод. 2007. № 3. С. 3–10.
2. Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань. Свободноживущие нематоды протоки Ча Ли устья реки Красная, Вьетнам // Биология внутр. вод. 2012. № 1. С. 15–22.
3. Нгуен Динь Ты, Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань и др. Два новых вида нематод рода Daptonema Cobb, 1920 (Nematoda, Xyalidae) из мангровых зарослей в устье реки Красная (Вьетнам) // Биология внутр. вод. 2014. № 2. С. 1–9.
4. Чесунов А.В. Свободноживущие нематоды группы видов Theristus flevensis (Monhysterida) в Каспийском море // Бюл. Москов. о-ва испыт. природы. 1981. Т. 86. Вып. 2. С. 64–70.
5. Andrássy I. Nematoden aus ägyptischen Gewässern (Ergebnisse der Zoologischen Aufsammlungen des Ungarischhen Naturwissenschaflingen Museum in Ägypten in Jahre 1957) // Ann. hist. nat. Mus. Nath. Hung. 1958. T. (9)50. S. 138–141.
6. Andrássy I. A Dozen New Nematode Species from Hungary // Opusc. Zool. Budapest. 1985. T. 19–20. P. 3–9.
7. Filipjev J. Les Nématodes libres de la baie de la Néva et de léxtrémité orientale du Golfe de Finlande. Denxiéme partie // Hydrobiol. 1930. Bd 21. S. 1–64.
8. Gagarin V.G., Nguyen Vu Thanh. Two species of free-living nematodes of family Leptolaimidae (Nematoda, Plectida) from mangrove of Mekong River Delta, Vietnam // Int. J. Nematol. 2009. V. 19. № 1. P. 1–6.
9. Gerlach S. Freilebende Nematoden aus der Verwandfschaft der Gattung Theristus // Zool. Jarb. (Syst.) 1951. Bd 80. S. 379–398.
10. Gerlach S. Freilebende Nematoden aus der Lagoa Radrigo de freitas (Rio de Janero) // Zool. Anz. 1954. Bd 153. S. 135–143.
11. Gerlach S. Zur Kenntnis der freilebenden marinen Nematoden von san Salvador // Z. wiss. Zool. 1955. Bd 158. S. 249–303.
12. Gerlach S. Marine Nematoden aus dem Mangrove-Gebiet von Cananeia (Brasilische Meeres Nematoden III) // Abh. Acad. Wiss. Lit. Mainz. (math. natur.kl.). 1957. № 5. P. 129–176.
13. Hopper B.E. Theristus polychaetophilus n. sp., an external parasite of the spionid polychaete Scolelepis (Scolelepis) Squamata (Müller, 1806) // Can. J. Zool. 1996. V. 44. P. 787–791.
14. Kito K., Aryuthaka C. Free-living marine nematoden of shrimp culture ponds in Thailand. I. New species of the genera Diplolaimella and Thalassomonhystera (Monhysterida) and Theristus (Xyalidae) // Hydrobiologia. 1998. V. 379. P. 123–133.
15. Man J.G. Vrijlevende Nématoden // Flora en Fauna der Zuiderzee. Leiden: Te Helder (C. de Boer), 1922. P. 214–261.
16. Schulz von E. Das Farbstreifen Sandwatt und seine Fauna, eine ökologische-biozönotische Untersuchund an der nordsee // Kieler Meeresforsch. 1936. Bd 1. S. 360–378.
17. Skwarra E. Ergänzung zur Kenntnis eines freilebenden Nematoden, Monhystera bipunctata G. Schneider // Arch. Hydrobiol. 1924. Bd 15. S. 225–226.
18. Timm R.W. A survey of the marine Nematodes of Chesapeake Bay, Maryland // Contr. Chesapeake boil. Lab. 1952. V. 95. P. 1–70.
19. Wieser W., Hopper B. Marine nematodes of the east coast of North America. I. Florida // Bull. Mus. Comp. Zool. Harv. 1967. V. 135. P. 239–344.
Е. И. Вейсберг
Видовой состав растительных группировок полосы обмеления в предгорном озере Большое Миассово (Южный Урал).
Ильменский государственный заповедник, 456317 Челябинская область, г. Миасс, ул. Ильменский заповедник, д. 1
e-mail: veisberg@mineralogy.ru
Исследован специфичный видовой состав временных растительных группировок, образующихся в прибрежной зоне озер при периодическом обмелении. Проанализирована структура экологических групп видов по отношению к фактору увлажнения, жизненных форм, фитоценотических групп, как отражение совокупности разнообразных жизненных стратегий растений при резких сменах условий среды. Выявлена зависимость пространственного распределения видов и многолетней динамики флористического комплекса от типов грунта.
Ключевые слова: флора, таксономическая структура, экологические группы, жизненные формы, фитоценотические группы, полоса обмеления, предгорное озеро, Южный Урал.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Вейсберг Е.И. Разнообразие водной растительности системы озер Большое Миассово–Малое Миассово (Южный Урал) // Turczaninowia. 2014. Т. 17. № 4. С. 84–96.
2. Воронов А.Г. Геоботаника. М.: Высш. шк., 1973. 384 с.
3. Горновский К.В. Водная растительность озер Б. Миассово и Б. Таткуль // Флора и лесная растительность Ильменского государственного заповедника им. В. И. Ленина. Свердловск: Ильменск. гос. заповедник, 1961. С. 57–84.
4. Горчаковский П.Л., Золотарева Н.В., Коротеева Е.В., Подгаевская Е.Н. Фиторазнообразие Ильменского заповедника в системе охраны и мониторинга. Екатеринбург: Гощицкий, 2005. 192 с.
5. Куликов П.В. Конспект флоры Челябинской области (сосудистые растения). Екатеринбург; Миасс: Геотур, 2005. 537 с.
6. Миркин Б.М., Наумова Л.Г., Соломещ А.И. Современная наука о растительности. М.: Логос, 2002. 264 с.
7. Папченков В.Г. Растительный покров водоемов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБиНТ, 2001. 214 с.
8. Работнов Т.А. Фитоценология. М.: Изд-во МГУ, 1978. 383 с.
9. Серебряков И. Г. Экологическая морфология растений. М.: Сов. наука, 1962. 378 с.
10. Экология озера Большое Миассово. Миасс: ИГЗ УрО РАН, 2000. 318 с.
11. Grime J.P. Plant Strategies and Vegetation Processes. Chichester: John Wiley & Sons, Ltd., 1979. 222 p.
12. Veisberg E.I. Spesies composition and morpho-ecological groups of aquatic macrophytes in foothill lakes on the eastern slope of the Southern Urals (Chelyabinsk region, Russia) // Check List. 2015. Т. 11. № 2. С. 1617.
М. В. Чертопруд, Д. М. Палатов
Сообщества макрозообентоса малых водотоков Восточных Балкан.
Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, 119992 Москва, Воробьевы горы, 1
e-mail: lymnaea@yandex.ru
На собственных данных (166 станций) систематизированы сообщества макрозообентоса (донных и зарослевых беспозвоночных) малых рек и ручьев гор Болгарии (Балканы и Родопы) и Европейской Турции (хребет Истранджа). Описано 17 типов сообществ, их биотопы, суммарное обилие макрозообентоса, градации сапробности и комплексы доминирующих видов. Приведен краткий таксономический обзор макрофауны региона. Обсуждаются причины изменчивости реофильных сообществ макрозообентоса, региональные особенности сообществ, связанные с местным ландшафтом и фауной.
Ключевые слова: Балканы, Болгария, Турция, макрозообентос, сообщества, классификация.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алимов А.Ф. Интенсивность обмена у водных пойкилотермных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 5–20.
2. Палатов Д.М. Высотная изменчивость реофильных сообществ макробентоса Кавказа и Закавказья // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Матер. докл. II-й Всерос. шк.-конф. Ярославль, 2014. Т. 2. С. 314–317.
3. Чертопруд М.В. Разнообразие и классификация реофильных сообществ макробентоса средней полосы Европейской России // Журн. общ. биол. 2011. Т. 72. № 1. С. 51–73.
4. Чертопруд М.В. Разнообразие реофильных сообществ макробентоса // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Матер. докл. II-й Всерос. шк.-конф. Ярославль, 2014. Т. 1. С. 112–124.
5. Чертопруд М.В., Палатов Д.М. Реофильные сообщества макробентоса юго-запада Кольского полуострова // Биология внутр. вод. 2013. № 4. С. 34–42.
6. Чертопруд М.В., Палатов Д.М. Фауна и сообщества реофильного макробентоса восточной части Новосибирской области: эффекты крупномасштабного экотона // Вестн. МГУ. 2013. Сер. 16. Биология. № 3. С. 33–38.
7. Braasch D., Russev B.K. New faunistic data on the family Heptageniidae (Ephemeroptera) in Bulgaria // Acta Zool. Bulgarica. 1986. V. 32. P. 48–51.
8. Glöer P., Georgiev D. Bulgaria, a hot spot of Biodiversity (Gastropoda: Rissooidea)? // J. Conchol. 2011. V. 40. № 3. P. 489–504.
9. Hilsenhoff W. An improved biotic index of organic stream pollution // Great Lakes Entomol. 1987. V. 20. P. 31–39.
10. Ibrahimi H., Kučinić M., Gashi A., Grapci-Kotori L. The caddisfly fauna (Insecta, Trichoptera) of the rivers of the Black Sea basin in Kosovo with distributional data for some rare species // Zookeys. 2012. V. 182. P. 71–85.
11. Li J., Herlihy A., Gerth W. et al. Variability in stream macroinvertebrates at multiple spatial scales // Freshwater Biol. 2001. V. 46. № 1. P. 87–97.
12. Miljanović B. Macrozoobentos reka Kolubare, Obnice i Jablanice. Belgrade: Zadažbine Andrejević, 2001. 88 p.
13. Parasiewicz P. MesoHABSIM – a concept for application of instream flow models in river restoration planning // Fisheries. 2001. V. 29. № 9. P. 6–13.
14. Paunović M., Simić V., Jakovćev-Topodrović D., Stoyanović B. Results of investigating the macroinvertebrate community of the Danube River on the sector upstream from the Iron Gate // Arch. Biol. Sci. 2005. V. 57. № 1. P. 57–63.
15. Pennak R. Toward a classification of lotic habitats // Hydrobiologia. 1971. V. 38. № 2. P. 321–334.
16. Shelford V. Animal Communities of temperate America. Chikago: Univ. Chikago Press, 1913. 319 p.
17. Vidinova Ya., Yaneva I., Tyufekchieva V. Ephemeroptera and Plecoptera (Insecta) from the Bulgarian part of the Struma River // Acta Zool. Bulgarica. 2006. V. 58. № 1. P. 123–128.
Н. И. Силкина, В. Р. Микряков, Д. В. Микряков
показатели врожденного иммунитета и окислительные процессы в сыворотке крови и печени плотвы Rutilus rutilus (L.) реки Кубань.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: sni@ibiw.yaroslavl.ru
Исследованы антимикробные свойства сыворотки крови, содержание иммунных комплексов, продуктов перекисного окисления липидов и антиоксидантов в сыворотке крови и печени плотвы Rutilus rutilus (L.), обитающей в р. Кубань в районах с разным уровнем антропогенного загрязнения. Показана связь исследованных признаков с местом обитания рыб.
Ключевые слова: рыбы, гуморальный иммунитет, перекисное окисление липидов, антиокислительная активность.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андрева Л.И., Кожемякин Н.А., Кишкун А.А. Модификация методов определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой // Лаб. дело. 1988. № 11. С. 41–43.
2. Гриневич Ю.А., Алферов А.Н. Определение иммунных комплексов в крови онкологических больных // Лаб. дело. 1981. № 8. С. 493–496.
3. Зенков Н.К., Меньшикова Е.Б., Вольский Н.Н., Козлов В.А. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз // Успeхи соврем. биол. 1999. Т. 119. № 5. С. 440–450.
4. Койко Р., Саншайн Д., Бенджамини Э. Иммунология: Уч. пособие. М.: Академия, 2008. 368 с.
5. Козловская В.И., Павлов Д.Ф., Чуйко Г.М. и др. Влияние загрязняющих веществ на состояние рыбы в Шекснинском плесе Рыбинского водохранилища // Влияние стоков Череповецкого промышленного узла на экологическое состояние Рыбинского водохранилища. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1990. С. 123–143.
6. Логинов С.И., Смирнов П.Н., Трунов А.Н. Иммунные комплексы у животных и человека: норма и патология. Новосибирск: Рос. акад. с.-х. наук, Сиб. отд. Ин-тa эксперимент. ветеринарии Сибири и Дальнего Востока, 1999. 144 с.
7. Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К., Ланкин В.З. и др. Окислительный стресс. Патологические состояния и заболевания. Новосибирск: АРТА, 2008. 284 с.
8. Микряков В.Р. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН CCCР, 1991. 154 с.
9. Микряков В.Р., Балабанова Л.В., Заботкина Е.А. и др. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление среды. М.: Наука, 2001. 126 с.
10. Микряков В.Р., Силкина Н.И., Микряков Д.В. Влияние антропогенного загрязнения на иммунологические и биохимические механизмы поддержания гомеостаза у рыб Черного моря // Биология моря. 2011. Т. 37. № 2. С. 142–148.
11. Минеев А.К. Морфофункциональные изменения у плотвы Rutilus rutilus Саратовского водохранилища // Вопр. рыболовства. 2014. Т. 15. № 2. С. 282–298.
12. Минеев А.К., Калинин Е.А. Особенности лейкоцитарной формулы у плотвы (Rutilus rutilus Linnaeus, 1758) из водоемов разного типа (на примере Саратовского водохранилища и малых рек республики Удмуртия) // Изв. Самарск. науч. центра РАН. 2012. Т. 14. № 1–1?. С. 213–217.
13. Моисеенко Т.И. Водная экотоксикология: Теоретические и прикладные аспекты. М.: Наука, 2009. 400 с.
14. Москул Г.А. Рыбохозяйственное освоение Краснодарского водохранилища. СПб.: Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1994. 137 с.
15. Немова Н.Н., Высоцкая Р.У. Биохимическая индикация состояния рыб. М.: Наука, 2004. 215 с.
16. Никитина Т.А., Белан Е.В. Состояние водных экологических систем бассейна реки Кубань (среднее и нижнее течение) // Современные наукоемкие технологии. 2010. № 1. С. 66–68.
17. Первиков Ю.В., Эльберт Л.Б. Иммунные комплексы при вирусных инфекциях. М.: Медицина, 1984. 160 с.
18. Решетников Ю.С., Попова О.А., Кашулин Н.А. и др. Оценка благополучия рыбной части водного сообщества по результатам морфопатологического анализа рыб // Успехи соврем. биол. 1999. Т. 119. № 2. С. 165–177.
19. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Мир, 2000. 592 с. (Roitt I., Brostoff J., Male D. Immunology. L.: Mosby Int. Ltd., 1998. 423 p.).
20. Руднева И.И., Шевченко Н.Ф., Залевская И.Н., Жерко Н.В. Биомониторинг прибрежных вод Черного моря // Вод. ресурсы. 2005. Т. 32. № 2. С. 238–246.
21. Семенов В.Л., Ярош А.М. Метод определения антиокислительной активности биологического материала // Укр. биохим. журн. 1985. Т. 57. № 3. C. 50–52.
22. Сеструхин М. Живая и мертвая вода Кубани. Что будет с водными ресурсами края? // ЮГА. РУ. 21 марта 2007. С. 2.
23. Силкина Н.И., Микряков В.Р., Микряков Д.В. Особенности липидного обмена леща Abramis brama, обитающего в реках Южного Урала // Экология. 2010. № 6. С. 403–480.
24. Силкина Н.И., Микряков Д.В., Микряков В.Р. Влияние антропогенного загрязнения на окислительные процессы в печени рыб Рыбинского водохранилища // Экология. 2012. № 4. С. 1–5.
25. Силкина Н.И., Микряков Д.В., Микряков В.Р. Некоторые иммунобиохимические показатели леща Abramis brama, обитающего в реке Кубань // Экология. 2013. № 4. С. 296–299.
26. Kuzminova N., Rudneva I.I., Salekhova L. et al. State of Black Scorpion fish (Scorpaena porcus L., 1758) inhabited coastal area of Sevastopol region (Black Sea) in 1998–2008 // Turkish J. Fish. and Aquat. Sci. 2011. № 11. P. 101–111.
27. Mechanisms of immunopathology. N.Y.; Chichester; Brisbane; Toronto: John Wiley and Sons, 1979. 400 p.
28. Moseley R., Hilton J.R., Waddington R.J. et al. Comparison of oxidative stress biomarker profiles be tween acute and chronic wound environments // Wound Rep. Regen. 2004. V. 12. № 4. P. 419–429.
29. Rudneva I.I., Kuzminova N.S. Effect of chronic pollution on hepatic antioxidant system of Black Sea fish species // Int. J. Sci. and Nature. 2011. V. 2. № 2. P. 279–286.
30. Winston G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals // Comp. Biochem. and Physiol. 1991. V. 100. № 1–2. P. 173–176.
А. А. Филиппов, А. А. Болотовский, Б. А. Лёвин, И. Л. Голованова
Влияние трийодтиронина на активность и чувствительность гликозидаз молоди синца Ballerus ballerus (L.) к действию тяжелых металлов (Cu, Zn, Pb).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: golovanova5353@mail.ru
Исследовано влияние экзогенного трийодтиронина (0.25 нг/мл) на активность и чувствительность гликозидаз (мальтазы, амилолитической активности) в целом организме молоди синца Ballerus ballerus (L.) к in vitro действию ионов Cu, Zn и Pb (25 мг/л). Установлено, что трийодтиронин повышает амилолитическую активность и не меняет активность мальтазы в целом организме рыб. Tрийодтиронин снижает чувствительность гликозидаз, гидролизующих крахмал, к ионам биогенных металлов Cu и Zn и несколько повышает чувствительность мальтазы к действию ионов Cu, Zn и Pb.
Ключевые слова: Cyprinidae, синец, пищеварительные гликозидазы, трийодтиронин, тяжелые металлы, Cu, Zn, Pb.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Голованова И.Л., Урванцева Г.А. Влияние свинца на активность гликозидаз слизистой оболочки кишечника рыб // Тр. Карельск. науч. центра РАН. 2014. № 5. С. 195–199.
2. Голованова И.Л., Филиппов А.А., Болотовский А.А., Лёвин Б.А. Характеристика пищеварительных гликозидаз кишечника планктоядного и бентоядного видов рыб рода Ballerus (Cyprinidae) // Журн. эволюц. биохимии и физиологии. 2015. Т. 51. № 1. С. 17–20.
3. Кузьмина В.В., Лёвин Б.А., Лю Вэй, Русанова П.В. Влияние тиреоидных гормонов на динамику активности ферментов слизистой оболочки кишечника молоди плотвы Rutilus rutilus // Вопр. ихтиологии. 2010. Т. 50. № 3. С. 405–410.
4. Перевозников М.А., Богданова Е.А. Тяжелые металлы в пресноводных экосистемах. СПб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1999. 228 с.
5. Перечень рыбохозяйственных нормативов: предельно допустимых концентраций (ПДК) и ориентировочно безопасных уровней воздействия (ОБУВ) вредных веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М.: Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 1999. 304 с.
6. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н., Масевич Ц.Г. и др. Исследование пищеварительного аппарата у человека. Обзор современных методов. Л.: Наука, 1969. 216 с.
7. Филиппов А.А., Голованова И.Л. Раздельное и совместное влияние меди и цинка in vitro на активность карбогидраз кишечника пресноводных костистых рыб // Биология внутр. вод. 2010. № 1. С. 104–109.
8. Blanton M.L., Specker J.L. The hypothalamic–pituitary–thyroid (HPT) axis in fish and its role in fish development and reproduction // Crit. Rev. Toxicol. 2007. V. 37. P. 97–115.
9. Bolotovskiy A.A., Levin B.A. Thyroid hormone divergence between two closely related but ecologically diverse cyprinid fish species (Cyprinidae) // Biochem. Syst. Ecol. 2015. V. 59. P. 305–310.
10. Kuzmina V.V., Golovanova I.L. Contribution of prey proteinases and carbohydrases in fish digestion // Aquaculture. 2004. V. 234. № 1–4. P. 347–360.
11. Leatherland J.F. Environmental physiology of the teleostean thyroid gland: a review // Environ. Biol. Fish. 1982. V. 7. P. 83–110.
12. Scheiner S.M. Genetics and evolution of phenotypic plasticity // Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. 1993. V. 24. P. 35–68.
13. Sekimizu K., Tagawa M., Takeda H. Defective fin regeneration in medaka fish (Oryzias latipes) with hypothyroidism // Zool. Sci. 2007. V. 24. № 7. P. 693–699.
14. West-Eberhard M.J. Phenotypic plasticity and the origins of diversity // Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. 1989. V. 20. P. 249–278.
А. Г. Лапиров, Л. Е. Сигарева, Е. Г. Крылова, Н. А. Тимофеева
Влияние хлорида никеля на прорастание семян и морфофизиологические показатели проростков Alisma plantago-aquatica L. и Sium latifolium L.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: lapir@ibiw. yaroslavl.ru
Изучено влияние хлорида никеля в концентрациях от 1 до 1000 мг/л на прорастание семян, развитие органов и пигментную систему у проростков гелофита частухи подорожниковой (Alisma plantago-aquatica L.) и гигрогелофита поручейника широколистного (Sium latifolium L.). Показано, что хлорид никеля фактически не влияет на прорастание семян частухи и значительно подавляет этот процесс у поручейника. Отмечено, что влияние токсиканта на развитие проростков проявлялось в угнетении их роста и синтеза фотосинтетических пигментов. Наименее изменчива длина семядолей и гипокотиля, наиболее – корней и листьев. Выявлено, что морфометрические параметры менее чувствительны к воздействию токсиканта, чем физиологические. В целом, частуха более устойчива к действию хлорида никеля, чем поручейник.
Ключевые слова: хлорид никеля, частуха подорожниковая, поручейник широколистный, прорастание семян, развитие проростков, хлорофиллы, каротиноиды.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Абрамова Э.А., Иванищев В.В. Содержание фотосинтетических пигментов и аскорбиновой кислоты в проростках вики в присутствии хлорида никеля // Науч. ведомости БелГУ. Сер. Естеств. науки. 2012. № 9 (128). Вып. 19. С. 152–154.
2. Дубына Д.В., Сытник С.М., Тасенкевич Л.А. и др. Макрофиты-индикаторы изменения природной среды. Киев: Наук. думка, 1993. 434 с.
3. Иванов В.Б., Быстрова Е.И., Серегин И.В. Сравнение влияния тяжелых металлов на рост корня в связи с проблемой специфичности и избирательности их действия // Физиол. растений. 2003. Т. 50. № 3. С. 445–454.
4. Крылова Е.Г. Влияние сульфата никеля на прорастание семян и развитие проростков прибрежно-водных растений // Журн. Сиб. фед. ун-та. Сер. Биол. 2010. Т. 3. № 1. С. 99–106.
5. Крылова Е.Г. Токсичность солей никеля и меди для семян и проростков рдеста гребенчатого (Potamogeton pectinatus L.), частухи подорожниковой (Alisma plantago-aquatica L.), поручейника широколистного (Sium latifolium L.) и ситника скученного (Juncus conglomerates L.) // Токсикол. вестн. 2010. № 1(100). С. 41–44.
6. Крылова Е.Г. Влияние солей никеля, меди и цинка на прорастание семян и начальные этапы онтогенеза поручейника широколистного (Sium latifolium L.) и камыша лесного (Scirpus sylvaticus L.) // Биология внутр. вод. 2011. № 4. С. 72–78.
7. Крылова Е.Г., Бердник К.А., Лапиров А.Г. Влияние хлоридов никеля и меди на начальные этапы онтогенеза Bidens cernua (Asteraceae) // Растительн. ресурсы. 2014. Т. 50. Вып. 2. С. 227–235.
8. Лобкова Г.В. Экологическая оценка воздействия ацетатов Ni2+, Co2+, Сu2+ и Pb2+ на живые системы: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Ульяновск, 2012. 21 с.
9. Обручева Н.В. Переход от гормональной к негормональной регуляции на примере выхода семян из покоя запуска прорастания // Физиол. растений. 2012. Т. 59. № 4. С. 591–600.
10. Ронжина Т.А., Некрасова Г.Ф., Пьянков В.И. Сравнительная характеристика пигментного комплекса надводных, плавающих и погруженных листьев гидрофитов // Физиол. растений. 2004. Т. 51. № 1. С. 27–34.
11. Серегин И.В., Кожевникова А.Д. Физиологическая роль никеля и его токсическое действие на высшие растения // Физиол. растений. 2006. Т. 53. № 2. С. 285–308.
12. Титов А.Ф., Казнина Н.М., Таланова В.В. Тяжелые металлы и растения. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2014. 194 с.
13. Титов А.Ф., Таланова В.В., Казнина Н.М. Физиологические основы устойчивости растений к тяжелым металлам. Уч. пособие. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2011. 77 с.
14. Breygina M., Matveyeva N., Polevova S. et al. Ni2+ effects on Nicotiana tabacum L. pollen germination and pollen tube growth // Biometals. 2012. V. 25. P. 1221–1233.
15. Chen C., Huang D., Liu J. Functions and toxicity of nickel in plants: recent advances and future prospects. Review // Clean. 2009. V. 37. № 4–5. P. 304–313.
16. Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophyll a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanz. 1975. V. 167. Р. 191–194.
17. Lewis M.A. Use of freshwater plants for phytotoxicity testing: A review // Environ. Pollut. 1995. V. 87. Is. 3. P. 319–336.
18. Parsons T.R., Strickland J.D.H. Discussion of spectrophotometric determination of marine-plant pigments, with revised equations for ascertaining chlorophylls and carotenoids // J. Mar. Res. 1963. V. 23. № 3. P. 155–163.
19. Shipley В., Parent M. Germination responses of 64 wetland species in relation to seed size, minimum time to reproduction and seedling relative growth rate// Function. Ecol. 1991. V. 5. № 1. P. 111–118.
20. Yusuf M., Fariduddin Q., Hayat S., Ahmad A. Nickel: an overview of uptake, essentiality and toxicity in plants // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 86. Is. 1. P. 1–17.
З. И. Слуковский*, Т. Н. Полякова**
Анализ накопления тяжелых металлов в организме олигохет из речных донных отложений урбанизированной среды.
* Институт геологии Карельского научного центра РАН, 185910 Петрозаводск, ул. Пушкинская, д. 11
** Институт водных проблем Севера Карельского научного центра РАН, 185030 Петрозаводск, проспект А. Невского, д. 50
e-mail: slukovsky87@gmail.com
Изучено содержание тяжелых металлов в организмах олигохет двух малых рек, протекающих по центральной части крупного промышленного города. Установлено, что химический состав олигохет выше уровня концентраций подвижных (доступных) форм металлов в донных отложениях. Выявлено сходство закономерности накопления загрязнителей в телах олигохет и корреляции тяжелых металлов с органическим веществом речных осадков в целом по обоим городским водотокам.
Ключевые слова: макрозообентос, олигохеты, малые реки, урбанизированные территории, тяжелые металлы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аринушкина Е.В. Руководство по химическому анализу почв. М.: Изд-во МГУ, 1970. 373 с.
2. Биоиндикация экологического состояния равнинных рек. М.: Наука, 2007. 403 с.
3. Галатова Е.А., Шестаков А.Ю., Капанадзе Г.Д. Особенности накопления и распределения экотоксикантов в донных отложениях и водорослях // Биомедицина. 2010. № 5. C. 58–62.
4. Голованова И.Л., Филиппов А.А., Чуйко Г.М. Влияние тяжелых металлов (Cu, Zn) на пищеварительные гликозидазы рыб-бентофагов из районов Рыбинского водохранилища с разной антропогенной нагрузкой // Биология внутр. вод. 2014. № 3. С. 92–100.
5. Даувальтер В.А. Геоэкология донных отложений озер. Мурманск: Изд-во МГТУ, 2012. 242 с.
6. Даувальтер В.А., Кашулин Н.А. Влияние деятельности горно-металлургических предприятий на химический состав донных отложений озера Имандра, Мурманская область // Биосфера. 2015. Т. 7. № 3. С. 295–314.
7. Даувальтер В.А., Кашулин Н.А., Денисов Д.Б. Тенденции изменения содержания тяжелых металлов в донных отложениях озер севера Фенноскандии в последние столетия // Тр. КарНЦ РАН. 2015. № 9. С. 62–75.
8. Клишко О.К., Авдеев Д.В., Зазулина В.Е., Борзенко С.В. Роль хирономид (Diptera, Chironomidae) в биологической миграции химических элементов в экосистеме антропогенных водоемов // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2005. № 3. C. 360–367.
9. Комулайнен С.Ф., Морозов А.К. Изменение структуры фитоперифитона в малых реках урбанизированных территорий // Вод. ресурсы. 2007. № 3. С. 356–363.
10. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
11. Пежева М.Х., Хабжоков А.Б., Шибзухова З.С., Казанчев С.Ч. Олигохеты (Oligochaeta) реки Малки // Фундаментальные исследования. 2015. № 8. С. 37–41.
12. Попченко В.И., Попченко Т.В. Устойчивость малощетинковых червей к химическим загрязнениям // Изв. Самарск. науч. центра РАН. Сер. Биол. и экол. 1999. № 2. С. 201–203.
13. Рыжков Л.П., Горохов А.В., Марченко Л.П. Трансформация химического состава вод реки Лососинки под воздействием природных и антропогенных факторов // Уч. зап. Петрозаводск. гос. ун-та. 2012. Т. 1. № 8. С. 20–24.
14. Слуковский З.И. Содержание фосфора в донных отложениях рек города Петрозаводска // География: традиции и инновации в науке и образовании. СПб.: Изд-во РГПУ им. А.И. Герцена, 2014. С. 206–207.
15. Слуковский З.И. Геоэкологическая оценка состояния малых рек крупного промышленного города по данным о содержании тяжелых металлов в донных отложениях // Метеорол. и гидрол. 2015. № 6. С. 81–88.
16. Слуковский З.И., Светов С.А. Геохимические индикаторы техногенного загрязнения донных отложений малых рек в урбанизированной среде // География и природные ресурсы. 2016. № 1. С. 38–45.
17. Федорец Н.Г., Бахмет О.Н., Медведева М.В. и др. Тяжелые металлы в почвах Карелии. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2015. 222 с.
18. Чемагин А.А. Биотическая аккумуляция тяжелых металлов макрозообентосом нижнего Иртыша // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 5. С. 616.
19. Arslan N., Koç B., Çiçek A. Metal contents in water, sediment, and oligochaeta-chironomidae of lake Uluabat, a Ramsar Site of Turkey // Sci. World J. 2010. № 10. P. 1269–1281.
20. Förstner U. Sediment-associated contaminants – an overview of scientific bases for developing remedial options // Hydrobiologia. 1987. V. 149. P. 221–246.
21. Harguinteguy C.A., Cirelli A.F., Pignata M.L. Heavy metal accumulation in leaves of aquatic plant Stuckenia filiformis and its relationship with sediment and water in the Suquía river (Argentina) // Microchemical J. 2014. V. 114. P. 111–118.
22. Hosono T., Alvarez K., Kuwae M. Lead isotope ratios in six lake sediment cores from Japan Archipelago: Historical record of trans-boundary pollution sources // Sci. Total Environ. 2016. V. 559. P. 24–37.
23. Rainbow P.S., Hildrew A.G., Smith B.D. et al. Caddisflies as biomonitors identifying thresholds of toxic metal bioavailability that affect the stream benthos // Environ. Pollut. 2012. V. 166. P. 196–207.
24. Urban ecology: An international perspective on the interaction between humans and nature. N.Y.: Springer, 2008. 808 p.
25. Woelfl S., Mages M., Óvári M., Geller W. Determination of heavy metals in macrozoobenthos from the rivers Tisza and Szamos by total reflection X-ray fluorescence spectrometry // Spectrochimica Acta. Part B. 2006. V. 61. P. 1153–1157.
В. В. Безматерных, Г. Х. Щербина
Об оптимальном числе проб для оценки количественных показателей макрозообентоса на участке водоема.
Институт биологии внутренних вод им И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gregory@ibiw.yaroslavl.ru
Так как рекомендации по количеству проб при исследованиях макрозообентоса нечётки и противоречивы, предпринята попытка определить оптимальное число проб для несмещенной оценки текущего состояния макрозообентоса, позволяющее одновременно с этим определить значимость полученных показателей.
Ключевые слова: макрозообентос, численность, биомасса, количество проб.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Баканов А.И. Номограмма для оценки необходимого количества проб бентоса // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1978. № 39. С. 86–89.
2. Баканов А.И. Номограмма для оценки качества проб гидробионтов в случае их статистического распределения по закону Пуассона // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1979. № 41. С. 69–71.
3. Баканов А.И. О планировании бентосных съемок // ИБВВ АН СССР. 1979. 16 c. Деп. в ВИНИТИ. 07.05.1979, № 1596–79 деп.
4. Жадин В.И. Методика изучения донной фауны водоемов и экологии донных беспозвоночных // Жизнь пресных вод СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1956. Т. 4. Ч. 1. С. 279–382.
5. Жадин В.И. Методы гидробиологического исследования. М.: Высш. шк., 1960. 191 с.
6. Инструкция для сбора и первичной обработки бентоса. М.; Л.: Пищепромиздат, 1939. 27 с.
7. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1969. 286 с.
8. Рекомендации по методике количественного учета пресноводных беспозвоночных. Л.: РПМ БАН СССР, 1968. 22 с.
9. Решения совещания по методике гидробиологических исследований в целях рыбохозяйственного освоения водоемов. Л.: Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1967. 11 с.
10. Соколова Н.Ю. Методика сбора материалов для определения продуктивности Chironomus plumosus L. // Исследование продуктивности вида в пределах ареала: Матер. VII заседания межсекционной рабочей группы. Вильнюс, 1974. С. 47–62.
11. Щербина Г.Х. Влияние моллюска Dreissena polymorpha (Pall.) на структуру макрозообентоса экспериментальных мезокосмов // Биология внутр. вод. 2001. № 1. С. 63–70.
12. Cassie R.M. Sampling and statistics // A manual of methods for the assessment of secondary productivity in fresh waters. Oxford; Edinburg: Blackwell Sci. Publ., 1971. Р. 174–209.
13. Elliott J.M. Some methods for the statistical analysis of samples of the benthic invertebrates // Freshwater biol. ass. sci. publ. 1971. № 25. 144 p.
14. Kajak Z. Analysis of quantitative benthic methods // Ecol. Polska. 1963. Ser. A. V. 11. № 1. P. 1–55.
15. Methods for the collection and analysis of aquatic biological and microbiological samples. Washington: Government printing office, 1973. 165 p.
16. Mothes G. Beitrag zur Methodik der quantitativen Bearbeitung von makroskopischer Bodenfauna in stehenden Gewassern // Limnologica. 1966. Bd 4. H. 2. S. 343–350.
17. Switzer P. Reconstructing patterns from sample data // Ann. math. statist. 1967. V. 38. P. 138–154.
18. Takizawa T. Nomograms for obtaining a necessary, minimum sample size. I: When distribution of data is normal // Nat. Inst. anim. health quart. 1976. V. 16. № 1. P. 25–30.
Е. Г. Пряничникова*, С. Н. Перова*, В. П. Семерной**
Нахождение Quistadrilus multisetosus (Smith, 1900) (Oligochaeta: Tubificidae) в Рыбинском водохранилище.
* Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
** Ярославский государственный университет им. П.Г. Демидова, 150000 г. Ярославль, ул. Советская, д. 14
e-mail: perova@ibiw.yaroslavl.ru
В Рыбинском водохранилище впервые для региона обнаружена олигохета Quistadrilus multisetosus (Smith, 1900). Приведены показатели обилия и пространственное распределение популяции этого вида осенью 2013 г.
Ключевые слова: Quistadrilus multisetosus, новые местонахождения, вид-вселенец, пространственное распределение.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Архипова Н.Р. Фауна малощетинковых червей (Oligochaeta, Annelida) водохранилищ Верхней и Средней Волги // Биологические ресурсы пресных вод: беспозвоночные. Рыбинск: Дом печати, 2005. С. 82–97.
2. Архипова Н.Р. Об экологии малощетинковых червей (Oligochaeta, Annelida), обитателей водных объектов Верхней и Средней Волги // Экология водных беспозвоночных. Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007. С. 37–75.
3. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
4. Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. M.; СПб.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. Т. 2. 457 с.
5. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР (планктон и бентос). Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 512 с.
6. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 1: Низшие беспозвоночные. СПб.: Наука, 1994. 400 с.
7. Перова С.Н. Таксономический состав и обилие макрозообентоса Рыбинского водохранилища в начале ХХI века // Биология внутр. вод. 2012. № 2. С. 45–54.
8. Ривьер И.К., Щербина Г.Х. Водные беспозвоночные – вселенцы в бассейне Верхней Волги // Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос.-техн. ун-та, 2001. С. 83–84.
9. Рыбинское водохранилище и его жизнь. Л.: Наука, 1972. 364 с.
10. Чекановская О.В. Водные малощетинковые черви фауны СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1962. 411 с.
11. Щербина Г.Х. Автоакклиматизация каспийской полихеты Hypania invalida в бассейне Верхней Волги // Зоол. журн. 2001. Т. 80. № 3. С. 278–284.
12. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос.-техн. ун-та, 2001. 427 с.
13. Heyer K. Compiling and testing of biological risk assessments for the invasion of alien species with ballast water. Copenhagen: Denmark, 2012. 46 p.
14. Holmquist C. Revision of the genus Peloscolex (Oligochaeta, Tubificidae): 1. Morphological and anatomical scrutiny; with discussion on the generic level // Zool. Scripta. 1978. V. 7. № 3. P. 187–208.
15. Holmquist C. Revision of the genus Peloscolex (Oligochaeta, Tubificidae): 2. Scrutiny of the species // Zool. Scripta. 1979. Т. 8. № 1–4. P. 37–60.
16. Kasprzak K. A new species of Tubificidae (Oligochaeta) found in Poland // Bull. Polish Acad. Sci. 1971. V. 19. № 2. P. 261–267.
17. Klink A. Macroinvertebrates of the Seine Basin // Hydrobiol. Adviesburo Klink Rap. Med. 2010. № 108. P. 71.
18. Mosavi N.R., Samanpazhoh M., Emadi H., Fatemi S. Macrobenthic population structure in Neor Lake, Ardebil province // Iran. Sci. Fish. J. 2011. V. 20. № 3. P. 129–142.
19. Orlova M.I., Therriault T.W., Antonov P.I., Shcherbina G.Kh. Invasion ecology of quagga mussels (Dreissena rostriformis bugensis): a review of evolutionary and phylogenetic impacts // Aquat. Ecol. 2005. V. 39. № 4. P. 401–418.
20. Perova S.N. Structural characteristics of the Caspian invader leech Archaeobdella esmonti Grimm in the Rybinsk Reservoir // Rus. J. Biol. Invasions. 2011. V. 2. № 2–3. P. 223–226.
21. Seys J., Vincx M., Meire P. Spatial distribution of oligochaetes (Clitellata) in the tidal freshwater and brackish parts of the Schelde estuary (Belgium) // Hydrobiologia. 1999. V. 406. P. 119–132.
22. Soors J., van Haaren T., Timm T., Speybroeck J. Bratislavia dadayi (Michaelsen, 1905) (Annelida: Clitellata: Naididae): a new non-indigenous species for Europe, and other non-native annelids in the Schelde estuary // Aquat. Invasions. 2013. V. 8. № 1. P. 37–44.
23. Spencer D.R., Hudson P.L. The Oligochaeta (Annelida, Clitellata) of the St. Lawrence Great Lakes region: an update // J. Great Lakes Res. 2003. V. 29. № 1. P. 89–104.
24. Timm T. A guide to the freshwater Oligochaeta and Polychaeta of Northern and Central Europe // Lauterbornia. 2009. V. 66. 235 p.
25. Van Haaren T., Soors J. Aquatic Oligochaeta of the Netherlands and Belgium. Zeist: KNNV Publ., 2011. 302 p.
26. Yildiz S., Balik S. The Oligochaeta (Annelida) fauna of the inland waters in the Lake District (Turkey) // Ege Univ. J. Fish. & Aquat. Sci. 2005. V. 22. P. 165–172.
