Журнал "Биология внутренних вод"
№ 1 за 2017 год
Т. В. Наумова*, В. Г. Гагарин**, О. А. Тимошкин*
Фауна свободноживущих нематод (Nematoda) водоемов и водотоков севера Иркутской области.
*Лимнологический институт СО РАН, 664033 г. Иркутск, ул. Улан-Баторская, 3
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: tvnaum@lin.irk.ru
Исследован видовой состав свободноживущих нематод пресноводных водоемов и водотоков бассейна р. Лена на севере Иркутской обл.: реки Чуя, Юхтинка, Мама, Витим, озера Тетеринское, Красноярское, безымянное около пос. Мама. Обнаружено 28 видов из 16 семейств и 9 отрядов, 6 видов определены только до рода. Из 22 достоверно определенных видов, одиннадцать – космополиты, два имеют голарктическое распространение, пять обнаружены в Евразии, один вид обитает на территории Восточной Сибири, три вида имеют точечное распространение. Состав фауны исследованных водоемов и водотоков обычен и в основном представлен широко распространенными видами. К наиболее интересным находкам отнесена Tripyla dybowskii Tsalolikhin, 1976, ранее считавшаяся субэндемиком оз. Байкал. Общие с фауной оз. Байкал – три вида (два из них обитают в зоне заплеска). Приведено иллюстрированное описание самки редкого вида Aporcelaimellus samarcandicus (Tulaganov, 1949).
Ключевые слова: свободноживущие нематоды, видовой состав, зоогеографическая характеристика, Иркутская область, бассейн реки Лена, Aporcelaimellus samarcandicus (Tulaganov, 1949).
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алексеев В.М. К фауне пресноводных нематод Дальнего Востока. Владивосток. 1986. 11 с. Деп. в ВИНИТИ. 04.12.1986, № 8514-В86.
2. Алексеев В.М., Наумова А.Д. Новые виды нематод из озера Хасан // Зоол. журн. 1977. Т. 56. № 2. С. 75–80.
3. Бондаренко Н.А., Томберг И.В., Логачева Н.Ф., Тимошкин О.А. Фитопланктон и гидрохимия рек Витим, Мама, Чуя (Забайкалье, бассейн реки Лены) // Изв. Иркутск. гос. ун-та. Сер. Биология. Экология. 2010. Т. 3. № 4. С. 70–81.
4. Гагарин В.Г. К вопросу о путях формирования фауны нематод пресных вод // Эволюция, систематика, морфология и экология свободноживущих нематод. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1981. С. 25–26.
5. Гагарин В.Г. Фауна свободноживущих нематод водоемов полуострова Таймыр и замечания о видовых комплексах нематод в пресных водоемах // Фауна, биология и систематика свободноживущих низших червей. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 1991. С. 44–50.
6. Гагарин В.Г. Свободноживущие нематоды пресных вод СССР. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 152 с.
7. Гагарин В.Г. Свободноживущие нематоды пресных вод России и сопредельных стран (отряды Monhysterida, Araeolaimida, Chromadorida, Enoplida, Mononchida). СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 352 с.
8. Гагарин В.Г. Свободноживущие нематоды некоторых водоемов полуострова Таймыр // Зоол. журн. 1996. Т. 75. Вып. 3. С. 321–334.
9. Гагарин В.Г. Некоторые данные о свободноживущих нематодах водоемов архипелага Новая Земля и о. Вайгач // Биология внутр. вод. 1999. № 1–3. С. 32–41.
10. Гагарин В.Г. Обзор фауны свободноживущих нематод водоемов Арктики и Субарктики России // Биология внутр. вод. 2001. № 2. С. 32–38.
11. Гагарин В.Г. Некоторые тобрилиды (Nematoda, Tobrilidae) оз. Курильское (п-в Камчатка, Россия) // Зоол. журн. 2004. Т. 83. № 5. С. 526–535.
12. Гагарин В.Г. Нематоды отряда Diplogasterida фауны России. М.: Наука, 2008. 184 с.
13. Гагарин В.Г. Свободноживущие нематоды (Nemathelminthes, Nematoda) реки Лены // Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2009. Т. II: Водоемы и водотоки юга Восточной Сибири и Северной Монголии. Кн. 1. С. 434–442.
14. Гагарин В.Г., Ербаева Э.А. К фауне нематод среднего течения р. Ангары // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1984. № 64. С. 21–24.
15. Гагарин В.Г., Матафонов П.В. Свободноживущие нематоды водоемов Ивано-Арахлейской озерной системы Забайкалья // Биология внутр. вод. 2004. № 4. С. 29–38.
16. Гагарин В.Г., Наумова Т.В. Фауна свободноживущих нематод (Nematoda) интерстициали заплесковой зоны озера Байкал // Биология внутр. вод. 2012. № 3. С. 3–9.
17. Гагарин В.Г., Наумова Т.В. Редкие и малоизученные виды нематод Kurikania sibirica Tsaloliсhin 1976 и Tripyla dybowskii Tsalolichin 1976 (Nematoda: Triplonchida) из абиссали озера Байкал // Зоол. журн. 2013. Т. 92. № 2. С. 177–183.
18. Дехтяр М.Н. Новые для фауны Днепра нематоды. Сообщ. 2 // Вестн. зоол. Киев, 1989. № 3. С. 3–10.
19. Захидов М.Т., Цалолихин С.Я., Гагарин В.Г. Нематоды пресных и солоноватых водоемов СССР. М., 1972. 57 с. Деп. в ВИНИТИ. 16.12.71, № 1626.
20. Медведев Ф.С. Свободноживущие нематоды водоемов Средней Оби: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Иркутск, 1981. 21 с.
21. Наумова Т.В., Гагарин В.Г., Тимошкин О.А. Первые сведения по фауне нематод (Nematoda) водоемов севера Иркутской области // Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2010–2011. Т. 2: Водоемы и водотоки юга Восточной Сибири и Северной Монголии. Кн. 2. Приложение 1. С. 1009–1024.
22. Наумова Т.В., Ситникова Т.Я., Гагарин В.Г. Первые сведения о видовом составе и распределении свободноживущих нематод (Nematoda) в районе естественных нефте-газовых проявлений в озере Байкал // Биология внутр. вод. 2012. № 2. С. 3–11.
23. Тулаганов А.Т. Растительноядные и почвенные нематоды Узбекистана. Ташкент: Изд-во Ин-та ботаники и зоологии АН УзССР, 1949. 227 с.
24. Цалолихин С.Я. Свободноживущие нематоды Байкала. Новосибирск: Наука, 1980. 118 с.
25. Шошин А.В., Цалолихин С.Я. Свободноживущие нематоды (Nemathelminthes: Nematoda) // Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2001. Т. 1: Озеро Байкал. Кн. 1. С. 305–320.
26. Экология внутренних вод Вьетнама. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 435 с.
27. Энциклопедия Забайкалья. Новосибирск: Наука, 2000. Т. 1: Общий очерк. 302 с.
28. Andrássy I. Free-living nematodes from the Fertő-Hanság national park, Hungary // The fauna of the Fertő-Hanság national park. Budapest: Hung. Natur. Hist. Mus., 2002. P. 21–97.
29. Andrássy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). Budapest: Hung. Natur. Hist. Mus. and Syst. Zool. Res. Group Hung. Acad. Sci., 2005. V. 1. 519 p.
30. Andrássy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). Budapest: Hung. Natur. Hist. Mus. and Syst. Zool. Res. Group Hung. Acad. Sci., 2007. V. 2. 497 p.
31. Andrássy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). Budapest: Hung. Natur. Hist. Mus. and Syst. Zool. Res. Group Hung. Acad. Sci., 2009. V. 3. 608 p.
32. Boxshall G.A., Mees J., Costello M.J. et al. World Register of Marine Species. Available from http://www.marinespecies.org at VLIZ. Accessed 2016-02-25.
33. Gagarin V.G., Gusakov V.A. Description of male and redescription of female of Paramononchus arcticus Mulvey, 1978 (Nematoda, Mononchida) // Int. J. Nematol. 2008. V. 18. № 1. P. 1–3.
34. Freshwater nematodes: ecology and taxonomy. Wallingford; Oxfordshire: CABI Publ., 2006. 752 p.
35. Jiménez-Guirado D., Murillo-Navarro R. Record and description of Dorylaimus popus Gagarin, 1981 (Dorylaimida: Dorylaimidae) from Spain // J. Nematode Morphol. and Syst. 2001. V. 4. P. 39–46.
А. М. Глущенко*, М. С. Куликовский**
Amphipleura vavilovii – новый вид диатомовой водоросли (Amphipleuraceae) из Лаоса.
* Калужский государственный университет им. К.Э. Циолковского, 248023 г. Калуга, ул. Степана Разина, д. 26
** Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: closterium7@gmail.com
В материалах из безымянной реки, протекающей по территории д. Намлик (Лаос) обнаружен новый для науки вид – Amphipleura vavilovii Glushchenko & Kulikovskiy sp. nov. Дано морфологическое описание вида и сравнение с близкими таксонами. Вид иллюстрирован оригинальными световыми и электронными микрофотографиями.
Ключевые слова: Bacillariophyceae, Amphipleura, новый вид, морфология, Юго-Восточная Азия, Лаос.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Глущенко А.М., Куликовский М.С. Виды рода Luticola (Bacillariophyceae) в водоемах Лаоса и Вьетнама // Ботан. журн. 2015. Т. 100. № 8. С. 799–804.
2. Álvarez Cobelas M., Estévez García A. Catálogo de las algas continentales españolas. I. Diatomophyceae Rabenhorst 1864 // Lazaroa. 1982. V. 4. P. 269–285.
3. Amossé A. Note sur des Diatomées récoltées en Indochine // Revue Algologique, Nouvelle Série. 1969. V. 9. P. 326–344.
4. Cleve P.T. Synopsis of the naviculoid diatoms. Part I. // Kongliga Svenska Vetenskapsakademiens Handlingar. 1894. Ser. 26. № 2. P. 1–194.
5. Cox E.J. A reappraisal of the diatom genus Amphipleura Kütz. using light and electron microscopy // British Phycol. J. 1975. V. 10. P. 1–12.
6. Fourtanier E., Kociolek J.P. Catalogue of diatom names. Retrieved April, 2014 from http://research.calacademy.org/research/diatoms/names/index.asp.
7. Kitton F. Description of some new diatomaceae found in the stomachs of japanese oysters // J. Quekett Microscopical Club. 1884. Ser. 2. V. 2. P. 16–23.
8. Kociolek J.P., Glushchenko A.M., Kulikovskiy M.S. Typification, valve ultrastructure, and systematicposition of Gomphonema gomphopleuroides Amossé ex Kociolek, Glushchenko and Kulikovskiy, an endemic diatom from Southeast Asia // Diatom Res. 2015. V. 3. P. 247–255.
9. Kobayasi H., Ando K. Diatoms from Hozoji-numa, Jizoin-numa and Nakashindennuma ponds in Hanyu City, Saitama Prefecture // Bull. Tokyo Gakugei Univ., Mat. and Nat. Sci. 1975. Ser. 4. V. 27. P. 178–204.
10. Kociolek J.P., Spalding S.A., Lowe R.D. Bacillariophyceae: The Raphid Diatoms // Freshwater Algae of North America: Ecology and Classification. Cambridge: Acad. Press, 2015. P. 709–772.
11. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. 1. Teil: Naviculaceae // Süßwasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart; Jena: Gustav Fischer Verlag, 1986. Bd 2/1. S. 1–876.
12. Kulikovskiy M., Glushchenko A., Kociolek J.P. The diatom genus Oricymba in Vietnam and Laos with description of one new species, and a consideration of its systematic placement // Phytotaxa. 2015. V. 2. № 227. P. 120–134.
13. Kützing F.T. Die Kieselschaligen Bacillarien oder Diatomeen. Nordhausen: W. Köhne, 1844. P. 1–152.
14. Liu R. Checklist of biota of Chinese seas. Beijing: Sci. Press Acad. Sinica. 2008. P. 1–1267.
15. Metzeltin D., Lange-Bertalot H. Tropical Diatoms of South America I // Iconographia Diatomologica. 1998. V. 5. P. 1–695.
16. Metzeltin D., Lange-Bertalot H., Garcia-Rodriguez F. Diatoms of Uruguay // Iconographia Diatomologica. 2005. V. 15. P. 1–737.
17. Round F.E., Crawford R.M., Mann D.G. The Diatoms. Biology and morphology of the genera. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1990. P. 1–747.
18. Shirota A. The Plankton of South Vietnam – Freshwater and Marine Plankton. Tokyo: Over. Tech. Coop. Agen, 1966. 489 p.
19. Sar E.A., Sala S.E., Sunesen I. et al. Catalogue of the genera, species, and infraspecific taxa erected by J. Frenguelli // Diatom. Monogr. 2009. V. 10. 419 p.
20. Shao K.T. TaiBNET (Catalogue of Life in Taiwan). Retrieved 2003–2014 from http://taibnet.sinica.edu.tw.
21. Skvortzow B.W. Alpine diatoms from Fukien Province, South China // Philipp. J. Sci. 1930. V. 41. P. 41–47.
22. Skvortzow B.W. Diatoms from Kizaki Lake, Honshu Island, Nippon // Philipp. J. Sci. 1936. V. 67. P. 9–73.
23. Vyverman W. Diatoms from Papua New Guinea // Bibliotheca Diatomologica. 1991. V. 22. P. 1–244.
24. Whitton B.A., John D.M., Kelly M.G., Haworth E.Y. A coded list of freshwater algae of the British Isles. Retrieved 2003–2007 from http://www.nhm.ac.uk/research-curation/scientific-resources/biodiversity/uk-biodiversity/uk-species/checklists/NHMSYS0000591449/index.html.
А. П. Мыльников, З. М. Мыльникова
Строение клетки амебоидного жгутиконосца Thaumatomonas coloniensis Wylezich et al., 2007 (Thaumatomonadida (Shirkina) Karpov, 1990).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: ap.mylnikov@rambler.ru
Рассмотрено ультратонкое строение амебоидного жгутиконосца Thaumatomonas coloniensis Wylezich et al. Клетка окружена соматическими чешуйками, формирующимися на поверхности митохондрий. Гетеродинамичные жгутики выходят из небольшого жгутикового кармана. Оба жгутика в разной степени покрыты шишковидными чешуйками и тонкими извитыми мастигонемами. Кинетосомы лежат параллельно друг другу. Переходная зона жгутиков содержит тонкостенный цилиндр. Поперечная пластинка жгутиков приподнята над клеточной поверхностью. Корешковая система жгутиков состоит из трех микротрубочковых лент и фибриллярного ризопласта. Пузырьковидное ядро и аппарат Гольджи имеют обычное строение. Митохондрии содержат трубчатые кристы. В цитоплазме обнаружены стрекательные органеллы (кинетоцисты), содержащие аморфный материал и капсулу. Последняя состоит из муфты и цилиндра. Осмиофильные тела различной формы содержат кристалловидные включения. Псевдоподии, захватывающие бактерий, выходят из вентральной бороздки, которая армирована двумя продольными пучками тесно сближенных микротрубочек. Микротельца и симбиотические бактерии не обнаружены. Обсуждено сходство Thaumatomonas coloniensis с другими тауматомонадами.
Ключевые слова: Thaumatomonas coloniensis, ультраструктура, чешуйки, кинетоцисты, Thaumatomonadida.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Карпов С.А. Строение жгутикового аппарата у бесцветного жгутиконосца Thaumatomonas lauterborni и оценка концепции эволюционного консерватизма клеточных структур // Цитология. 1987. Т. 29. № 12. С. 1349–1354.
2. Карпов С. А. Ультратонкое строение бесцветного жгутиконосца Thaumatomonas seravini // Цитология. 1993. Т. 35. № 9. С. 8–11.
3. Карпов С.А. Thaumatomonadida (Shirkina) Karpov 1990 // Протисты. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2011. Т. 3. C. 402–428.
4. Карпов С.А., Жуков Б.Ф. Особенности ультраструктуры бесцветного жгутиконосца Thaumatomonas lauterborni // Цитология. 1987. Т. 29. № 10. С. 1168–1171.
5. Мыльников А.П., Карпов С.А. Новый представитель бесцветных жгутиконосцев Thaumatomonas seravini sp. nov. (Thaumatomonadida, Protista) // Зоол. журн. 1993. Т. 72. Вып. 3. С. 5–9.
6. Мыльников А.П., Мыльников А.А. Новый амебоидный жгутиконосец Thaumatomonas zhukovi (Thaumatomonadida, Protozoa) // Зоол. журн. 2003. Т. 82. № 12. С. 1411–1417.
7. Мыльников А.П., Мыльникова З.М. Ультратонкое строение амебоидного жгутиконосца Thaumatomonas zhukovi Mylnikov et Mylnikov (Thaumatomonadida (Shirkina) Karpov, 1990) // Биология внутр. вод. 2012. № 1. С. 33–40.
8. Ширкина Н.И. Морфология и жизненный цикл Thaumatomonas lauterborni de Saedeleer (Mastigophora Diesing) // Фауна и биология пресноводных организмов. Л.: Наука, 1987. С. 87–107.
9. Auer B., Arndt H. Taxonomic composition and biomass of heterotrophic flagellates in relation to lake trophy and season // Freshwater Biol. 2001. V. 46. P. 959–972.
10. Howe A.T., Bass D., Scoble J.M. et al. Novel cultures protists identify deep–branching environmental DNA clades of Cercozoa: new genera Tremula, Micrometopion, Minimassisteria, Nudifila, Peregrinia // Protist. 2011. V. 162. P. 332–372.
11. Karpov S.A. Flagellar apparatus structure of Thaumatomonas (Thaumatomonadida) and thaumatomonad relationships // Protistology. 2010/11. V. 6. P. 236–244.
12. Moestrup Ø. Flagellar structure in algae: a review with new observations particulary on the Chrysophyceae, Phaeophyceae (Fucophyceae), Euglenophyceae and Reckertia // Phycologia. 1982. V. 21. № 4. P. 427–528.
13. Ota S., Eikrem W., Edvardsen B. Ultrastructure and molecular phylogeny of thaumatomonads (Cercozoa) with emphasis on Thaumatomastix salina from Oslofjorden, Norway // Protist. 2012. V. 163. P. 560–573.
14. Scoble J.M., Cavalier-Smith T. Scale evolution, sequence phylogeny, and taxonomy of thaumatomonad Cercozoa: 11 new species and new genera Scutellomonas, Cowlomonas, Thaumatospina and Ovaloplaca // Eur. J. Protistol. 2014. V. 50. P. 270–313.
15. Swale E.M., Belcher J.H. Gyromitus disomatus Skuja – a free-living colourless flagellate // Arch. Protistenk. 1974. Bd 116. H. 3. S. 211–220.
16. Swale E.M.F., Belcher J.H. Gyromitus limax nov.sp. – free-living colourless amoebo-flagellate // Arch. Protistenk. 1975. Bd 117. H. 1/2. S. 20–26.
17. Vickerman K., Brugerolle G., Mignot J.-P. Mastigophora // Microscopic anatomy of invertebrates. Protozoa. N.Y. : Wiley-Liss, 1991. V. 1. P. 13–159.
18. Wylezich C., Mylnikov A.P., Weitere M., Arndt H. Distribution and phylogenetic relationships of freshwater thaumatomonads with a description of the new species Thaumatomonas coloniensis sp. n. // J. Eukaryot. Microbiol. 2007. V. 54. P. 347–357.
19. Zolotarev V.A., Myl’nikova Z.M., Myl’nikov A.P. The ultrathin structure of amoeboid flagellate Thaumatomastix sp. (Thaumatomonadida (Shirkina) Karpov, 1990) // Inland Water Biology. 2011. V. 4. P. 287–292.
Д. Б. Косолапов, А. И. Копылов, Н. Г. Косолапова, З. М. Мыльникова
Структура и функционирование “микробной петли” северного водохранилища.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: dkos@ibiw.yaroslavl.ru
В Шекснинском водохранилище (Верхняя Волга) в летний период определены численность и биомасса основных компонентов планктонной микробной трофической сети – “микробной петли” (гетеротрофных бактерий, фототрофного пико-и нанопланктона, гетеротрофных нанофлагеллят, инфузорий и вирусов), оценены продукция фито- и бактериопланктона, выедание бактерий флагеллятами, их лизис вирусами и разнообразие протистов. Идентифицировано 34 вида гетеротрофных нанофлагеллят из 15 крупных таксонов и 15 видов инфузорий из 4 классов. Биомасса микробного сообщества составляла на разных участках водохранилища от 26.2 до 64.3% (в среднем 45.5%) общей биомассы планктона. Гетеротрофные бактерии были главным компонентом микробного сообщества, занимая в среднем 63.9% его биомассы, и вторым после фитопланктона компонентом планктона (в среднем 28.6% его биомассы). Высокое отношение продукции гетеротрофных бактерий к продукции фитопланктона свидетельствует о важной роли бактерий, поставляющих углерод аллохтонных органических веществ на более высокие уровни трофической сети водохранилища.
Ключевые слова: “микробная петля”, бактерии, вирусы, фототрофный пико- и нанопланктон, гетеротрофные нанофлагелляты, инфузории, северное водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Жуков Б.Ф. Атлас пресноводных гетеротрофных жгутиконосцев (биология, экология, систематика). Рыбинск: Дом печати, 1993. 160 с.
2. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Бактериопланктон водохранилищ Верхней и Средней Волги. М.: Соврем. гуманитар. ун-т, 2008. 377 с.
3. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Микробная «петля» в планктонных сообществах морских и пресноводных экосистем. Ижевск: КнигоГрад, 2011. 332 с.
4. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А. Вирусы в планктоне Рыбинского водохранилища // Микробиология. 2007. Т. 76. № 6. С. 879–887.
5. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А., Страшкрабова В. Распределение пикоцианобактерий и вириопланктона в мезотрофном и мезоэвтрофном водохранилищах: роль вирусов в смертности пикоцианобактерий // Изв. РАН. Сер. Биол. 2010. № 6. С. 661–669.
6. Косолапов Д.Б., Косолапова Н.Г., Румянцева Е.В. Активность и эффективность роста гетеротрофных бактерий Рыбинского водохранилища // Изв. РАН. Сер. Биол. 2014. № 4. C. 355–364.
7. Лазарева В.И., Столбунова В.Н., Минеева Н.М., Жданова С.М. Особенности структуры и пространственного распределения планктона в Шекснинском водохранилище // Биология внутр. вод. 2013. № 3. С. 46-55.
8. Мамаева Н.В. Инфузории бассейна Волги. Л.: Наука, 1979. 149 с.
9. Марголина Г.Л. Микробиологическая характеристика Череповецкого водохранилища // Микробиология. 1965. Т. 34. № 4. С. 720–726.
10. Минеева Н.М. Исследования первичной продукции планктона в связи с оценкой современного состояния экосистемы Шекснинского водохранилища // Водные и наземные экосистемы: проблемы и перспективы исследований: Матер. Всерос. конф. Вологда, 2008. С. 81–84.
11. Минеева Н.М. Первичная продукция планктона в водохранилищах Волги. Ярославль: Принтхаус, 2009. 279 с.
12. Романенко В.И. Микробиологические процессы продукции и деструкции органического вещества во внутренних водоемах. Л.: Наука, 1985. 295 с.
13. Современное состояние экосистемы Шекснинского водохранилища. Ярославль: Изд-во Ярослав.гос. тех. ун-та, 2002. 368 с.
14. Azam F., Fenchel T., Field J.G. et al. The ecological role of water-column microbes in the sea // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1983. V. 10. P. 257–263.
15. Bettarel Y., Amblard C., Sime-Ngando T. et al. Viral lysis, flagellate grazing potential, and bacterial production in Lake Pavin // Microb. Ecol. 2003. V. 45. P. 119–127.
16. Callieri C. Picophytoplankton in freshwater ecosystems: importance of small-sized phototrophs // Freshwater Rev. 2007. V. 1. P. 1–28.
17. Foissner W., Berger H. A user-friendly guide to the ciliates (Protozoa, Ciliophora) commonly used by hydrobiologists as bioindicators in rivers, lakes and waste waters, with notes on their ecology // Freshwat Biol. 1996. V. 35. P. 375–482.
18. Personnic S., Domaizon I., Sime-Ngando T., Jacquet S. Seasonal variations of microbial abundances and virus- versus flagellate-induced mortality of picoplankton in three peri-alpine lakes // J. Plank. Res. 2009. V. 31. № 10. P. 1161–1177.
19. Sherr E.B., Sherr B.F. Significant of predation by protists in aquatic microbial food webs // Anton. Leeuw. J. Microb. 2002. V. 81. P. 293–308.
20. Simek K., Pernthaler J., Weinbauer M.G. et al. Changes in bacterial community composition and dynamics and viral mortality rates associated with enhanced flagellate grazing in a mesotrophic reservoir // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. № 6. P. 2723–2733.
21. Sime-Ngando T. Environmental bacteriophages: viruses of microbes in aquatic ecosystems // Front Microbiol. 2014. V. 5. P. 355.
22. Spyres G., Nimmo M., Worsfold P.J. et al. Determination of dissolved organic carbon in seawater using high temperature catalytic oxidation techniques // Trends Anal. Chem. 2000. V. 19. № 8. Р. 498–506.
23. Vors N. Heterotrophic amoebae, flagellates and Heliozoa from the Tvärminne Area, Gulf of Finland, in 1988-1990 // Ophelia. 1992. V. 36. № 1. P. 1–109.
24. Weinbauer M.G., Hofle M.G. Significance of viral lysis and flagellate grazing as factors controlling bacterioplankton production in a eutrophic lake // Appl. Environ. Microbiol. 1998. V. 64. №. 2. P. 431–438.
Я. В. Стройнов, Д. А. Филиппов
Бактерио- и вириопланктон водных объектов верхового болота (Вологодская область).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: styarne@gmail.com
Изучено обилие вирио- и бактериопланктона и роль вирусов в смертности гетеротрофных бактерий в трёх разнотипных болотных водных объектах (топи, мочажине, ручье) Шиченгского верхового болота. Численность бактерий и вирусов достигала очень высоких значений (93 млн кл./мл и 152 млн частиц/мл соответственно). Между водными объектами наблюдались существенные различия в сезонной динамике и средних значениях изученных параметров. Отношение количества вирио- и бактериопланктона (медианные значения от 1.3 в мочажине до 5.6 в ручье) было в нижних пределах, имеющихся в литературных источниках. Вирусы не оказывали существенного прямого влияния на бактериопланктон, лизируя ≤7.8% бактериальной продукции.
Ключевые слова: вириопланктон, бактериопланктон, верховое болото.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Белова С.Э., Федотова А.В., Дедыш С.Н. Ультрамикроформы прокариот в сфагновом болоте водосбора Верхней Волги // Микробиология. 2012. Т. 81. № 5. С. 665–671.
2. Васильчук Т.А., Осипенко В.П. Компонентный состав растворённых органических веществ природных поверхностных вод с высокой цветностью // Гидрология, гидрохимия и гидроэкология. 2010. Т. 3. С. 136–141.
3. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Микробная “петля” в планктонных сообществах морских и пресноводных экосистем. Ижевск: КнигоГрад, 2011. 332 с.
4. Оксиюк О.П., Жукинский В.Н., Брагинский Л.П. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиол. журн. 1993. Т. 28. № 4. С. 62–76.
5. Савичев О.Г. Химический состав болотных вод на территории Томской области (Западная Сибирь) и их взаимодействие с минеральными и органоминеральными соединениями // Изв. Томск. политехн. ун-та. 2009. Т. 314. № 1. С. 72–77.
6. Филиппов Д.А. Гидрохимическая характеристика внутриболотных водоёмов (на примере Шиченгского верхового болота, Вологодская область) // Вода: химия и экология. 2014. № 7 (73). С. 10–17.
7. Филиппов Д.А. Флора Шиченгского водно-болотного угодья (Вологодская область) // Фиторазнообразие Восточной Европы. 2015. Т. 9. № 4. С. 86–117.
8. Auer B., Elzer U., Arndt H. Comparison of pelagic food webs in lakes along a trophic gradient and with seasonal aspects: influence of resource and predation // J. Plankton Res. 2004. V. 26. № 6. P. 697–709.
9. Binder B. Reconsidering the relationship between virally induced bacterial mortality and frequency of infected cells // Aquat. Microbial. Ecol. 1999. V. 18. P. 207–215.
10. Bodelier P.L.E., Dedysh S.N. Microbiology of wetlands // Front. Microbiol. 2013. V. 10. P. 1–4.
11. Bragina A., Maier S., Berg C. et al. Similar diversity of alphaproteobacteria and nitrogenase gene amplicons on two related sphagnum mosses // Front. Microbiol. 2011. V. 2. P. 275.
12. Danovaro R., Corinaldes C., Filippini M. et al. Viriobenthos in freshwater and marine sediments: a review // Freshwater Biol. 2008. V. 53. P. 1186–1213.
13. Ivanova A.O., Dedysh S.N. Abundance, diversity, and depth distribution of planctomycetes in acidic northern wetlands // Front. Microbiol. 2012. V. 3. Р. 5.
14. Filippini M., Buesing N., Bettarel Y. et al. Infection paradox: high abundance but low impact of freshwater benthic viruses. // Appl. Environ. Microbiol. 2006. V. 72. № 7. P. 4893–4898.
15. Jackson C.R., Churchill P.F., Roden E.E. Successional changes in bacterial assemblage structure during epilithic biofilm development // Ecology. 2001. V. 82. P. 555–566.
16. Jackson E.F., Jackson C.R. Viruses in wetland ecosystems // Freshwater Biol. 2008. V. 53. P. 1214–1227.
17. Lamers L.P.M., Van Diggelen J.M.H., Op Den Camp H.J.M. et al. Microbial transformations of nitrogen, sulfur, and iron dictate vegetation composition in wetlands: a review // Front. Microbiol. 2012. V. 3. Р. 156.
18. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green for rapid epifluorescence count of marine viruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. P. 113–118.
19. Norland S. The relationships between biomass and volume of bacteria // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton: Lewis Publ., 1993. P. 303–308.
20. Peduzzi P., Luef B. Viruses // Encyclopedia of inland waters. Oxford: Elsevier Inc, 2009. V. 3. P. 279–294.
21. Porter K.G., Feig Y.S. The use DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
22. Preston M.D., Smemo K.A., McLaughlin J.W., Basiliko N. Peatland microbial communities and decomposition processes in the James bay lowlands, Canada // Front. Microbiol. 2012. V. 3. P. 70.
23. Proctor L.M., Okubo A., Fuhrman J.A. Calibrating estimates of phage-induced mortality in marine bacteria: ultrastructural studies of marine bacteriophage development from one-step growth experiments // Microbial. Ecol. 1993. V. 25. P. 161–182.
24. Sigee D.C. Freshwater microbiology: biodiversity and dynamics interactions of microorganisms in the freshwater environment. Chichester: John Wiley & Sons Ltd., 2005. 524 p.
25. Wang J., Krause S., Muyzer G. et al. Spatial patterns of iron- and methane-oxidizing bacterial communities in an irregularly flooded, riparian wetland // Front. Microbiol. 2012. V. 3. P. 64.
26. Weinbauer M.G. Ecology of prokaryotic viruses // FEMS Microbiol. Rev. 2004. V. 28. P. 127–181.
27. Weinbauer M.G., Winter C., Hofle M.G. Reconsidering transmission electron microscopy based estimates of viral infection of bacterioplankton using conversion factors derived from natural communities // Aquat. Microb. Ecol. 2002. V. 27. P. 103–110.
28. Wommack K.E., Colwell R.R. Virioplankton: viruses in aquatic ecosystems // Microb. Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64. № 1. P. 69–114.
А. Н. Дзюбан
Процессы цикла метана и деструкция органического вещества в разнотипных пресных водоемах в подледный период.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: microb@ibiw.yaroslavl.ru
Исследования различных участков Рыбинского водохранилища, разнотипных озёр и пруда в январе–марте показали, что процессы цикла СН4 в подледный период играют существенную роль в деструкции Сорг и в функционировании трофических сетей их экосистем. В высокотрофных загрязняемых озерах образование СН4 происходит как в илах, так и в водной толще, его валовая продукция достигает здесь высокого летнего уровня – 540–1220 мг Сорг/(м2 ∙ сут). С учетом метаногенеза общеводоёмная деструкция органического вещества идет в это время на 68–97% за счет процессов в донных отложениях. В илах продуктивных озер деструкция происходит исключительно анаэробным путем.
Ключевые слова: цикл метана, деструкция, водоемы, подледный период.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гальченко В.Ф., Дулов Л.Е., Крамер Б. и др. Биогеохимические процессы цикла метана в почвах, болотах и озерах Западной Сибири // Микробиология. 2001. Т. 70. № 2. С. 215–225.
2. Дзюбан А.Н. Деструкция органического вещества и цикл метана в донных отложениях внутренних водоемов. Ярославль: Принтхаус, 2010. 174 с.
3. Дзюбан А.Н. Цикл метана в разнотипных водоемах в подледный период // Микробиология. 2013. Т. 82. № 4. С. 483–488.
4. Дзюбан А.Н., Георгиев А.Н., Крылов А.В., Кузнецова И.А. Бактериопланктон и зоопланктон в подледный период трех разнотипных озер // Биология внутр. вод. 1998. № 2. С. 44–51.
5. Кревш А., Кучинскене А., Пашкаускас Р. Микробиологическая деструкция органического вещества в донных осадках озер Литвы // Микробиология. 2006. Т. 75. № 2. С. 257–263.
6. Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения водных микроорганизмов. М.: Наука, 1989. 286 с.
7. Романенко В.И. Микробиологические процессы продукции и деструкции органического вещества во внутренних водоемах. Л.: Наука, 1985. 295 с.
8. Саралов А.И. Газохроматографический метод определения интенсивности микробиологического окисления метана в водоемах // Микробиология. 1979. Т. 48. Вып. 1. С. 125–128.
9. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. техн. ун-та, 2001. 427 с.
10. Adams D.D., van Eck G.Th. Biogeochemical cycling of organic carbon in the sediments of the Grote Rug reservoir // Arch. Hydrobiol. Ergebn. Limnol. 1988. Bd 31. S. 319–330.
11. Bange H.W., Dahlke S., Ramesh R. et al. Seasonal study of methane and nitrous oxide in the coastal waters of the southern Baltic Sea // Estuarine, Coast. and Shelf Sci. 1998. V. 47. № 6. P. 807–817.
12. King G.M. Ecological aspects of methane oxidation, a key determinant of global methane dynamics // Adv. Microbial Ecol. 1992. V. 3. P. 355–390.
13. Naguib M. A rapid method for the quantitative estimation of dissolved methane and its application in ecological research // Arch. Hydrobiol. 1978. Bd 82. S. 66-73.
14. Nakamura T., Nojiri Y., Utsumi M. et al. Methane emission to the atmosphere and cycling in a shallow eutrophic lake // Arch. Hydrobiol. 1999. Bd 144. H. 4. S. 383-407.
15. Sorrell B.K., Boon P.J. Biogeochemistry of billabong Sediments. 2. Seasonal variations in methane production // Freshwater Biol. 1992. V. 27. № 3. P. 435-445.
16. Thebrath B., Rothfuss F., Whiticar M.J., Conrad R. Methane production in littoral sediment of Lake Constance // FEMS Microbiol. 1993. V. 102. P. 279-289.
П. Г. Беляева
Фотосинтетические пигменты фитоперифитона реки Сылва (Средний Урал).
Институт экологии и генетики микроорганизмов Уральского отделения РАН, 614081 Пермь, ул. Голева, 13
e-mail: belyaeva@psu.ru
По данным полевых наблюдений 2000–2012 гг. приводится пигментный состав альгоценозов обрастаний камней и макрофитов (Potamogeton lucens L., P. perfoliatus L., P. gramineus L., P. pectinatus L., Mirophyllum spicatum L., Petasites hybridus (L.) Gaertn., Mey. et Sxherb, Nuphar lutea L.) предгорной р. Сылва (Средний Урал). Показана широкая вариабельность содержания растительных пигментов в фитоперифитоне в зависимости от сезона и типа субстрата. Максимальные величины, близкие для всех субстратов, наблюдаются в конце биологического лета. В период наблюдения отмечено повышение концентрации Хл а, особенно в теплые маловодные годы. В фонде зеленых пигментов преобладает Хл а, относительное содержание дополнительных хлорофиллов значительно ниже. Концентрация растительных каротиноидов в эпифитоне несколько выше, чем в эпилитоне и сопоставима с Хл а. Трофический статус р. Сылва по концентрациям Хл а в фитоперифитоне оценивается как мезотрофный или слабо эвтрофный.
Ключевые слова: фотосинтетические пигменты, эпифитон, макрофиты, эпилитон, р. Сылва.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Беляева П.Г. Состав и структура фитоперифитона реки Сылва (Пермский край) // Ботан. журн. 2014. Т. 99. № 8. С. 903–916.
2. Беляева П.Г., Саралов А.И., Чикин С.М., Банникова О.М. Функциональная роль перифитона предгорной реки Сылва (бассейн Камы) // Биология внутр. вод. 2007. № 3. С. 32–40.
3. Комулайнен С.Ф. Экология фитоперифитона малых рек Восточной Фенноскандии. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2004. 182 с.
4. Котовщиков А.В. Пигментные характеристики альгоценозов речной системы Оби: Автореф. дис. …канд. биол. наук. Барнаул, 2012. 24 с.
5. Курейшевич А.В., Сиренко Л.А., Медведь В.А. Многолетняя динамика содержания хлорофилла а и особенности развития фитопланктона в Днепродзержинском водохранилище // Гидробиол. журн. 1999. Т. 35. № 2. С. 49–62.
6. Минеева Н.М. Растительные пигменты как показатели биомассы фитопланктона // Альгология. 2011. Т. 21. № 3. С. 385–395.
7. Оксиюк О.П., Жукинский В.Н., Брагинский П.Н. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод // Гидробиол. журн. 1993. Т. 29. № 4. С. 62–77.
8. Павлюк Т.Е., Мухутдинов В.Ф., Бутакова Е.А., Мельников С.Ю. Экологическое состояние верхнего течения р. Белой // Современные аспекты экологии и экологического образования: Матер. Всерос. науч. конфер. Казань, 2005. С. 272–274.
9. Ресурсы поверхностных вод СССР. Основные гидробиологические характеристики. Т. 11: Средний Урал и Предуралье. Вып. 1: Кама. Л.: Гидрометеоиздат, 1975. 473 с.
10. Сиротский С.Е. Трофический статус водотоков бассейна рек Бурея, Зея, Бурейского и Зейского водохранилищ // Научные основы экологического мониторинга водохранилищ. Хабаровск: Дальневост. отд. РАН, 2005. С. 95–99.
11. Сиротский С. Е. Пигментные характеристики водотоков юго-западной части острова Феклистова (Шантарские острова) // Чтения памяти В. Я. Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2008. Вып. 4. С. 118–121.
12. Сиротский С.Е., Медведева Л.А. Пигментные характеристики водорослей перифитона водотоков Дальнего Востока // Биогеохимические и экологические исследования природных и техногенных экосистем Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 1996.
С. 86–96.
13. Трифонова И.С. Оценка трофического статуса водоемов по содержанию хлорофилла “а” в планктоне // Методические вопросы изучения первичной продукции планктона внутренних водоемов. CПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 158–166.
14. Щербак В.И., Сиренко Л.А., Корнейчук Н.Н. Структура сообществ водорослей фитомикроэпилитона реки Тетерев (Украина) // Альгология. 2006. Т. 16. № 3. С. 355–364.
15. Anderson E.L., Welch E.B., Jacoby J.M. et al. Periphyton removal related to phosphorus and grazer biomass level // Freshwater Biol. 1999. V. 41. № 4. P. 633–651.
16. Belyaeva P.G. Pigments of Phytoperiphyton of the Submountain Rivers of the Middle Urals // Inland Water Biology. 2011. V. 4. № 2. P. 153–156. DOI: 10.1134/S1995082911020234.
17. Biggs B. J. F. Patterns in benthic algae in streams // Algal Ecology. Freshwater Benthic Ecosystems. San Diego: Acad. Press, 1996. P. 31–56.
18. Cattaneo A., Galanti G., Gentinetta S., Romo S. Epiphytic algae and macroinvertebrates on submerged and floating-leaved macrophytes in an Italian lake // Freshwater Biol. 1998. V. 39. № 4. P. 725–740.
19. Cattaneo A., Kerimian T., Roberge M., Marty J. Periphyton distribution and abundance on substrata of different size along a gradient of stream trophy de Montréal // Hydrobiologia. 1997. V. 354. № 1–3. P. 101–110.
20. Cazaubon A., Rolland T., Loudiki M. Heterogeneity of periphyton in French Mediterranean rivers // Hydrobiology. 1995. V. 300–301. № 1. P. 105–114.
21. Flinders C.A., Hart D.D. Effects of Pulsed Flows on Nuisance Periphyton Growths in Rivers: A Mesocosm Study // River Res. Appl. 2009. V. 25. № 10. P. 1320–1330.
22. Foy R.H. A comparison of chlorophyll-a and carotenoid concentrations as indicators of algal volume // Freshwater Biol. 1987. V. 17. № 2. Р. 237–250.
23. Gosselain V., Hudon C., Cattaneo A. et al. Physical variables driving epiphytic algal biomass in a dense macrophyte bed of the St. Lawrence River (Quebec, Canada) // Hydrobiology. 2005. V. 534. № 1–3. Р. 11–22.
24. Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanz. 1975. Bd 167. S. 191–194.
25. OECD. Eutrophication of Waters: Monitoring, assessment and control. Paris: Cooperative Programme on Monitoring of Inland Waters, 1982. 154 p.
26. Parsons T.R., Strickland J.D.H. Discussion on spectrophotometric determination of marine plant pigments with revised equations for ascertaining chlorophylls and carotenoids // J. Mar. Res. 1963. V. 21. № 3. P. 155–168.
27. Periphyton of Freshwater Ecosystems. Proceeding of the First International Workshop on Periphyton of Freshwater Ecosystems. Developments in Hydrobiology. Boston; Lancaster: Dr. W. Junk Publ., 1983. V. 17. 346 p.
28. SCOR-UNESCO Working Group № 17. Determination of photosynthetic pigments in sea water // Monographs on Oceanographic Methodology. Paris: UNESCO, 1966. Р. 9–18.
29. Suren A. M., Biggs B. J. F., Kilroy C., Bergey L. Benthic community dynamics during summer low-flows in two rivers of contrasting enrichment 1. Periphyton // New Zealand J. Mar. and Freshwater Res. 2003. V. 37. № 1. P. 53–70.
30. Tank J., Dodds W. K. Responses of heterotrophic and autotrophic biofilms to nutrients in ten streams // Freshwater Biol. 2003. V. 48. № 6. P. 1031–1049.
31. Uehlinger U., Robinson C. T., Hieber M., Zah R. The physico-chemical habitat template for periphyton in Alpine glacial streams under a changing climate // Hydrobiologia. 2010. V. 657. № 1. P. 107–121.
32. Welch E. B., Jacoby J. M., Horner R. R., Seeley M. R. Nuisance biomass levels of periphytic algae in streams // Hydrobiologia. 1988. V. 157. № 1. P. 161–I68.
33. Yamada H., Nakamura F. Effect of fine sediment deposition and channel works on periphyton biomass in the Makomanai river, Northern Japan // River Res. Appl. 2002. V. 18. № 5. P. 481–493.
С. В. Шимараева, Е. В. Пислегина, Л. С. Кращук, К. С. Щапов, Е. А. Зилов
Динамика хлорофилла а в пелагиали Южного Байкала в период прямой температурной стратификации.
Научно-исследовательский институт биологии Иркутского государственного университета, 664003 г. Иркутск, ул. Ленина, 3, а/я 24
e-mail: shimaraeva@gmail.com
Исследована динамика хлорофилла а (Хл а), температуры и прозрачности воды на стационарной пелагической станции в Южном Байкале в период прямой температурной стратификации (июль–октябрь) 2009–2011 гг. Средняя концентрация Хл а в слое 0–50 м (1.03 ± 0.06 мг/м3) близка к средним многолетним значениям, что свидетельствует о стабильном функционировании автотрофного звена пелагиали оз. Байкал. Концентрация Хл а положительно коррелирует с температурой воды.
Ключевые слова: хлорофилл а, температура, прозрачность, Южный Байкал.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Байкаловедение. Новосибирск: Наука, 2012. Кн. 1. 468 с. Кн. 2. 644 с.
2. Бульон В.В. Первичная продукция и трофическая классификация водоемов // Методические вопросы изучения первичной продукции планктона внутренних водоемов. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 147–157.
3. Винберг Г.Г. Первичная продукция водоемов. Минск: Изд-во АН БССР, 1960. 329 с.
4. Закс Л. Статистическое оценивание. М.: Статистика, 1976. 598 с.
5. Изместьева Л.Р., Лопатина Н.И., Павлов Б.К. и др. Тренды изменчивости функциональных параметров автотрофного звена открытого Байкала // Проблемы экологии: Матер. конф. Иркутск, 2000. С. 38–40.
6. Изместьева Л.Р., Шимараева С.В. Многолетние изменения содержания Хл в пелагиали Южного Байкала в период прямой температурной стратификации // Экосистемы и природные ресурсы горных стран: Матер. междунар. симп. Новосибирск, 2004. С. 77–81.
7. Кожов М.М. Биология озера Байкал. М.: Изд-во АН СССР, 1962. 315 с.
8. Кожова О.М., Паутова В.Н., Изместьева Л.Р., Давыдова И.К. Хлорофилл а в воде оз. Байкал // Гидробиол. журн. 1984. Т. 20. № 6. С. 42–49.
9. Adame M.F., Alcocer J., Escobar E. Size-fractionated phytoplankton biomass and its implications for the dynamics of an oligotrophic lake // Freshwater Biol. 2008. V. 53. Р. 22–31.
10. Borics G., Abonyi A., Varbiro G. et al. Lake stratification in the Carpathian basin and its interesting biological consequences // Inland Water. 2015. V. 5. № 2. P. 173–186.
11. Hampton S.E., Izmest’eva L.R., Moore M.V. et al. Sixty years of environmental change in the in the world’s largest freshwater lake – Lake Baikal, Siberia // Global Change Biol. 2008. V. 14. P. 1947–1958.
12. Izmest’eva L.R., Silow E.A., Litchman E. Long-Term Dynamics of Lake Baikal Pelagic Phytoplankton under Climate Change // Inland Water Biology. 2011. V. 4. № 3. P. 301–307.
13. Kozhova O.M., Izmest’eva L.R. Lake Baikal: Evolution and Biodiversity. Leiden: Backhuys Publ., 1998. 456 p.
14. Moore M.V., Hampton S.E., Izmest’eva L.R. et al. Climate Change and the World’s “Sacred Sea” – Lake Baikal, Siberia // BioScience. 2009. V. 59. № 5. P. 405–417.
15. Report of SCOR–UNESCO working group 17. Determination of photosynthetic pigments. Paris: UNESCO, 1964. 12 p.
16. Rinke K., Huber A.M.R., Kempke S. et al. Lake-wide distributions of temperature, phytoplankton, zooplankton, and fish in the pelagic zone of a large lake // Limnol., Oceanogr., 2009. V. 54. № 4. P. 1306–1322.
С. А. Поддубный, В. Г. Папченков, Е. В. Чемерис, А. А. Бобров
Зарастание защищенных мелководий верхневолжских водохранилищ в связи с их морфометрией.
Институт биологии внутренних вод им. И. Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: spod@ibiw.yaroslavl.ru
Рассмотрены особенности зарастания разных типов защищённых мелководий Иваньковского, Угличского, Рыбинского и Горьковского водохранилищ. Средняя степень зарастания увеличивается в ряду карманные мелководья (37.3% площади), заостровные (40.6), заливы (56.9). Более 50% площадей в зарастании всех типов защищённых мелководий вносят гелофиты. Состав доминантов растительных сообществ защищённых мелководий разных типов фактически одинаков, так как водохранилища относятся к одному каскаду, расположены в одной климатической зоне и имеют сходный характер местообитаний. Влияние морфометрических показателей (площади, объёма, длины, средней ширины и глубины) и их соотношений (удлинённости, открытости и изолированности) на зарастание защищенных мелководий проявляется при их средних значениях и имеет экспоненциальный вид. Вклад изолированности участка в зарастание наибольший (до 55%).
Ключевые слова: защищённые мелководья, высшая водная растительность, степень зарастания, морфометрия, водохранилища, Верхняя Волга, Россия.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас единой глубоководной системы Европейской части РФ. СПб.: ГБУ Волго-Балт, 2005. Т. 2. 115 с.
2. Атлас единой глубоководной системы Европейской части РФ. СПб.: Росречфлот, 2004. Т. 5. 113 с.
3. Богачёв В.К. О развитии водной растительности в Рыбинском водохранилище // Тр. биол. ст. Борок. М.; Л.: Наука, 1950. Вып. 1. С. 302–316.
4. Богословский Б.Б., Самохин А.А., Иванов К.Е., Соколов Д.П. Общая гидрология (гидрология суши). Л.: Гидрометеоиздат, 1984. 422 с.
5. Буторин Н.В., Успенский С.М. Значение мелководий в биологической продуктивности водохранилищ // Биологические ресурсы водохранилищ. М.: Наука, 1984. С. 23–41.
6. Довбня И.В. Продукция высшей растительности волжских водохранилищ // Пресноводные гидробионты и их биология. Л.: Наука, 1983. С. 71–84.
7. Довбня И.В. Высшая водная растительность озёр Верхнего Поволжья // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1984. № 63. С. 50–53.
8. Закиров А.Г., Фролова Л.Л. Моделирования влияния мелководий на процессы самоочищения водоёмов // Уч. зап. Казан. ун-та. Сер. Естеств. науки. 2005. Т. 147. Кн. 2. С. 70–79.
9. Корелякова И.Л. Растительность Кременчугского водохранилища. Киев: Наук. думка, 1977. 197 с.
10 Кутова Т.Н. Растительность мелководий Горьковского водохранилища // Изв. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1974. Т. 89. С. 30–36.
11. Ляшенко Г.Ф. Растительность Рыбинского водохранилища // Ботан. журн. 1997. Т. 82. № 11. С. 57–64.
12. Ляшенко Г.Ф. Динамика высшей водной растительности Рыбинского водохранилища // Ботан. журн. 1999. Т. 84. № 12. С. 106–111.
13. Ляшенко Г.Ф. Динамика прибрежно-водных фитоценозов литорали Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2013. № 1. С. 32–38.
14. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Экзерцев В.А. Гидробиологический режим мелководий и их значение для продуктивности волжских водохранилищ // Вопросы комплексного использования водохранилищ. Киев: Наук. думка, 1971. С. 57–58.
15. Одум Ю. Экология. М.: Мир, 1986. Т. 2. 376 с. (Odum E.P. Ecology. N.Y.: Holt, Rinehart and Winston, 1963. 152 p.).
16. Папченков В.Г. Растительный покров водоемов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБиНТ, 2001. 213 с.
17. Папченков В.Г. Растительный покров Иваньковского и Горьковского водохранилищ // Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. тех. ун-та, 2001. С. 151–157.
18. Папченков В.Г. Динамика разнообразия растительного покрова волжских водохранилищ // Динамика разнообразия гидробионтов во внутренних водоёмах России Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. тех. ун-та, 2002. С. 59–78.
19. Папченков В.Г. Растительный покров залива и подпорных участков рек Юхоть и Улейма // Яросл. пед. вестн. Сер. Естеств. науки. 2011. № 1. С. 119–127.
20. Папченков В.Г. Степень зарастания Рыбинского водохранилища и продуктивность его растительного покрова // Биология внутр. вод. 2013. № 1. С. 24–31.
21. Папченков В.Г., Лисицына Л.И., Довбня И.В., Артёменко В.И. Водная растительность Костромского расширения Горьковского водохранилища // Ботан. журн. 1994. Т. 79. № 11. С. 35–45.
22. Поддубный С.А. Современное состояние и экологическое значение уровня воды в верхневолжских водохранилищах // Вода: химия и экология. 2012. № 12. С. 9–15.
23. Поддубный С.А. Защищённые мелководья верхневолжских водохранилищ и их экологическое значение // Вода: химия и экология. 2013. № 11. С. 25–40.
24. Поддубный С.А., Сухова Э.В. Моделирование влияния гидродинамических и антропогенных факторов на распределение гидробионтов в водохранилищах: руководство для пользователей. Рыбинск: Дом печати, 2002. 120 с.
25. Распопов И.М. Высшая водная растительность больших озёр Северо-Запада СССР. Л.: Наука, 1985. 197 с.
26. Седова О.В. Пространстенно-временная динамика флоры и растительности Волгоградского водохранилища в административных границах Саратовской области: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Саратов, 2007. 23 с.
27. Стрельникова А.П. Значение высшей водной растительности в формировании условий обитания сеголетков рыб, нагуливающихся в прибрежье // Вестн. Астрахан. гос. тех. ун-та. Сер. Рыб. хоз-во. 2013. № 1. С. 91–99.
28. Тихомиров О.А. Формирование, динамика и экологическое состояние аквальных комплексов равнинных водохранилищ: Автореф. дис. ... докт. геогр. наук. М., 2011. 18 с.
29. Тихомиров О.А., Кирпичникова Н.В., Федорова Л.П. Современное состояние аквальных комплексов заливов Иваньковского водохранилища // Экологические аспекты изучения природной среды Тверской области. Тверь: Твер. гос. ун-т, 1997. С. 16–32.
30. Шашуловская Е.А. Роль мелководий в самоочищении равнинных водохранилищ (на примере Волгоградского водохранилища): Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Нижний Новгород, 2010. 23 с.
31. Шашуловская Е.А., Мосияш С.А. О роли мелководий в процессах самоочищения Волгоградского водохранилища // Вестн. Саратов. гос. агр. ун-та. 2009. № 12. С. 43–46.
32. Эдельштейн К.К. Гидрология озер и водохранилищ. М.: Изд-во Перо, 2014. 399 с.
33. Экзерцев В.А. Зарастание литорали волжских водохранилищ // Биологические аспекты изучения водохранилищ. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1963. С. 15–29.
34. Экзерцев В.А. Растительность Иваньковского водохранилища // Биология и продуктивность пресноводных организмов. М.; Л.: Наука, 1971. С. 75–95.
35. Экзерцев В.А. Зарастание мелководий Горьковского водохранилища // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1972. № 14. С. 28–32.
36. Экзерцев В.А. Изменения в зарастании и продукции водной растительности Угличского водохранилища // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1973. № 18. С. 24–28.
37. Экзерцев В.А., Лисицына Л.И. Изучение растительных ресурсов водохранилищ Волжского каскада // Биологические ресурсы водохранилищ. М.: Наука, 1984. С. 89–99.
38. Экзерцев В.А., Лисицына Л.И., Довбня И.В. Флористический состав и продукция водной растительности Угличского водохранилища // Флора, фауна и микроорганизмы Волги. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1974. С. 76–99.
39. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. тех. ун-та, 2001. 427 c.
40. Fulmer J.E., Robinson A.T. Aquatic plant species distributions and associations in Arizonas reservoirs // J. Aquat. Plant Manage. 2008. V. 46. P. 100–106.
41. Pandit A.K. Role of macrophytes in aquatic ecosystems and management of freshwater resources // J. Environ. Manage. 1984. V. 18. P. 73–88.
42. SAS. Планета (SAS. Planet) 121010. http://swdb.ru/sasplaneta/download/#. kF1RJbDbsN.
Л. М. Киприянова*, Л. А. Долматова*, Б. Б. Базарова**, Б. Б. Найданов***, Р. Е. Романов****, Г. Ц. Цыбекмитова**, А. В. Дьяченко*
К экологии представителей рода Stuckenia (Potamogetonaceae) в озерах Забайкальского края и Республики Бурятия.
*Институт водных и экологических проблем СО РАН, 656038 Барнаул, ул. Молодежная, 1
**Институт природных ресурсов, экологии и криологии СО РАН, 672014 Чита, ул. Недорезова, 16а, а/я 521
*** Институт общей и экспериментальной биологии СО РАН, 670047 Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6
**** Центральный сибирский ботанический сад СО РАН, 630090 Новосибирск, ул. Золотодолинская, 1
e-mail: kipr@iwep.nsc.ru
Уточнены распространение и экология представителей рода Stuckenia (S. chakassiensis (Kashina) Klinkova, S. pectinata (L.) Börner, S. macrocarpa (Dobroch.) Tzvelev, S. vaginata (Turcz.) Holub) в солоноватых и соленых озерах востока России. Показано, что в большинстве забайкальских озер с повышенной минерализацией произрастает S. chakassiensis, а не S. pectinata, как указывали ранее. Таким образом, ареал этого интересного и пока еще недостаточно изученного таксона в пределах России существенно простирается на восток. S. macrocarpa, столь обычная в минерализованных водах Западной Сибири, в Забайкалье не отмечена. В содовых водах Забайкалья S. chakassiensis формирует заросли с довольно высокой продуктивностью.
Ключевые слова: Stuckenia, S. chakassiensis, Восточная Сибирь, экология, озера, минерализация.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алекин О.А. Основы гидрохимии. Л.: Гидрометеоиздат, 1953. 109 с.
2. Атлас Забайкалья (Бурятская АССР и Читинская область). М.: ГУГК при Cовете министров СССР, 1967. 176 с.
3. Базаров Д.Б. Четвертичные отложения и основные этапы развития Селенгинского Среднегорья. Улан-Удэ: Бурят. кн. изд-во, 1968. 165 с.
4. Базарова Б.Б. Водная флора и растительность некоторых водоемов приононско-торейских степей // Флора и растительность Даурии: исследования и охрана. Сб. науч. статей. Чита: Изд-во ЗабГПУ, 2004. С. 54–60.
5. Базарова Б.Б. Водные растения солоноватых и соленых озер // Солоноватые и соленые озера Забайкалья: гидрохимия, биология. Улан-Удэ: Изд-во Бурят. ун-та, 2009. С. 275–282.
6. Волобаев П.А. О двух таксонах рода Potamogeton L. из Сибири // Сиб. биол. журн. 1991. Вып. 5. С. 75–76.
7. Волобаев П.А. О двух таксонах рода Potamogeton L. из Сибири II. Potamogeton chakassiensis (Kaschina) Volob. // Сиб. биол. журн. 1993. Вып. 3. С. 51–59.
8. Катанская В.М. Растительность степных озер Северного Казахстана и сопредельных с ним территорий // Озера семиаридной зоны. Л.: Наука, 1970. С. 92–135.
9. Кашина Л.И. Potamogetonaceae // Флора Сибири. Новосибирск: Наука, 1988. Т. 1. С. 93–105.
10. Киприянова Л.М. Современное состояние водной и прибрежно-водной растительности Чановской системы озер // Сиб. экол. журн. 2005. № 2. С. 193–200.
11. Киприянова Л.М. Состав и экология видов рода Potamogeton (Potamogetonaceae) в лесостепных и степных озёрах Новосибирской области // Ботан. журн. 2007. Т. 92. № 11. С. 1706–1716.
12. Константинов А.С. Общая гидробиология. М.: Высш. шк., 1979. 480 с.
13. Корелякова И.Л. Растительность Кременчугского водохранилища. Киев: Наук. думка, 1977. 198 с.
14. Лисицына Л.И., Папченков В.Г. Флора водоемов России: Определитель сосудистых растений. М.: Наука, 2000. 237 с.
15. Найданов Б.Б. К экологии Potamogeton pectinatus s.l. в соленых озерах Селенгинского среднегорья // Молодежь и наука Забайкалья: Матер. молодеж. науч. конф. Чита: Изд-во ЗабГГПУ, 2008. С. 40–42.
16. Оксиюк О.М., Жукинский В.Н., Брагинский Л.П. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиол. журн. 1993. Т. 29. № 4. С. 62–76.
17. ПНД Ф14.1:2.4–95. Количественный химический анализ вод. Методика выполнения измерений массовой концентрации нитрат-ионов в природных и сточных водах фотометрическим методом с салициловой кислотой. М.: Мин. охраны окружающей среды и природных ресурсов РФ, 2004. 9 с.
18. Половкин А.А. Особенности климата Забайкалья, Приамурья и Приморья // Вопр. географ. 1946. Сб. 1. С. 107–120.
19. РД 52.24.514–2009. Методика расчета суммарной молярной (массовой) концентрации ионов натрия и калия, суммарной массовой концентрации ионов в водах. Ростов-на-Дону: Федеральная служба по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды (Росгидромет), 2009. 12 с.
20. Руководство по химическому анализу поверхностных вод суши. Ростов-на-Дону: НОК, 2009. Ч. 1. 1046 с.
21. Свириденко Б.Ф. Флора и растительность водоемов Северного Казахстана. Омск: Омск. гос. пед. ун-т, 2000. 196 с.
22. Флора Нижнего Поволжья. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2006. 435 с.
23. Флора Хангая. Л.: Наука, 1989. 191 с.
24. Флоренсов Н.А. Геоморфология и новейшая тектоника Забайкалья // Изв. АН СССР. Сер. геол. 1948. № 2. С. 3–16.
25. Форш Т.Б. Гидрохимическая характеристика озер семиаридных областей СССР. Озера семиаридной зоны СССР. Л.: Наука, 1970. С. 36–48.
26. Цвелев Н.Н. О некоторых новых для Кавказа видах растений // Новости системат. высш. раст. 1990. Т. 27. С. 179–183.
27. Цвелев Н.Н. Об объеме и номенклатуре некоторых родов сосудистых растений Европейской России // Ботан. журн. 1999. Т. 84. № 7. С. 109–118.
28. Ceska A. Potamogetonaceae // Illustrated Flora of British Columbia 7, Victoria: Ministry of Sustainable Resource Management & Ministry of Forests, 2000. P. 292–313.
29. Chepinoga V.V., Bergmeier E., Rosbakh S.A., Fleckenstein K.M. Classification of aquatic vegetation (Potametea) in Baikal Siberia, Russia, and its diversity in a Northern Eurasian context // Phytocoenologia. 2013. V. 43. № 1–2. P. 127–167.
30. Crow G.E., Hellquist C.B. Aquatic and wetland plants of northeastern North America: A revised and enlarged edition of Norman C. Fassett’s. A manual of aquatic plants 2: Angiosperms: monocotyledons. Madison: Univ. Wisconsin Press, 2000. 536 p.
31. Golterman H.L., Clymo R.S., Best E.P.H., Lauga L. Methods of exploration and analysis of the environment of aquatic vegetation // Vegetation of inland water. [Handbook of vegetation science. 15/1]. Dodrecht; Boston; L.: Kluwer Acad. Publ., 1998. P. 31–61.
32. Hammer U.T., Heseltine J.M. Aquatic macrophytes in saline lakes of Canadian praries // Hydrobiologia. 1988. V. 158. P. 101–116.
33. Kantrud H.A. Sago pondweed (Potamogeton pectinatus L.): A literature review // Fish and Wildlife Res. Washington, 1990. № 176. 89 p.
34. Kaplan Z. A taxonomic revision of Stuckenia (Potamogetonaceae) in Asia, with notes on the diversity and variation of the genus on a worldwide scale // Folia Geobot. 2008. V. 43. Р. 159–234.
35. King R.A., Gornall R.J., Preston C.D., Croft J.M. Population differentiation of Potamogeton pectinatus in the Baltic Sea with reference to waterfowl dispersal // Mol. Ecol. 2002. V. 1110. P. 1947–1956.
36. Ma Y., Tu L., Liu G., Cao J. Classified Studies on Potamogeton L. in Inner Mongolia by morphological and anatomical methods // Act. Bot. Bor.–Occ. Sinica. 1983. V. 3. № 1. P. 1–17.
37. Wijk R. J., Goor E.M.J., Verkley J.A.C. Ecological studies on Potamogeton pectinatus L. II. Autecological characteristics, with emphasis on salt tolerance, intraspecific variation and izoenzyme patterns // Aquat. Bot. 1988. V. 32. № 3. P. 239–260.
С. А. Курбатова, И. Ю. Ершов, Е. В. Борисовская
Влияние плотности зарослей гидрофитов на зоопланктон.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: kurb@ibiw.yaroslavl.ru
Экспериментально исследовано развитие зоопланктона в зарослях элодеи Elodea canadensis Michx. разной плотности (2, 4 и 8 г сырой массы на 1 л). Показано, что в густых зарослях вода различается катионным составом, уровнем рН и резкими суточными колебаниями концентрации растворенного кислорода. Изменение гидрохимических характеристик и пространственной организации среды влияет на разнообразие зоопланктона и динамику численности отдельных видов. С повышением плотности зарослей уменьшалась численность Daphnia longispina O.F. Müller и возрастала доля хищников (Cyclopidae и Polyphemus pediculus O.F. Müller). Обилие Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Müller) увеличивалось в присутствии растений, но не определялось плотностью зарослей. Обнаружена связь между развитием Simocephalus vetulus (O.F. Müller) и Diaphanosoma brachyurum (Liévin) и катионным составом среды, меняющимся в процессе роста и отмирания растений.
Ключевые слова: зоопланктон, гидрофиты, Elodea canadensis, микрокосмы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Карпевич А.Ф. Теория и практика акклиматизации водных организмов. М.: Пищ. пром-сть, 1975. 432 с.
2. Кудрявцев В.М., Кудрявцева Н.А. Разложение Potamogeton lucens L. в литорали Рыбинского водохранилища // Гидробиол. журн. 1982. Т. 18. № 5. С. 82–87.
3. Курбатова С.А., Лаптева Н.А., Ершов И.Ю., Борисовская Е.В. Средообразующая роль гидрофитов в развитии и функционировании планктонных сообществ // Тр. Карельск. науч. центра РАН. Сер. Экспериментальная биология. 2013. № 3. С. 119–128.
4. Медянцева Е.Н., Тютин А.В. Роль соотношения калия и натрия в воде для выживаемости Simocephalus vetulus (O.F. Müller, 1776) (Crustacea, Cladocera) в малых водоемах бассейна Верхней Волги // Вода: химия и экология. 2014. № 7. С. 54–60.
5. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Зоопланктон и его продукция. Л.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1982. 33 с.
6. Basińska A.M., Antczak M., Świdnicki et al. Habitat type as strongest predictor of the body size distribution of Chydorus sphaericus (O.F. Müller) in small water bodies // Int. Rev. Hydrobiol. 2014. V. 99. P. 1–11.
7. Basu B.K., Kalff J., Pinel-Alloul B. The influence of macrophyte beds on plankton communities and their export fromfluvial lakes in the St Lawrence River // Freshwater Biol. 2000. V. 45. № 4. P. 373–382.
8. Booker J., Cheruvelil K.S. Are zooplankton food resources poor in the vegetated littoral zone of shallow lakes? // Freshwater Biol. 2011. V. 56. № 12. P. 2459–2472.
9. Burks R.L., Jeppesen E., Lodge D.M. Macrophyte and fish chemicals suppress Daphnia growth and alter life-history traits // Oikos. 2000. V. 88. № 1. P. 139–147.
10. Burks R.L., Jeppesen E., Lodge D.M. Littoral zone structures as Daphnia refugia against fish predators // Limnol., Oceanogr. 2001. V. 46. № 2. P. 230–237.
11. Burks R.L., Mulderij G., Gross E. et al. The crucial role of macrophytes in regulating trophic interactions in shallow lake wetlands // Ecol. Stud. 2006. V. 191. P. 37–53.
12. Cerbin S., van Donk E., Gulati R.D. The influence of Myriophyllum verticillatum and artificial plants on some life history parameters of Daphnia magna // Aquat. Ecol. 2007. V. 41. № 2. P. 263–271.
13. Erhard D., Gross E.M. Allelopathic activity of Elodea canadensis and Elodea nuttallii against epiphytes and phytoplankton // Aquat. Bot. 2006. V. 85. № 3. P. 203–211.
14. Hammer Ø., Harper D. A. T., Ryan P. D. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis // Palaeontol. Electronica. 2001. V. 4. № 1. P. 9–15.
15. Hilt S., Gross E.M. Can allelopathically active submerged macrophytes stabilize clear-water states in shallow lakes? // Basic and Appl. Ecol. 2008. № 9. P. 422–432.
16. Janauer G.A. Elodea canadensis and its dormant apices: an investigation of organic and mineral constituents // Aquat. Bot. 1981. V. 11. P. 231–243.
17. Kornijow R., Vakkilainen K., Horppila J. et al. Impacts of submerged plant (Elodea canadensis) on interactions between roach (Rutilus rutilus) and its invertebrate prey communities in a lake littoral zone // Freshwater Biol. 2005. V. 50. № 2. P. 262–276.
18. Kuczyńska-Kippen N., Joniak T. Zooplankton diversity and macrophyte biometry in shallow water bodies of various trophic state // Hydrobiologia. 2016. V. 774. № 1. P. 39–51.
19. Lürling M., van Geest G., Scheffer M. Importance of nutrient competition and allelopathic effects in suppression of the green alga Scenedesmus obliquus by the macrophytes Chara, Elodea and Myriophyllum // Hydrobiologia. 2006. V. 556. № 1. P. 209–220.
20. Ojala A. ,Kankaala P., Kairesalo T., Salonen K. Growth of Daphnia longispina L. in a polyhumic lake under various availabilities of algal, bacterial and detrital food // Hydrobiologia. 1995. V. 315. № 2. P. 119–134.
21. Pace M.L., Vaqué D. The importance of Daphnia in determining mortality rates of protozoans and rotifers in lakes // Limnol., Oceanogr. 1994. V. 39. № 5. P. 985–996.
22. Pokorný J., Květ J., Ondok J.P. et al. Production-ecological analysis of a plant community dominated by Elodea canadensis Michx // Aquat. Bot. 1984. V. 19. № 3−4. P. 263−292.
23. Raspopov I.M., Adamec L., Husák Š. Influence of aquatic macrophytes on the littoral zone habitats of the Lake Ladoga, NW Russia // Preslia. 2002. V. 74. № 4. P. 315–321.
24. Rybak J.I., Węglenska T. Temporal and spatial changes in the horizontal distribution of planktonic Crustacea between vegetated littoral zone and the zone of open water // Pol. J. Ecol. 2003. V. 51. № 2. P. 205–218.
25. Schou M.O., Risholt C., Lauridsen T.L. et al. Restoring lakes by using artificial plant beds: habitat selection of zooplankton in clear and turbid shallow lake // Freshwater Biol. 2009. V. 54. № 7. P. 1520–1531.
26. Stefanidis K., Papastergiadou E. Influence of hydrophyte abundance on the spatial distribution of zooplankton in selected lakes in Greece // Hydrobiologia. 2010. V. 656. № 1. P. 55–65.
27. Thomaz S.M., da Cunha E.R. The role of macrophytes in habitat structuring in aquatic ecosystems: methods of measurement, causes and consequences on animal assemblages’ composition and biodiversity // Acta Limnol. Brasiliensia. 2010. V. 22. № 2. P. 218–236.
28. Vanderstukken M., Declerck S.A.J., Pals A. et al. The influence of plant-associated filter feeders on phytoplankton biomass: a mesocosm study // Hydrobiologia. 2010. V. 646. № 1. P. 199–208.
29. Vakkilainen K. Submerged macrophytes modify food web interactions and stability of lake littoral ecosystems. Lahti: Univ. Helsinki, Department Ecol. and Environ. Sci., 2005. 40 p.
И. В. Суховская*, Е. В. Борвинская*, Л. П. Смирнов*, А. А. Кочнева**
Роль глутатиона в функционировании системы антиоксидантной защиты у рыб (обзор).
* Институт биологии Карельского научного центра РАН, 185910, Петрозаводск, ул. Пушкинская, д. 11
** Петрозаводский государственный университет, 185910, Петрозаводск, пр. Ленина, д. 33
e-mail: sukhovskaya@inbox.ru
В основе окислительного стресса лежит повреждение компонентов клеток активными формами кислорода (АФК), возникающими под действием различных химических поллютантов, таких как катионы тяжелых металлов, полиароматические углеводороды, хлорорганические и фосфорорганические пестициды, полихлорбифенилы, диоксины и другие ксенобиотики. Для предотвращения патологических последствий взаимодействия биологических молекул с высокореакционными АФК в клетках существует механизм их обезвреживания с помощью глутатиона, небелкового тиола – компонента клеточной защиты от токсического действия ксенобиотиков и катионов металлов. В последние десятилетие опубликовано большое количество работ по влиянию загрязнителей окружающей среды на изменение концентрации глутатиона в тканях водных организмов. В этом обзоре суммированы данные современных исследований по вариабельности содержания глутатиона в тканях рыб под действием ксенобиотиков биогенного и техногенного происхождения.
Ключевые слова: глутатион, антиоксидантная система, рыбы, токсины, биогенное и техногенное загрязнение.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Белых О.И., Гладких А.С., Сороковикова Е.Г. и др. Микроцистин-продуцирующие цианобактерии в водоемах России, Беларуси и Украины // Химия в интересах устойчивого развития. 2013. № 21. С. 363–378.
2. Суховская И.В., Борвинская Е.В., Смирнов Л.П. Вариабильность состава пептидов с молекулярной массой ниже 10 кДа в тканях рыб // Биота северных озер в условиях антропогенного воздействия. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2012. С. 128–131.
3. Чекрыжева Т.А., Комулайнен С.Ф. Альгофлора озер и рек республики Карелия (Россия) // Альгология. 2010. № 3. C. 319–334.
4. Adamovský O., Kopp R., Hilscherová K. et al. Microcystin kinetics (bioaccumulation, elimination) and biochemical responses in common carp and silver carp exposed to toxic cyanobacterial blooms // Environ. Toxicol. Chem. 2007. V. 26. № 12. P. 2687–2693.
5. Al-Chais S.M. Acetylcholinesterase, glutathione and hepatosomatic index as potential biomarkers of sewage pollution and depuration in fish // Mar. pollut. Bull. 2013. V. 74. P. 183–186.
6. Amando L.L., Garcia M.L., Ramos P.B. et al. Influence of a toxic Microcystis aeruginosa strain on glutathione synthesis and glutathione-S-transferase activity in common carp Cyprinus carpio (Teleostei: Cyprinidae) // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 60. P. 319–326.
7. Aramphongphan A., Laovitthayanggoon S., Himakoun L. Snake-fish cell line, SSN-1 (Ophiocephalus striatus) as a model for cadmium genotoxicity testing // Toxicol. J. Vitro. 2009. V. 23. P. 963–968.
8. Atencio L., Moreno I., Jos A. et al. Effects of dietary selenium on the oxidative stress and pathological changes in tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to a microcystin-producing cyanobacterial water bloom // Toxicon. 2009. V. 53. P. 269–282.
9. Ballatori N., Krance S. M., Notenboom S. et al. Glutathione dysregulation and the etiology and progression of human diseases // J. Biol. Chem. 2009. V. 390. № 3. P. 191–214.
10. Belcastro M., Marino T., Russo N., Toscano M. The role of glutathione in cadmium ion detoxifi cation: Coordination modes and binding properties – A density functional study // J. Inorg. Biochem. 2009. V. 103. P. 50–57.
11. Cao L., Huang W., Liu J. et al. Accumulation and oxidative stress biomarkers in Japanese flounder larvae and juveniles under chronic cadmium exposure // Comp. Biochem. Physiol. 2010. V. 151C. P. 386–392.
12. Cao L., Huang W., Shan X. et al. Tissue-specific accumulation of cadmium and its effects on antioxidative responses in Japanese flounder juveniles // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2012. V. 33. P. 16–25.
13. Chatterjee S., Bhattacharya S. Detoxification of industrial pollutants by the glutathione and glutathione-S-transferase system in the liver of Anabas testudineus (Bloch) // Toxicol. Lett. 1984. V. 22. P. 187–193.
14. Dabas A., Nagpure N.S., Kumar R. et al. Assessment of tissue-specific effect of cadmium on antioxidant defense system and lipid peroxidation in freshwater murrel, Channa punctatus // Fish Physiol. Biochem. 2012. V. 38. P. 469–482.
15. Dai W., Fu L., Liu H. et al. Effects of Montmorillonite on Pb Accumulation, Oxidative Stress, and DNA Damage in Tilapia (Oreochromis niloticus) Exposed to Dietary Pb // Biol. Trace Elem. Res. 2010. V. 136. P. 71–78.
16. Dinu D., Marinescu D., Munteanu M.C. et al. Modulatory effects of deltamethrin on antioxidant defense mechanisms and lipid peroxidation in Carassius auratus gibelio liver and intestine // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2010. V. 58. P. 757–764.
17. Dolci G.S., Dias V.T., Roversi K. et al. Moderate hypoxia is able to minimize the manganese-induced toxicity in tissues of silver catfish (Rhamdia quelen) // Ecotoxicol Environ. Saf. 2013. V. 91. Р. 103–109.
18. Firat Ö., Çogun H., Aslanyavrusu S., Kargin F. Antioxidant responses and metal accumulation in tissues of Nile tilapia Oreochromis niloticus under Zn, Cd and Zn + Cd exposures // J. Appl. Toxicol. 2009. V. 29. P. 296–301.
19. Firat Ö., Kargin F. Effects of Zinc and Cadmium on erythrocyte antioxidant systems of a freshwater fish Oreochromis niloticus // J. Biochem. Molecul. Toxicol. 2010. V. 24. № 4. P. 223–229.
20. Firat Ö., Kargin F. Response of Cyprinus carpio to copper exposure: alterations in reduced glutathione, catalase and proteins electrophoretic patterns // Fish Physiol. Biochem. 2010. V. 36. P. 1021–1028.
21. Hao L., Chen L. Oxidative stress responses in different organs of carp (Cyprinus carpio) with exposure to ZnO nanoparticles // Ecotoxicol Environ Saf. 2012. V. 80. P. 103–110.
22. Haya K. Toxicity of pyrethroid insecticides to fish // Environ. Toxicol. Chem. 1989. V. 8. Р. 381–391.
23. Huang Z-Y., Zhang Q., Chen J. et al. Bioaccumulation of metals and induction of metallothioneins in selected tissues of common carp (Cyprinus carpio L.) co-exposed to cadmium, mercury and lead // Appl. Organometal Chem. 2007. V. 21. P. 101–107.
24. Jia X., Zhang H., Liu X. Low levels of cadmium exposure induce DNA damage and oxidative stress in the liver of Oujiang coloured common carp Cyprinus carpio var. color // Fish Physiol. Biochem. 2011. V. 37. P. 97–103.
25. Kaur M., Atif F., Ansari R.A. et al. The interactive effect of elevated temperature on deltamethrin-induced biochemical stress responses in Channa punctata Bloch // Chemico-Biological Interact. 2011. V. 193. P. 216–224.
26. Kuroshima R. Hepatic metallothionein and glutathione levels in red sea bream // Comp. Biochem. Physiol. 1995. V. 110C. P. 95–100.
27. Li F., Ji L., Luo Y., Oh K. Hydroxyl radical generation and oxidative stress in Carassius auratus liver as affected 2,4,6-trichlorophenol // Chemosphere. 2007. V. 67. P. 13–19.
28. Li L., Xie P., Guo L.G. Antioxidant response in liver of the phytoplanktivorous bighead carp (Aristichtys nobilis) intraperitoneally-injected with extracted microcystins // Fish Physiol. Biochem. 2010. V. 36. P. 165–172.
29. Li L., Xie P., Li S.X. et al. Sequential ultrastructural and biochemical changes induced in vivo by the hepatotoxic microcestins in liver of the phytoplanctivorous silver carp (Hypophthalmichtys molitrix) // Comp. Biochem. Physiol. C. Toxicol. Pharmacol. 2007. V. 146. P. 357 – 367.
30. Luo Y., Su Y., Lin R. et al. 2-Chlorophenol induced ROS generation in fish Carassius auratus based on the EPR method // Chemosphere. 2006. V. 65. P. 1064–1073.
31. Luo Y., Wang X., Ji L., Su Y. EPR detection of hydroxyl radical generation and its interaction with antioxidant system in Carassius auratus exposed to pentachlorophenol // J. Hazardous Mater. 2009. V. 171. Р. 1096–1102.
32. Malbrouck C., Trausch G., Devos P., Kestemont P. Effect of microcystin-LR on protein phosphatase activity in fed and fasted juvenile goldfish Carassius auratus L. // Toxicon. 2004. V. 43. P. 295–301.
33. Mates J.M. Effects of antioxidant enzymes in the molecular control of reactive oxygen species toxicology // Toxicology. 2000. V. 153. P. 83–104.
34. Monteiro D.A., Rantin F.T., Kalinin A.L. Dietary intake of inorganic mercury: bioaccumulation and oxidative stress parameters in the neotropical fish Hoplias malabaricus // Ecotoxicology. 2013. V. 22. №3. P. 446–456.
35. Padmini E., Tharani J. Differential expression of HO-1 and CYP1A2 during up-regulation of ERK in stressed fish hepatocytes // Environ Monit Ass. 2015. V. 187(1). P. 4147. doi: 10.1007/s10661-014-4147-1.
36. Palanikumar L., Kumaraguru A.K., Ramakritinan C.M., Anand M. Biochemical response of anthracene and benzo [a] pyrene in milkfish Chanos chanos // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2012. V. 75. P. 187–197.
37. Patel M., Rogers J.T., Pane E.F., Wood C.M. Renal responses to acute lead waterborne exposure in the freshwater rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Aquat. Toxicol. 2006. V. 80. P. 362–731.
38. Rau M.A., Whitaker J., Freedman J.H., Di Giulio R.T. Differential susceptibility of fish and rat liver cells to oxidative stress and cytotoxicity upon exposure to prooxidants // Comp. Biochem. Physiol. 2004. V. 137. № 4. P. 335–342.
39. Song S.B., Xu Y., Zhou B.S. Effects of hexachlorobenzene on antioxidant status of liver and brain of common carp (Cyprinus carpio) // Chemosphere. 2006. V. 65. P. 699–706.
40. Souid G., Souayed N., Yaktiti F., Maaroufi K. Effect of acute cadmium exposure on metal accumulation and oxidative stress biomarkers of Sparus aurata // Ecotoxicol. Environ. Saf. 2013. V. 89. P. 1–7.
41. Stara A., Machova J., Velisek J. Effect of chronic exposure to simazine on oxidative stress and antioxidant response in common carp (Cyprinus carpio L.) // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2012. V. 33. P. 334–343.
42. Thomas P., Wofford H.W. Effect of cadmium and arochlor 1254 on lipid peroxidation, glutathione peroxidase activity, and selected antioxidants in atlantic croaker tissues // Aquat. Toxicol. 1993. V. 27. P. 159–178.
43. Tort L., Kargacin B., Torres P. et al. The effect of cadmium exposure and stress on plasma cortisol, metallothionein levels and oxidative status in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) liver // Comp. Biochem. Physiol. 1996. V. 114C. P. 29–34.
44. Weifen L., Xiaoping Z., Wenhui S. et al. Effects of Bacillus preparations on immunity and antioxidant activities in grass carp (Ctenopharyngodon idellus) // Fish Physiol. Biochem. 2012. V. 38(6). Р. 1585–1592.
45. Ying Y.Y., Jia J, Guo H.Y. et al. Pyrene-stimulated reactive oxygen species generation and oxidative damage in Carassius auratus // J. Environ. Sci. Health. Part A. 2014. V. 49. P. 162–170.
46. Yin Y., Jia H., Sun Y. et al. Bioaccumulation and ROS generation in liver of Carassius auratus, exposed to phenanthrene // Comp. Biochem. and Physiol. Part C. 2007. V. 145. P. 288–293.
47. Yi X., Ding H., Lu Y. et al. Effects of long-term alachlor exposure on hepatic antioxidant defense and detoxifying enzyme activities in crucian carp (Carassius auratus) // Chemosphere. 2007. V. 68. P. 1576–1581.
48. Zhang J., Cai L.Z., Yuan D.X., Chen M. Distribution and sources of polynuclear aromatic hydrocarbons in
В. Ю. Пономарева, Д. С. Павлов, В. В. Костин
Разработка и апробирование методики исследования соотношения типов реореакции рыб в кольцевом гидродинамическом лотке.
Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071, Москва, Ленинский проспект, д. 33
e-mail: ponomareva_ipee@mail.ru
Разработана и апробирована на трех видах рыб (Danio rerio, Poecilia reticulate, Inpaichthys kerri) методика определения одной из характеристик мотивационной компоненты реореакции (соотношение типов реореакции) в кольцевом гидродинамическом лотке. Рассмотрены три типа реореакции рыб: положительный (движение против течения), отрицательный (движение по течению) и компенсаторный (сохранение положения относительно неподвижных ориентиров). Отличительные особенности новой методики – неограниченная дистанция перемещения рыб, непрерывное индивидуальное наблюдение за движением рыб (видеорегистрация) и оценка соотношения типов реореакции по времени проявления особью этих типов. Определены требующиеся продолжительность наблюдения и скоростной режим потока. Показано, что данную методику можно использовать для изучения реореакции у рыб разных видов. Подтверждена неоднократность проявления каждой особью в течение опыта всех трех типов реореакции.
Ключевые слова: рыбы, мотивационная компонента реореакции, методика, кольцевой лоток, типы реореакции.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Асланова Н.Е. Экспериментальное изучение поведения рыб в потоке // Докл. ВНИРО. 1952. Вып. 1. С. 13–18.
2. Звездин А.О. Реореакция ранней молоди нерки Oncorhynchus nerka (Walb.) в период расселения с нерестилищ: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 2016. 28 с.
3. Ковалевская Л.А. Энергетика движущейся рыбы // Тр. Морск. гидрофиз. ин-та АН СССР. 1956. Т. 7. С. 161–165.
4. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
5. Нездолий В.К., Кириллов П.И. Покатная миграция и распределение ранней молоди карповых рыб в реках Держе и Шоше // Вопросы морфологии и экологии животных. Тверь: Твер. гос. ун-т, 1997. С. 12–34.
6. Павлов Д.С. Биологические основы управления поведением рыб в потоке воды. М.: Наука, 1979. 319 с.
7. Павлов Д.С., Костин В.В., Пономарева В.Ю. Поведенческая дифференциация сеголеток черноморской кумжи Salmo trutta labrax: реореакция в год, предшествующий смолтификации // Вопр. ихтиологии. 2010. Т. 50. № 2. С. 251−261.
8. Павлов Д.С., Лупандин А.И. Реакции рыб на потоки с различной степенью турбулентности // Докл. РАН. 1994. Т. 339. № 3. С. 427–430.
9. Павлов Д.С., Павлов Е.Д., Костин В.В., Ганжа Е.В. Реореакция молоди радужной форели при воздействии сурфагона // Онтогенез. 2016. Т. 47. № 2. С. 110–116.
10. Павлов Д.С., Пономарева В.Ю., Веселов А.Е., Костин В.В. Реореакция как один из механизмов формирования фенотипических группировок сеголеток атлантического лосося Salmo salar // Вопр. ихтиологии. 2010. Т. 50. № 4. С. 548–553.
11. Павлов Д.С., Скоробогатов М.А. Миграции рыб в зарегулированных реках. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 413 с.
12. Павлов Е.Д., Ганжа Е.В., Пономарева В.Ю. и др. Влияние метилтестостерона на физиологическое состояние и реореакцию радужной форели Parasalmo mykiss (= Oncorhynchus mykiss) при неблагоприятных условиях содержания // Вопр. ихтиологии. 2017 (в печати).
13. Поддубный А.Г., Малинин Л.К. Миграции рыб во внутренних водоемах. М.: Агропромиздат, 1988. 224 с.
14. Поддубный А.Г. Экологическая топография популяций рыб в водохранилищах. Л.: Наука, 1971. 312 с.
15. Пономарева В.Ю. Выбор жизненной стратегии у молоди черноморской кумжи Salmo trutta labrax при разной продолжительности обитания у дна и в толще воды // Поволжск. экол. журн. 2014. Вып. 4. С. 45-49.
16. Пономарева В.Ю. Поведенческие механизмы внутрипопуляционной дифференциации молоди некоторых лососевых рыб: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 2014. 28 с.
17. Kostin V.V., Stolbunov I.A. Type of roach Rutilus rutilus (L.) reoreaction in the early ontogenesis as a factor determining its distribution // Inland Water Biology. 2016. V. 9. № 2. P. 167–171.
18. Kostin V.V., Zvezdin A.O., Pavlov D.S. et al. Comparison of behavioral and physiological biochemical indices in fingerlings roach Rutilus rutilus from river Ild and Ild gulf of Rybinsk reservoir // Inland Water Biology. 2016. V. 9. № 3. P. 315–323.
19. Pavlov D.S., Kostin V.V., Zvezdin A.O., Ponomareva V.Yu. On Methods of Determination of the Rheoreaction Type in Fish // J. Ichthyol. 2010. V. 50. № 11. P. 977–984.
20. Pavlov D.S. Lupandin A.I., Kostin V.V. et al. Migration of the Atlantic Salmon (Salmo salar) under the regulated Flow of the Tuloma River (Kola Peninsula) // J. Ichthyol. 2001. V. 41. Suppl. 2. P. 180–224.
21. Silva A., Saburenkov E.N. A study of the role of imitation in the school of Leucaspius delineatus Heckel moving in a water flow // Vopr. Ikhtiol. 1978. V. 183. P. 561–564.
22. Sykes G.E., Johnson Ch.J., Shrimpton J.M. Temperature and Flow Effects on Migration Timing of Chinook Salmon Smolts // Trans. Amer. Fish. Soc. 2009. V. 138. № 6. P. 1252–1265.
23. Sykes G.E., Shrimpton J.M. Effect of temperature and current manipulation on smolting in Chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha): the relationship between migratory behaviour and physiological development // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2010. V. 67. P. 191–201.
24. Zvezdin A.O., Pavlov D.S., Kostin V.V. On the mechanism of orientation and navigation of sockeye salmon underyearlings (Oncorhynchus nerka Walb.) during feeding migration in the inlet–lake–outlet system // Inland Water Biology. 2015. V. 8. №. 3. P. 287–295.
25. Zydlewski G.B., Haro A., McCormick S.D. Evidence for cumulative temperature as an initiating and terminating factor in downstream migratory behavior of Atlantic salmon (Salmo salar) smolts // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2005. V. 62. № 1. P. 68–78.
26. Zydlewski G.B., Stich D.S., McCormick S.D. Photoperiod control of downstream movements of Atlantic salmon Salmo salar smolts // J. Fish Biol. 2014. V. 85. № 4. P. 1023–1041.
О. А. Ермаков*, М. А. Лёвина**, С. В. Титов*, Б. А. Лёвин**
мтДНК-идентификация двух широко распространенных видов плотвы (Cyprinidae, Rutilus) с перекрывающимся ареалом.
* Пензенский государственный университет, 440026, Пенза, ул. Красная, 40
** Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742, пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: oaermakov@list.ru
Разработаны простые и быстрые тест-системы с использованием методов мультиплексной полимеразной цепной реакции и рестрикционного анализа для идентификации двух широко распространенных видов плотвы с перекрывающимися ареалами – Rutilus rutilus (Linnaeus) и R. lacustris (Pallas). Анализ основан на изменчивости первичной структуры митохондриальных маркеров – первой субъединицы гена цитохром оксидазы и гена цитохрома б и позволяет идентифицировать виды, минуя стадию секвенирования.
Ключевые слова: обыкновенная плотва Rutilus rutilus, сибирская плотва Rutilus lacustris, цитохром оксидаза, цитохром б, тест-система.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Берг Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. Ч. 2. С. 469–925.
2. Богуцкая Н.Г., Насека А.М. Каталог бесчелюстных и рыб пресных и солоноватых вод России с номенклатурными и таксономическими комментариями. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2004. 389 с.
3. Лёвин Б.А., Лёвина М.А. О видовом статусе и филогенетическом положении плотвы рода Rutilus Рыбинского водохранилища // Рыбы Рыбинского водохранилища: популяционная динамика и экология. Ярославль: Филигрань, 2015. С. 265–270.
4. Aljanabi S.M., Martinez I. Universal and rapid salt-extraction of high genomic DNA for PCR-based techniques // Nucl. Acids Res. 1997. V. 25. P. 4692–4693.
5. Geiger M.F., Herder M.T., Monaghan V. et al. Spatial heterogeneity in the Mediterranean Biodiversity Hotspot affects barcoding accuracy of its freshwater fishes // Mol. Ecol. Resources. 2014. V. 14. № 6. P. 1210–1221. DOI: 10.1111/1755–0998.12257.
6. Ketmaier V., Bianco P.G., Dürand J.D. Molecular systematics, phylogeny and biogeography of roaches (Rutilus, Teleostei, Cyprinidae) // Mol. Phylogen. and Evol. 2008. V. 49. P. 362–367. DOI:10.1016/j.ympev.2008.07.012
7. Kotlik P., Markova S., Choleva L. et al. Divergence with gene flow between Ponto-Caspian refugia in an anadromous cyprinid Rutilus frisii revealed by multiple gene phylogeography // Mol. Ecol. 2008. V. 17. № 4. P. 1076–1088. DOI: 10.1111/j.1365-294X.2007.03638.x
8. Larmuseau M.H.D., Freyhof J., Volckaert F.A.M., Van Houdt J.K.J. Matrilinear phylogeography and demographical patterns of Rutilus rutilus: implications for taxonomy and conservation // J. Fish Biol. 2009. V. 75. P. 332–353. DOI:10.1111/j.1095-8649.2009.02322.x
9. Levin B.A., Simonov E.P., Ermakov O.A. et al. Phylogeny and phylogeography of the roaches, genus Rutilus (Cyprinidae), at the Eastern part of its range as inferred from mtDNA analysis // Hydrobiologia. 2016. (in press).
10. Palumbi S.R. Nucleic acids II: The polymerase chain reaction. // Molecular systematics. Massachusets: Sinauer Assoc., 1996. P. 205–247.
11. Perdices A., Doadrio I. The molecular systematics and biogeography of the European cobitids based on mitochondrial DNA sequences // Mol. Phylogen. and Evol. 2001. V. 19. № 3. P. 468–478. DOI: 10.1006/mpev.2000.0900.
12. Triantafyllidis A., Bobori D., Koliamitra C. et al. DNA barcoding analysis of fish species diversity in four north Greek lakes // Mitochondrial DNA. 2011. V. 22. Supp. 1. P. 37–42. DOI: 10.3109/19401736.2010.542242.
13. Tsoumani M., Georgiadis A., Giantsis I.A. et al. Phylogenetic relationships among Southern Balkan Rutilus species inferred from cytochrome b sequence analysis: Micro-geographic resolution and taxonomic implications // Biochem. Syst. and Ecol. 2014. V. 54. P. 172–178. DOI:10.1016/j.bse.2014.02.006.
