Журнал "Биология внутренних вод"
№ 4 за 2016 год
Е. А. Мнацаканова
Находка Ascomorpha ovalis (Bergendal, 1892) (Rotifera, Gastropodidae), индикатора олиготрофии в озере Глубокоe (Московская обл.).
Московский государственный университет, 119991 Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12
e-mail: mnatsakan@yandex.ru
Приведены данные о первой находке коловратки Ascomorpha ovalis (Bergendal, 1892) в пелагиали оз. Глубокое (Московская обл.) в июне 2010 г. Исследования зоопланктона озера начаты в 1897 г. и продолжены авторами с 2004 г., однако данный вид никогда ранее не регистрировали. Плотность популяции в июне составляла 25 экз./л в расчете на слой воды 0–10 м. Исследования 2011–2012 гг. показали, что вид не исчез из состава планктона и закрепился в озере. Вид A. ovalis относится к индикаторам олиготрофных вод. Наряду с обнаруженной ранее коловраткой Gastropus hyptopus (Ehrenberg, 1838), также индикатором олиготрофных вод, появление и закрепление в водоеме Ascomorpha ovalis свидетельствует о продолжающейся тенденции к олиготрофизации пелагиали оз. Глубокое.
Ключевые слова: коловратки, биоиндикация, озеро Глубокое, олиготрофизация.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андроникова И.Н. Структурно-функциональная организация зоопланктона озерных экосистем разных трофических типов. СПб.: Наука, 1996. 189 с.
2. Коровчинский Н.М., Бойкова О.С. Пелагический рачковый зоопланктон озера Глубокого в 1999–2008 гг. и некоторые итоги его многолетних наблюдений // Тр. Гидробиол. cт. на Глубоком озере. М.: Toварищество науч. изданий КМК, 2009. T. 10. С. 39–50.
3. Кутикова Л.А. Коловратки фауны СССР. Л.: Наука, 1970. 744 с.
4. Матвеева Л.К. Многолетние изменения сообщества планктонных коловраток мезотрофного озера: Дис. … канд. биол. наук. М., 1986. 228 с.
5. Мнацаканова Е.А. Первая находка Gastropus hyptopus (Ehrenberg, 1838), (Rotatoria, Ploimida), в озере Глубоком // Тр. Гидробиол. ст. на Глубоком озере. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2009. T. 10. С. 84–89.
6. Мнацаканова Е.А., Полищук Л.В. Являются ли изменения в сообществе коловраток озера Глубокого надежным индикатором антропогенных воздействий? Анализ с использованием логистической регрессии // Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем. СПб.: ЛЕМА, 2007. C. 255–261.
7. Мяэметс А.Х. Изменения зоопланктона // Антропогенное воздействие на малые озера. Л.: Наука, 1980. С. 54–64.
8. Matveeva L.K. Pelagic rotifers of Lake Glubokoe from 1897 to 1894 // Hydrobiologia. 1986. V. 141. P. 45–54.
9. Rotifera 6. The Asplanchnidae, Gastropodidae, Lindiidae, Microcodinidae, Synchaetidae, Trochosphaeridae and Filinia. Guides to the Identification of the Microinvertebrates of the Continental Waters of the World. Leiden: Backhuys Publ. BV, 2002. 264 p.
10. Segers H. Annotated checklist of the rotifers (Phylum Rotifera) with notes on nomenclature, taxonomy and distribution // Zootaxa. 2007. № 1564. P. 1–104.
11. Sladecệk V. Rotifers as indicators of water quality // Hydrobiologia. 1983. V. 100. P. 169–201.
Ж. Н. Дугаров*, Н. М. Пронин*, М. Д. Батуева*, Т. Г. Бурдуковская*, А. Н. Матвеев**, С. В. Пронина***, Л. Д. Сондуева*
Фауна паразитов налима Lota lota (L.) (Gadiformes: Lotidae) водоемов Байкальской рифтовой зоны.
*Институт общей и экспериментальной биологии СО РАН, 670047 Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6
**Иркутский государственный университет, 664003 Иркутск, ул. Сухэ-Батора, 5
***Бурятский государственный университет, 670000 Улан-Удэ, ул. Смолина, 24а
e-mail: zhar-dug@biol.bscnet.ru
Фауна паразитов налима Байкальской рифтовой зоны (озер Байкал и Хубсугул, Ципо-Ципиканских и Куандо-Чарских озер) представлена 46 видами из 11 классов. Видовое богатство фауны паразитов налима уменьшается в ряду оз. Байкал (37 видов) > Ципо-Ципиканские озера (18 видов) > оз. Хубсугул (15 видов) > Куандо-Чарские озера (11 видов). По результатам кластерного анализа видового состава фауны паразитов популяции налима из исследованных озер образуют две большие группы. Первая группа объединяет популяции хозяина из Ципо-Ципиканских и Куандо-Чарских озер, вторая – из заливов и устьев притоков озер Байкал и Хубсугул. На примере налима продемонстрирована перспективность использования паразитологических сведений в комплексе с молекулярно-генетическими и палеонтологическими данными для анализа эволюционной истории животных.
Ключевые слова: фауна паразитов, налим, Байкальская рифтовая зона, озера Байкал и Хубсугул, Ципо-Ципиканские и Куандо-Чарские озера.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2001. Т. 1: Озеро Байкал. Кн. 1. 832 с.
2. Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2004. Т. 2: Озеро Байкал. Кн. 2. 1679 с.
3. Атлас озера Хубсугул. Монгольская народная республика. М.: Главное управление геодезии и картографии при Совете министров СССР, 1989. 120 с.
4. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2003. Т. 2. 253 с.
5. Балданова Д.Р., Пронин Н.М. Скребни (тип Acanthocephala) Байкала: Морфология и экология. Новосибирск: Наука, 2001. 158 с.
6. Вознесенская Н.Г. Гельминтофауна рыб озер Орон и Капылючикан Ципо-Ципиканской озерной системы // Болезни и паразиты рыб Ледовитоморской провинции (в пределах СССР). Свердловск: Средне-Уральское книжн. изд-во, 1976. С. 43–49.
7. Догель В.А. Паразитофауна и окружающая среда. Некоторые вопросы экологии паразитов пресноводных рыб // Основные проблемы паразитологии рыб. Л.: Изд-во Ленингр. гос. ун-тa, 1958. С. 9–54.
8. Догель В.А., Боголепова И.И. Паразитофауна рыб Байкала // Тр. Байкальск. лимнол. ст. 1957. Т. 15. С. 427–464.
9. Жохов А.Е., Пугачева М.Н. Список паразитических Protozoa и Metazoa налима Lota lota // Паразитология. 2012. Т. 46. Вып. 1. С. 34–61.
10. Заика В.Е. Паразитофауна рыб озера Байкал. М.: Наука, 1965. 106 с.
11. Кожов М.М. Очерки по байкаловедению. Иркутск: Вост.-Сиб. кн. изд-во, 1972. 254 с.
12. Коновалов С.М. Дифференциация локальных стад нерки Oncorhynchus nerca (Walbaum). Л.: Наука, 1971. 229 с.
13. Ляйман Э.М. Паразитические черви рыб озера Байкал // Тр. Байкальск. лимнол. ст. 1933. Т. 4. С. 5–98.
14. Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир, 1992. 184 с. (Magurran A.E. Ecological diversity and its measurement. L.; Sydney: Croom Helm, 1983. 184 p.).
15. Природные условия и ресурсы Прихубсугулья в МНР. М.: Недра, 1976. 355 с.
16. Пронин Н.М. Паразитофауна рыб водоемов Чарской котловины (Забайкальский Север) // Уч. зап. Читинск. пед. ин-та. Чита: Изд-во Читинск. гос. пед. ин-та, 1966. С. 120–159.
17. Пронин Н.М. Рыбы Верхнечарской котловины (Забайкальский Север) // Тр. Бурятск. ин-та естеств. наук Бурятск. филиала Сиб. отд. АН СССР. 1977. Вып. 15: Фаунистические и экологические исследования Забайкалья. С. 110–140.
18. Пронин Н.М., Литвинов А.Г. Характеристика видового состава рыб // Экология озера Гусиное. Улан-Удэ: Изд-во Бурятск. науч. центра СО РАН, 1994. С. 93–99.
19. Пугачев О.Н. Генезис паразитофауны лососевых рыб Евразии // Паразитология. 1980. Т. 14. Вып. 5. С. 403–410.
20. Пугачев О.Н. Паразиты пресноводных рыб северо-востока Азии. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1984. 156 с.
21. Русинек О.Т. Паразиты рыб озера Байкал (фауна, сообщества, зоогеография, история формирования). М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. 571 c.
22. Световидов А.Н. Фауна СССР. Рыбы: Трескообразные. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1948. Т. 9. Вып. 4. 221 с.
23. Скрябин А.Г. Рыбы Баунтовских озер Забайкалья. Новосибирск: Наука, 1977. 232 с.
24. Сорокин В.Н. Налим озера Байкал. Новосибирск: Наука, 1976. 144 с.
25. Тармаханов Г.Д., Некрасов А.В., Жатканбаева Д. Сравнительный анализ фауны диплостомид моллюсков, рыб и водоплавающих птиц бассейна оз. Байкал // Паразиты и болезни гидробионтов Ледовитоморской провинции. Новосибирск: Наука, 1990. С. 107–111.
26. Томилов А.А. Материалы по гидробиологии некоторых глубоководных озер Олекмо-Витимской горной страны // Тр. Иркутск. ун-та. Сер. биол. 1954. Т. 11. 88 с.
27. Тюльпанов М.А. К истории проникновения налима в пресные воды // Проблемы экологии. Томск: Изд-во Томск. гос. ун-та, 1967. Т. 1. С. 185–196.
28. Van Houdt J.K., De Cleyn L., Perretti A., Volckaert F.A.M. A mitogenic view on the evolutionary history of the Holarctic freshwater gadoid, burbot (Lota lota) // Mol. Ecol. 2005. V. 14. P. 2445–2457.
29. Van Houdt J.K., Hellemans B., Volckaert F.A.M. Phylogenetic relationships among Palearctic and Nearctic burbot (Lota lota): Pleistocene extinctions and recolonization // Mol. Phylogenet. Evol. 2003. V. 29. P. 599–612.
О. А. Тумилович
Личинки стрекоз Калининградской области: видовой состав и некоторые особенности распространения.
Калининградский государственный технический университет, 236022 Калининград, Советский проспект, 1
e-mail: Levente@rambler.ru
Приведён список личинок 27 видов стрекоз, из них 14 – из подотряда Anisoptera и 13 – Zygoptera. К константным видам стрекоз области относятся Libellula quadrimaculata, Enallagma cyathigerum и Erythromma najas, к фоновым – Coenagrion hastulatum, C. lunulatum, C. pulchellum, Ischnura elegans, Platycnemis pennipes, Lestes virens и Libellula depressa, к редким – Lestes sponsa, Libellula fulva, Gomphus flavipes, G. vulgatissimus, Sympetrum flaveolum, Aeshna viridis, Ae. cyanea, Ae. grandis, Ae. mixta, Calopteryx splendens, C. virgo и Ophiogomphus cecilia.
Ключевые слова: Odonata, личинки, видовой состав, особенности распространения, Калининградская область.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Баканов А.И. Количественная оценка доминирования в экологических сообществах // Количественные методы экологии и гидробиологии. Тольятти: Ин-т экологии волжск. бассейна РАН, 2005. С. 37–67.
2. Попова А. Н. Личинки стрекоз фауны СССР (Odonata). М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1953. 252 с.
3. Семенченко В.П. Принципы и системы биоиндикации текучих вод. Минск: Орех, 2004. 125 с.
4. Скворцов В.Э. Стрекозы Восточной Европы и Кавказа: атлас-определитель. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. 623 с.
5. Спурис З. Д. Отряд Odonata – стрекозы // Определитель насекомых Европейской части СССР. Низшие, древнекрылые, с неполным превращением. М.; Л.: Наука, 1965. Т. 1. С. 137–161.
6. Станионите А.П. Фауна личинок стрекоз в водных бассейнах окрестностей города Вильнюс // Тр. АН Лит.ССР. 1962. № 1(27). Сер. В. С. 153–160.
7. Таранова В.М. Сезонное развитие фауны стрекоз (Odonata) прибрежья Рыбинского водохранилища и прилегающих к нему водоёмов // Биология, морфология и систематика водных беспозвоночных. Л.: Наука, 1980. С. 145–153.
8. Тумилович О.А. Одонатофауна национального парка “Куршская коса” // Значения та перспективи стацiонарних дослiджень для збережения бiорiзноманiття: Матер. мiжнар. наук. конф. Львiв, 2008. С. 410–411.
9. Тумилович О.А. О фауне стрекоз Калининградской области // Уч. зап. Казан. гос. ун-та. 2009. Т. 151. С. 192–196.
10. Харитонов А.Ю. Стрекозы как массовые компоненты водных биоценозов // Биологические ресурсы Западной Сибири и их охрана: Матер. науч. конф. молодых учёных. Новосибирск, 1975. С. 63–64.
11. Bernard R., Buczyńsky P., Tończyk G. Present state, threats and conservation of dragonflies (Odonata) in Poland // Nat. Conserv. 2002. V. 59. P. 53–71.
12. Bernard R., Buczyńsky P., Tończyk G. Atlas rozmieszczeniaważek (Odonata) w Polsce. Poznań: Bogucki Wydawnictwo Naukowe, 2009. 256 s.
13. Bernard R., Ivinskis P. Orthetrumbrunneum (Fonscolombe, 1837), a new dragonfly species in Lithuania (Odonata: Libellulidae) // Acta Zool. Lituanica. 2004. V. 114. № 3. P. 31–36.
14. Buczyńsky P., Moroz M.D. Notes on the occurrence of some Mediterranean dragonflies (Odonata) in Belarus // Polish J. Entomol. 2008. V. 77. P. 67–74.
15. Dijkstra K.-D.B., Lewington R. Field guide to the Dragonflies of Britain and Europe. Dorset: British Wildlife Publ., 2006. 320 p.
16. Flenner I. Forest lakes affected by forestry – how resilient are dragonfly communities to logging in Central Sweden. Halmstad: Halmstad Univ. School of Busines and Engineering, 2007. 16 s.
17. Hassall Ch., Thompson D.J., French G.C., Harvey I.F. Historical changes in the phenology of British Odonata are related to climate // Global Change Biol. 2007. V. 13. № 5. P. 933–941.
18. Le Roi O. Die Odonaten von Ostpreussen // Schriften der Physikalisch-ökonomischen Gesellschaft Konigsberg. Leipzig; B., 1911. Bd 52. S. 13–30.
19. Tończyk G. Dragonfly (Odonata) of the Nibieskie Źródła Nature Reserve near Tomasźowa Mazowieckego (Central Poland) // Poznan. Acta Univ. Lodsiensis. Folia Limnol. 2000. V. 7. P. 79–85.
20. Tumilovich O. New species of Odonatofauna of the Kaliningrad region // Biodiversity, protection and prospects of Baltic seashore habitats: Abstract. Klaipèda, 2009. P. 49–50.
С. И. Генкал, М. C. Куликовский
Морфология и распространение в России североамериканского вида диатомовой водоросли Aulacoseira pardata English & Potapova.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: genkal@ibiw.yaroslavl.ru
Изучение материалов из оз. Фролиха (Забайкалье) c помощью сканирующей электронной микроскопии позволило выявить новый для флоры России вид диатомовых водорослей Aulacoseira pardata English & Potapova. В популяции этого вида морфометрические признаки отличались от приведенных в описании, что свидетельствует об их бόльшей вариабельности. Показано, что A. pardata отличается от близкого вида A. septentrionalis (Camburn & Charles) Genkal & Kulikovskiy по строению шипов, форме и размерам ареол на загибе створки. В оз. Фролиха зафиксирован и новый для этого водоема, а также Прибайкалья и Забайкалья вид A. septentrionalis.
Ключевые слова: Забайкалье, оз. Фролиха, диатомовые водоросли, морфология, Aulacoseira pardata, A. septentrionalis.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Балонов И.М. Подготовка водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–89.
2. Генкал С.И. Aulacosira italica, A. valida, A. subarctica и A. volgensis sp. nov. (Bacillariophyta) в водоемах России // Ботан. журн. 1999. Т. 84. № 5. С. 40–46.
3. Генкал С.И., Куликовский М.С., Дорофеюк Н.И. Центрические диатомовые (Centrophyceae) сфагнового болота Нур (Монголия) // Ботан. журн. 2009. Т. 94. № 11. С. 1700–1705.
4. Генкал С.И., Лупикина Е.Г. Новые и редкие виды Aulacosira (Bacillariophyta) из кальдерных озер Камчатки // Ботан. журн. 1998. Т 83. № 2. С. 104–110.
5. Генкал C.И., Охапкин А.Г. Материалы к флоре диатомовых водорослей (Сentrophyceae) карстового озера Святое Дедовское (Нижегородская область) // Поволжск. экол. журн. 2014. № 3. C. 311–319.
6. Генкал С.И., Трифонова И.С. Интересные и новые для России представители рода Aulacosira (Bacillariophyta) // Ботан. журн. 2002. Т. 87. № 6. С. 117-122.
7. Поповская Г.И., Генкал С.И. Материалы к флоре диатомовых водорослей (Centrophyceae) озер Прибайкалья и Забайкалья // Биология внутр. вод. 2008. № 4. С. 3–11.
8. Camburn K.E., Charles D.F. Diatoms of low-alkalinity in the Northeastern United State// Acad. Nat. Sci. Philadelphia. Sp. Publ. 2000. № 18. 152 p.
9. English J., Potapova M. Aulacoseira pardata sp. nov., A. nivalis comb. nov., A. nivaloides comb. et stat. nov., and their occurrences in western North America // Proc. Acad. Nat. Sci. Philadelphia. 2009. № 158. P. 37–48.
10. Genkal S.I., Kulikovskiy M.S. Centric diatoms from Lake Frolikha (Transbaikal Area) and peculiarities of distribution of some taxa in Asia // Inland Water Biology. 2014. V. 7. № 3. P. 201–210.
11. Edlund M.B., Stoermer E.F., Taylor Ch.,M. Aulacoseira skvortzowii sp. nov. (Bacillariophyta), a poorly understood diatom from Lake Baikal, Russia // J. Phycol. 1996. V. 32. P. 165–175.
12. Houk V. Atlas of freshwater centric diatoms with a brief key and descriptions. Part I. Melosiraceae, Orthoseiraceae, Paraliaceae and Aulacoseiraceae // Czech. Phycol. Suppl. 2003. V. 1. P. 1–112.
13. Houk V., Klee R. Atlas of freshwater centric diatoms with a brief key and descriptions Part II. Melosiraceae and Aulacoseiraceae (Supplement to Part I) // Fottea, Olomouc. 2007. V. 7. № 2. P. 85–255.
14. Kulikovskiy M.S., Kuznetsova I.V. Biogeography of Bacillariophyta. Main concepts and approaches // Int. J. Algae. 2014. V. 16. № 3. P. 207–228.
А. И. Копылов, Д. Б. Косолапов, Е. А. Заботкина, Т. С. Масленникова
Распределение вирусов в водной толще Рыбинского водохранилища в подледный период и их роль в смертности гетеротрофных бактерий.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: kopylov@ibiw.yaroslavl.ru
На глубоководном и мелководных участках Рыбинского водохранилища в подледный период определено количество вирио- и бактериопланктона и оценена роль вирусов в инфицировании и смертности гетеротрофного бактериопланктона. При температуре воды 0.3–0.9ºC численность планктонных вирусных частиц и бактерий изменялась в пределах (37.1–84.1) × 10⁶ (в среднем (57.3 ± 2.1) × 10⁶) частиц/мл и (2.50–6.11) × 10⁶ (в среднем (3.66 ± 0.16) × 10⁶) кл./мл соответственно. Отношение количества вирусов и бактерий изменялось от 8.8 до 27.9, в среднем 16.5 ± 0.7. Видимые инфицированные клетки составляли 0.3–5.0%, в среднем 1.5 ± 0.2% численности бактериопланктона. Внутри инфицированных бактериальных клеток находилось от 5 до 107 (в среднем 17 ± 4) зрелых вирусных частиц. Вирус-индуцированная смертность бактерий была в среднем 13.0 ± 1.9% (пределы 2–55%) их суточной продукции, что свидетельствует о существенной роли вирусов в регулировании численности и продукции бактериопланктона водохранилища в подледный период.
Ключевые слова: планктонные вирусы, гетеротрофные бактерии, вирус-индуцированная смертность бактерий, подледный период, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Дрюккер В.В., Дутова Н.В. Бактериофаги как новое трофическое звено в экосистеме глубоководного озера Байкал // ДАН. 2009. Т. 427. № 2. С. 277–281.
2. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А. Вирусы в планктоне Рыбинского водохранилища // Микробиология. 2007. Т. 76. № 6. С. 879–997.
3. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А. Влияние вирусов на гетеротрофный бактериопланктон и пикоцианобактерий водохранилищ // ДАН. 2011. Т. 437. № 1. С. 139–141.
4. Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Лабораторное руководство. Л.: Наука, 1974. 194 с.
5. Стройнов Я.В., Романенко А.В., Масленникова Т.С., Копылов А.И. Вирио- и бактериопланктон малой реки: влияние вирусов на смертность гетеротрофных бактерий // Биология внутр. вод. 2011. № 3. С. 22–29.
6. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. техн. ун-та, 2001. 427 с.
7. Binder B. Reconsidering the relationship between virally induced bacterial mortality and frequency of infected cells // Aquat. Microb. Ecol. 1999. V. 18. P. 207–215.
8. Bratbak G., Thingstad F., Heldal M. Viruses and the microbial loop // Microb. Ecol. 1994. V. 28. P. 209–221.
9. Caron D.A. Technique for enumeration of heterotrophic and phototrophic nanoplankton, using epifluorescence microscopy and comparison with other procedures // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. № 2. P. 491–498.
10. Fischer U.R., Velimirov B. High control of bacterial production by viruses in a eutrophic oxbow lake // Aquat. Microb. Ecol. 2002. V. 27. P. 1–12.
11. Fuhrman J.A. Marine viruses and their biogeochemical and ecological effects // Nature. 1999. V. 399. P. 541–548.
12. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green for rapid epifluorescence count of marine viruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. P. 113–118.
13. Noble R.T., Middelboe M., Fuhrman J. Effects of viral enrichment on the mortality and growth of heterotrophic bacterioplankton // Aquat. Microb. Ecol. 1999. V. 18. P. 1–13.
14. Norland S. The relationship between biomass and volume of bacteria // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton: Lewis Publ., 1993. P. 303–308.
15. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
16. Sherr E.B., Sherr B.F. Protozoan grazing rates via uptake fluorescently labelled prey // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton: Lewis Publ., 1993. P. 695–701.
17. Simek K., Pernthaler J., Weinbauer M.G. et al. Changes in bacterial community composition and viral mortality rates associated with enhanced flagellate grazing in a mesoeutrophic reservoir // Appl. Environ. Microbiol. 2001. V. 67. P. 2723–2733.
18. Thingstad T.F. Elements of a theory for the mechanisms controlling abundance, diversity, and biogeochemical role of lytic bacterial viruses in aquatic systems // Limnol., Oceanogr. 2000. V. 46. № 6. P. 1320–1328.
19. Tijdens M., Van de Waal D.B., Slovakova H. et al. Estimates of bacterial and phytoplankton mortality caused by viral lysis and microzooplankton grazing in shallow eutrophic lake // Freshwater Biol. 2008. V. 53. P. 1126–1141.
20. Weinbauer M.G. Ecology of prokaryotic viruses // FEMS Microbiol. Rev. 2004. V. 28. P. 127–181.
21. Wommack K.E., Colwell R.R. Virioplankton: viruses in aquatic ecosystems // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64. P. 69–114.
С. И. Сиделёв*, Л. Г. Корнева**, В. В. Соловьева**, А. А. Зубишина*, Д. Н. Плигин*
Молекулярно-генетическая идентификация и сезонная сукцессия токсигенных цианобактерий в фитопланктоне Рыбинского водохранилища.
*Ярославский государственный университет им. П.Г. Демидова, 150057 г. Ярославль, прoeзд Матросова, 9
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: Sidelev@mail.ru
Получены первые сведения о гепато- и нейротоксигенных цианобактериях в фитопланктоне Рыбинского водохранилища. Разные методы выявления токсигенных цианобактерий (световая микроскопия, ПЦР, иммуноферментный анализ) показали идентичные результаты. В водохранилище обнаружены гепатотоксины микроцистины и впервые – нейротоксины сакситоксины, присутствие цилиндроспермопсина и анатоксина-а не выявлено. В суммарной ДНК фитопланктона зафиксированы гены mcyE и stxA, ответственные за биосинтез микроцистинов и сакситоксинов соответственно. Идентифицировано присутствие mcyE ген-содержащих цианобактерий трех родов: Microcystis (M. aeruginosa (Kütz.) Kütz., M. viridis (A. Braun in Rabenh.) Lemm.), Planktothrix (P. agardhii (Gom.) Anag. et Kom.) и Dolichospermum (Anabaena). Выдвинута гипотеза о наличии в Рыбинском водохранилище сакситоксин-продуцирующих популяций Dolichospermum (Anabaena).
Ключевые слова: микроцистины, сакситоксины, цилиндроспермопсин, анатоксин-а, гены mcyE, stxA, аоаА, anaC, цианобактерии, фитопланктон, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Корнева Л.Г. Фитопланктон Рыбинского водохранилища: состав, особенности распределения, последствия эвтрофирования // Современное состояние экосистемы Рыбинского водохранилища. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 50–113.
2. Корнева Л.Г. Формирование фитопланктона водоемов бассейна Волги под влиянием природных и антропогенных факторов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. СПб., 2009. 48 с.
3. Корнева Л.Г., Минеева Н.М., Елизарова В.А. и др. Экология фитопланктона Рыбинского водохранилища. Тольятти: Изд-во Самарск. науч. центра РАН, 1999. 264 с.
4. Корнева Л.Г., Соловьева В.В., Русских Я.В., Чернова Е.Н. Состояние фитопланктона и содержание цианотоксинов в Рыбинском, Горьковском и Чебоксарском водохранилищах в период аномально жаркого лета 2010 г. // Вода: химия и экология. 2014. № 8. С. 24–29.
5. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 239 с.
6. Сиделев С.И., Бабаназарова О.В., Зубишина А.А. и др. Токсигенные цианобактерии и содержание цианотоксинов в водоемах Верхней Волги // Водоросли: проблемы таксономии, экологии и использование в мониторинге: Матер. III Междунар. науч. конф. Ярославль, 2014. С. 186–188.
7. Сиделев С.И., Зубишина А.А., Бабаназарова О.В. и др. Мониторинг содержания цианотоксинов микроцистинов в водоемах Верхней Волги: молекулярно-генетический и аналитический подходы // Вода: химия и экология. 2014. № 8. С. 88–94.
8. Apeldoorn M.E., Egmond H.P., Speijers G.J.A., Bakker G.J.I. Toxins of cyanobacteria // Mol. Nutr. Food Res. 2007. V. 51. P. 7–60.
9. Araoz R., Molgo J., Tandeau de Marsac N. Neurotoxic cyanobacterial toxins // Toxicon. 2010. V. 56. P. 813–828.
10. Ballot А., Fastner J., Wiedner C. Paralytic shellfish poisoning toxin-producing cyanobacterium Aphanizomenon gracile in Northeast Germany // Appl. Environ. Microbiol. 2010. V. 76. P. 1173–1180.
11. Barón-Sola Á., Ouahid Y., Campo F. Detection of potentially producing cylindrospermopsin and microcystin strains in mixed populations of cyanobacteria by simultaneous amplification of cylindrospermopsin and microcystin gene regions // Ecotoxicol. and Environ. Safety. 2012. V. 75. P. 102–108.
12. Chorus I. Current approaches to cyanotoxin risk assessment, risk management and regulations in different countries. Dessau: Fed. Environ. Agency (Umweltbundesamt), 2012. 147 p.
13. Chorus I., Bartram J. Toxic cyanobacteria in water. A guide to their public health consequences, monitoring and management. L.: E &FN Spon, 1999. 416 р.
14. Clemente Z., Busato R.H., Riverio C.A. et al. Analyses of paralytic shellfish toxins and biomarkers in a southern Brazilian reservoir // Toxicon. 2010. V. 55. P. 396–406.
15. Mankiewicz-Boczek J., Urbaniak M., Romanowska-Duda Z., Izydorczyk K. Toxic cyanobacteria strains in lowland dam reservoir (Sulejow res., Central Poland): amplification of mcy genes for detection and identification // Pol. J. Ecol. 2006. V. 54. № 2. P. 171–180.
16. Neilan B., Jacobs D., Del Dot T. et al. rRNA sequences and evolutionary relationships among toxic and nontoxic cyanobacteria of the genus Microcystis // Int. J. Syst. Bacteriol. 1997. V. 47. № 3. P. 693–697.
17. Neilan B., Jacobs D., Goodman A.E. Genetic diversity and phylogeny of toxic cyanobacteria determined by DNA polymorphisms within the Phycocyanin locus // Appl. Environ. Microbiol. 1995. V. 61. P. 3875–3883.
18. Rantala A., Rajaniemi-Wacklin P., Lyra C. et al. Detection of microcystin-producing cyanobacteria in Finnish lakes with genus-specific microcystin synthetase gene E (mcyE) PCR and associations with environmental factors // Appl. Environ. Microbiol. 2006. V. 72. P. 6101–6110.
19. Rantala-Ylinen A., Känä S., Wang H. et al. Anatoxin-a synthetase gene cluster of the cyanobacterium Anabaena sp. strain 37 and molecular methods to detect potential producers // Appl. Environ. Microbiol. 2011. V. 77. P. 7271–7278.
20. Rapala J., Robertson A., Negri A.P. et al. First report of saxitoxin in Finnish lakes and possible associated effects on human health // Environ. Toxicol. 2005. V. 20. P. 331–340.
21. Vaitomaa J., Rantala A., Halinen K. et al. Quantitative real-time PCR for determination of microcystin synthetase gene E copy numbers for Microcystis and Anabaena in lakes // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69. P. 7289–7297.
22. Via-Ordorika L., Fastner J., Kurmayer R. et al. Distribution of microcystin-producing and non-microcystin-producing Microcystis sp. in European freshwater bodies: detection of microcystins and microcystin genes in individual colonies // Syst. Appl. Microbiol. 2004. V. 27. P. 592–602.
23. Wörmer L., Cirés S., Agha R. et al. First detection of cyanobacterial PSP (paralytic shellfish poisoning) toxins in Spanish freshwaters // Toxicon. 2011. V. 57. P. 918–921.
Д. С. Павлов*,**, К. Ю. Самойлов*, К. В. Кузищин*, М. А. Груздева*, Л. А. Пельгунова**
Разнообразие жизненных стратегий судака Sander lucioperca (L.) Нижней Волги (по данным анализа микроэлементного состава отолитов).
*Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, 119234 Москва, Ленинские горы, д. 1/12
**Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 117071 Москва, Ленинский проспект, д. 33
e-mail: KK_office@mail.ru
Методом рентгенофлюоресцентного микроанализа изучено содержание Ca²⁺ и Sr²⁺ в отолитах судака из Нижней Волги. Исследована выборка (95 экз.) из участка Волго-Ахтубинской водной системы на удаление ~250–270 км от Каспийского моря. Установлено, что у одной части рыб содержание Sr²⁺ в отолитах низкое, у другой части в отолитах выделяются участки с повышенным содержанием Sr²⁺ – величина соотношений ионов Sr/Ca >6.00 · 10⁻³ и достигает максимальных значений 10.02 · 10⁻³. Рыбы, имеющие низкое содержание Sr²⁺ в отолитах, в течение всей жизни живут в реке. Судаки, у которых содержание Sr²⁺ в отолитах повышено, демонстрируют смену среды обитания, покидая пресные воды для нагула в море. Одни из них вышли в море в возрасте сеголетков, но в последующем вернулись в реку. Жизненный цикл других состоял из серии нескольких последовательных выходов в Северный Каспий и возвратов в р. Волгу. Третью группу судаков представляли рыбы, которые выходили в море после 1–2 лет пребывания в пресной воде и нагуливались в море в течение 1–2 лет без захода в пресные воды. Установлено, что группировка судака Нижней Волги формируется из пресноводных (жилых и реодромных), полупроходных и проходных особей.
Ключевые слова: Sander lucioperca, жизненная стратегия, миграционное поведение, анадромия, резидентность, регистрирующие структуры, микрохимический состав отолитов, рентгенофлюоресцентный анализ.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Белоголова Л.А. Биология и формирование численности молоди полупроходных рыб в Северном Каспии в условиях зарегулированного стока реки Волги: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 1991. 25 с.
2. Белоголова Л.А. Динамика численности и распределения молоди полупроходных рыб в Северном Каспии в период зарегулирования стока Волги // Экология молоди и проблемы воспроизводства каспийских рыб. М.: Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 2001. С. 37–58.
3. Белоголова Л.А. Динамика численности и выживаемость молоди воблы, леща и судака в Северном Каспии в современный период // Рыб. хоз-во. 2010. № 4. С. 69–71.
4. Белый Н.Д. О биологических группах судака Lucioperca lucioperca (L.) // Вопр. ихтиологии. 1965. Т. 5. Вып. 2 (35). С. 279–289.
5. Бугаев В.Ф. Азиатская нерка. М.: Колос, 1995. 464 с.
6. Гордеев Н.А., Ильина Л.К. Особенности естественного воспроизводства популяций рыб в водохранилищах Волжско-Камского каскада // Теоретические аспекты рыбохозяйственных исследований водохранилищ. Л.: Наука, 1977. С. 8–21.
7. Дгебуадзе Ю.Ю., Чернова О.Ф. Чешуя костистых рыб как диагностическая и регистрирующая структура. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2009. 315 с.
8. Дирипаско О.А. Фенетическое разнообразие судака Stizostedion lucioperca Азовского моря // Вопр. ихтиологии. 2004. Т. 44. № 2. С. 249–256.
9. Дмитриева Е.Н. Нерестилища судака Lucioperca lucioperca L. и берша Lucioperca volgensis (Gmelin) в реке Урал // Вопр. ихтиологии. 1974. Т. 14. Вып. 3. С. 934–937.
10. Зиммерман К.Е., Кузищин К.В., Груздева М.А. и др. Опыт определения жизненной стратегии микижи Parasalmo mykiss (Walbaum) (Salmonidae, Salmoniformes) Камчатки на основании анализа соотношения Sr/Ca в отолитах // Докл. РАН. Сер. Общ. биол. 2003. Т. 389. № 2. С. 274–278.
11. Казаков Р.В. Атлантический лосось. СПб.: Наука, 1998. 576 с.
12. Коблицкая А.Ф. Сезонные миграции молоди рыб в низовьях дельты Волги в период, предшествующий зарегулированию стока // Тр. Астрахан. заповед. 1958. Вып. 4. С. 209–235.
13. Кушнаренко А.И., Фомичев О.А., Сидорова М.А. и др. Состояние запасов и прогноз добычи полупроходных рыб на 2005 год // Рыбохозяйственные исследования на Каспии. Результаты НИР за 2003 год. Астрахань: Касп. НИИ рыб. хоз-ва, 2004. С. 293–305.
14. Мина М.В., Клевезаль Г.А. Принципы исследования регистрирующих структур // Успехи соврем. биол. 1970. Т. 70. № 3 (6). С. 341–352.
15. Павлов Д.С., Кузищин К.В., Груздева М.А. и др. Разнообразие жизненной стратегии мальмы Salvelinus malma (Walbaum) (Salmonidae, Salmoniformes) Камчатки: онтогенетические реконструкции по данным рентгенофлуоресцентного анализа микроэлементного состава регистрирующих структур // Докл. РАН. Сер. Общ. биол. 2013. Т. 450. № 2. С. 240–244.
16. Павлов Д.С., Савваитова К.А., Кузищин К.В. и др. Тихоокеанские благородные лососи и форели Азии. М.: Науч. мир, 2001. 199 с.
17. Павлов Д.С., Скоробогатов М.А. Миграции рыб в зарегулированных реках. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 413 с.
18. Попов Н.Н. Формирование популяции судака (Stizostedion lucioperca (L.)) Урало-Каспийского бассейна: Дис. … канд. биол. наук. Атырау, 2014. 150 с.
19. Серебров Л.И. Значение рек дельты Волги для нереста рыб // Вопр. ихтиологии. 1972. Т. 14. Вып. 5. С. 156–160.
20. Стрельников А.С. Состояние популяции судака Stizostedion lucioperca Рыбинского водохранилища в условиях новых коммерческих отношений // Вопр. ихтиологии. 1996. Т. 36. № 4. С. 481–487.
21. Танасийчук В.С. О биологии мальков судака Северного Каспия // Вопр. ихтиологии. 1955. Вып. 3. С. 87–103.
22. Танасийчук В.С. Закономерности формирования численности некоторых каспийских рыб // Тр. Касп. НИИ рыб. хоз-ва. 1957. Т. 13. С. 3–88.
23. Танасийчук В.С. Биология размножения и закономерности формирования численности некоторых каспийских рыб в связи с изменением водности Волги и Урала: Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Л., 1958. 17 с.
24. Танасийчук В.С. Об адаптивных возможностях судака Lucioperca lucioperca (L.) // Вопр. ихтиологии. 1974. Т. 14. Вып. 5 (88). С. 806–813.
25. Трусов В.З. О биологических группах судака в связи с его разведением в водохранилищах // Изв. Всесоюз. НИИ озер. и рыб. хоз-ва. 1958. Т. 14. С. 112–120.
26. Armstrong R.H., Morrow I.E. The Dolli Varden char, Salvelinus malma // Charrs. Salmonid fishes of the genus Salvelinus. Hague: Junk Publ., 1980. P. 99–141.
27. Casselmann J.M. Chemical analyses of the optically different zones in eel otoliths: Proc. of the 1980 North American Eel Conference. Ont. Fish. Tech. Rep. Ontario, 1982. № 4. P. 74–82.
28. Doubleday Z.A., Harris H.H., Izzo C., Gillanders B.M. Strontium randomly substituting for calcium in fish otolith aragonite // Anal. Chem. 2014. V. 86. P. 865–869.
29. Farrell J., Campana S.E. Regulation of calcium and strontium deposition on the otoliths of juvenile tilapia, Oreochromis niloticus // Comp. Biochem. Physiol. 1996. V. 115A. № 2. P. 103–109.
30. Kafemann R., Adlerstein S., Neukamm R. Variation in otolith strontium and calcium ratious as an indicator of life-history strategies of freshwater fish species within a brackish water system // Fish. Res. 2000. V. 46. P. 313–325.
31. Kafemann R., Finn J.E., Thiel R., Neukamm R. The role of freshwater habitats for the reproduction of bream in a brackish water system // Pol. Arch. Hydrobiol. 1998. V. 45. № 2. P. 213–233.
32. Kafemann R., Thiel R., Finn J.E. Die Bedeutung abiotischer Schlusselfaktoren fur die Fischgemeinschaftim Nord-Ostsee-Kanal // Fischokologie. 1998. V. 1. P. 1–20.
33. Kalish J.M. Otolith microchemistry: Validation of the effects of physiology, age and environment on otolith composition // J. Exp. Mar. BioI. Ecol. 1989. V. 132. P. 151–178.
34. Kalish J.M. Use of otolith microchemistry to distinguish the progeny of sympatric anadromous and non-anadromous salmonids // Fish Bull US. 1990. V. 88. № 4. P. 657–666.
35. Klinkhardt M.B., Winkler H.M. Einfluss der Salinitat auf die Befruchtungs und Entwicklungsfahigkeit der Eier von viersusswasserfischharten – Plotz (Rutilus rutilus), Barsch (Perca fluviatilis), Kaulbarsch (Gymnocephalus cernua) und Zander (Stizostedion lucioperca) // Wiss. Z. Univ. Rostock. N-Reihe. 1989. Bd 38. S. 23–30.
36. Lehtonen H., Hansson S., Winkler H. Biology and exploitation of pikeperch, Stizostedion lucioperca (L.), in the Baltic Sea area // Ann. zool. fenn. 1996. V. 33. P. 525–535.
37. Limburg K.E. Otolith strontium traces environmental history of subyearling American shad Alosa sapidissima // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1995. V. 119. P. 25–35.
38. Meyer-Rochow V.B., Cook I., Hendy C.H. How to obtain clues from the otoliths of an adult fish about the aquatic environment it has been in as a larva // Comp. Biochem. Physiol. 1992. V. 103A. № 2. P. 333–335.
39. Nellen W. Beitragezur Brackwasserokologie der Fischeim Ostseeraum // Kieler Meeresforschungen. 1965. Bd 11. S. 192–198.
40. Otake T., Ishii T., Nakahara M., Nakamura R. Drastic changes in otolith strontium/calcium ratios in leptocephali and glass eels of Japanese eel Anguilla japonica // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1994. V. 112. P. 189–193.
41. Radtke R.L. Strontium-calcium concentration ratios in fish otoliths as environmental indicators // Comp. Biochem. Physiol. 1989. V. 92(A). P. 189–193.
42. Radtke R.L., Dempson J.B., Ruzicka J. Microprobe analyses of anadromous Arctic charr, Salvelinus alpinus, otoliths to infer life history migration events // Polar Biol. 1997. V. 19. № 1. P. 1–8.
43. Radtke R.L., Kinzie R.A., Folsom S.D. Age at recruitment of Hawaiian freshwater gobies // Environ. Biol. Fish. 1988. V. 23. P. 205–213.
44. Radtke R.L., Svenning M., Malone D. et al. Migrations in an extreme northern population of Arctic charr Salvelinus alpinus: insights from otolith microchemistry // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1996. V. 136. № 1–3. P. 13–23.
45. Secor D.H., Henderson-Arzapalo A., Piccoli P.M. Can otolith microchemistry chart patterns of migration and habitat utilization in anadromous fishes? // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1995. V. 192. P. 15–33.
46. Secor D.H., Houde E.D., Henderson-Arzapalo A., Piccoli P.M. Tracking the migrations of estuarine and coastal fishes using otolith microchemistry // ICES Anadromous/Catadromous Committee. 1993. V. 41. 16 p.
47. Secor D.H., Piccoli P.M. Age- and sex-dependent migrations of striped bass in the Hudson River as determined by chemical microanalysis of otoliths // Estuaries. 1996. V. 19. № 4. P. 778–793.
48. Secor D.H., Rooker J.R. Is otolith stronyium a useful scalar of life cycles in estuarine fishes? // Fish. Res. 2000. V. 46. P. 359–371.
49. Tzeng W.N., Tsai Y.C. Changes in otolith microchemistry of the Japanese eel, Anguilla japonica, during its migration from the ocean to the river of Taiwan // J. Fish. Biol. 1994. V. 45. P. 671–683.
50. Volk E.C., Blakley A., Schroder S.L., Kuehner S.M. Otolith chemistry reflects migratory characteristics of Pacific salmonids: Using otolith core chemistry to distinguish maternal associations with sea and freshwaters // Fish. Res. 2000. V. 46. P. 251–266.
А. В. Алдушин, С. В. Шибаев
Гидроакустические исследования пелагического ихтиоценоза озера Виштынецкое Калининградской области.
Калининградский государственный технический университет, 236022 Калининград, Советский проспект, 1
e-mail: aldushin@klgtu.ru
По данным гидроакустических исследований выявлены видовая и пространственно-временная структуры пелагического ихтиоценоза в оз. Виштынецкое Калининградской обл. Проведена оценка абсолютной численности рыб. Проанализированы методы интерпретации результатов исследований.
Ключевые слова: озеро Виштынецкое, Калининградская область, европейская ряпушка, пелагический ихтиоценоз, гидроакустический метод, численность.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Дегтев А.И. Программно-техническая реализация гидроакустического метода количественной оценки плотности водных биомасс: Дис. канд. техн. наук. Петрозаводск, 2004. 168 с.
2. Дегтев А.И., Ивантер Д.Э. Автоматизированная система количественной оценки рыбных запасов гидроакустическим методом АСКОР-2 // Рыб. хоз-во. 2002. № 4. С. 58.
3. Дегтев А.И., Сычев А.Н. Количественная оценка рыбных ресурсов с использованием гидроакустического комплекса “АСКОР-2” // Рыб. хоз-во. 2002. № 5. С. 29–31.
4. Евдокимова Е.Б., Заостровцева С.К., Шибаев С.В. О возможном влиянии некоторых паразитов ряпушки (Coregonus albula L.) на численность ее популяции в озере Виштынецком Калининградской области // Изв. Калининград. гос. техн. ун-тa. 2010. № 19. С. 180–188.
5. Озеро Виштынецкое. Калининград: ИП Мишуткина И.В., 2008. 144 с.
6. Шибаев С.В., Алдушин А.В. Пространственно-временная динамика ихтиоценоза пелагиали оз. Виштынецкого Калининградской области // Современное состояние биоресурсов внутренних водоемов: Матер. I Всерос. конф. М., 2011. Т. 2. С. 852–859.
7. Шибаев С.В., Соколов А.В. Структура донного ихтиоценоза озера Виштынецкого Калининградской области // Изв. Калининград. гос. техн. ун-та. 2014. № 32. С. 11–20.
8. Шибаев С.В., Соколов А.В., Алдушин А.В. Современное состояние популяции ряпушки (Coregonus albula L.) в озере Виштынецком Калининградской области // Биология, биотехника разведения и состояние запасов сиговых рыб: Матер. VII Всерос. науч.-производ. совещ. по биологии, биотехнике сиговых рыб. Тюмень, 2010. С. 64–68.
М. М. Соловьев*, Г. И. Извекова**
Сезонные изменения значений рН в пищеварительном тракте рыб озера Чаны (Западная Сибирь).
*Институт систематики и экологии животных СО РАН, 630091 Новосибирск, ул. Фрунзе, 11
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: yarmak85@mail.ru
Определены значения рН в пищеварительном тракте девяти видов рыб оз. Чаны (Западная Сибирь). Обнаружено изменение значений рН в кишечнике рыб в зависимости от сезона года. При повышении температуры летом значения рН в кишечнике понижаются, а при снижении температуры в холодное время года – повышаются. Предполагается, что изменение значений рН в пищеварительном тракте в зависимости от температуры воды служит регуляторным механизмом поддержания активности гидролитических ферментов на уровне, необходимом для успешной реализации процессов пищеварения за счет адаптационных изменений среды их функционирования.
Ключевые слова: пресноводные костистые рыбы, рН, пищеварительный тракт, температура.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Пегель В.А. Физиология пищеварения рыб // Тр. Томск. гос. ун-та. 1950. Сер. биол. Т. 108. 200 с.
2. Соловьев М.М., Кашинская Е.Н., Извекова Г.И., Глупов В.В. Значения pН и активность пищеварительных ферментов в желудочно-кишечном тракте рыб озера Чаны (Западная Сибирь) // Вопр. ихтиологии. 2015. Т. 55. № 2. С. 207–214.
3. Сорвачев К.Ф. Основы биохимии питания рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1982. 247 с.
4. Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
5. Deguara S., Jauncey K., Agius C. Enzyme activities and pH variations in the digestive tract of gilthead sea bream // J. Fish Biol. 2003. V. 62. № 5. P. 1033–1043.
6. Eshel A., Lindner P., Smirnoff P. et al. Comparative study of proteolytic enzymes in the digestive tracts of the European sea bass and hybrid striped bass reared in freshwater // Comp. Biochem. Physiol. A. 1993. V. 106. № 4. P. 627–634.
7. German P.D., Bittong R.A. Digestive enzyme activities and gastrointestinal fermentation in wood-eating catfishes // J. Comp. Physiol. Biochem. B. 2009. V. 179. № 8. P. 1025–1042.
8. Getachew T. Stomach pH, feeding rhythm and ingestion rate in Oreochromis niloticus L. (Pisces: Cichlidae) in Lake Awasa, Ethiopia // Hydrobiologia. 1989. V. 174. № 1. P. 43–48.
9. Hlophe S.N., Moyo N.A.G., Ncube I. Postprandial changes in pH and enzyme activity from the stomach and intestines of Tilapia rendalli (Boulenger, 1897), Oreochromis mossambicus (Peters, 1852) and Clarias gariepinus (Burchell, 1822) // J. Appl. Ichthyol. 2014. V. 30. № 1. P. 35–41.
10. Izvekova G.I., Solovyev M.M., Kashinskaya E.N., Izvekov E.I. Variations in the activity of digestive enzymes along the intestine of the burbot Lota lota expressed by different methods // Fish Physiol. and Biochem. 2013. V. 39. P. 1181–1193.
11. Kapoor B.G., Smit H., Verighina I.A. The alimentary canal and digestion in teleosts // Adv. Mar. Biol. 1975. V. 13. P. 109–239.
12. Lobel P.S. Trophic biology of herbivorous reef fishes: alimentary pH and digestive capabilities // J. Fish Biol. 1981. V. 19. № 4. P. 365–397.
13. Maier K.J., Tullis R.E. The effects of diet and digestive cycle on the gastrointestinal tract pH values in the goldfish, Carassius auratus L., Mozambique tilapia, Oreochromis mossambicus (Peters), and channel catfish, Ictalurus punctatus (Rafinesque) // J. Fish Biol. 1984. V. 25. № 2. P. 151–165.
14. Montgomery W.L., Pollak P.E. Gut anatomy and pH in a Red sea surgeonfish, Acanthurus nigrofuscus // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1988. V. 44. P. 7–13.
15. Moriarty D.J.W. The physiology of digestion of blue-green algae in the cichlid fish, Tilapia nilotica // J. Zool. 1973. V. 171. P. 25–39.
16. Nikolopulou D., Moutou K.A., Fountoulaki E. et al. Patterns of gastric evacuation, digesta characteristics and pH changes along the gastrointestinal tract of gilthead sea bream (Sparus aurata L.) and European sea bass (Dicentrarchus labrax L.) // Comp. Biochem Physiol. 2011A. V. 158. P. 406–414.
17. Page J.W., Andrews J.W., Murai T., Murray M.W. Hydrogen ion concentration in the gastrointestinal tract of channel catfish // J. Fish Biol. 1976. V. 8. № 3. P. 225–228.
18. Walford J., Lam T.J. Development of digestive tract and proteolytic enzyme activity in seabass (Lates calcarifer) larvae and juveniles // Aquaculture. 1993. V. 109. P. 187–205.
М. Ф. Субботкин, Т. А. Субботкина
Изменчивость белков крови в онтогенезе и возможные аспекты эволюции осетровых рыб сем. Acipenseridae.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: smif@ibiw.yaroslavl.ru
У осетровых рыб трех родов (Acipenser, Huso и Pseudoscaphirhynchus сем. Acipenseridae), иммунологическими методами изучены онтогенетические изменения белков крови. Установлены гетерохронность и этапность развития белков. Первоначально формируются белки, которые определяют специфичность иммуноэлектрофореграмм и мало изменяются с возрастом рыб. Наиболее поздно завершается формирование трансферринов. Закономерности развития не зависят от экологии анадромных и потамодромных форм осетровых, что в итоге проявляется однотипностью иммуноэлектрофореграмм белков крови взрослых особей 10 видов рыб. Возможно, что изменчивость белков крови в онтогенезе осетровых отражает эволюцию этих рыб как последовательную адаптацию к обитанию в морской воде различной солености и переходу древних предков к анадромному образу жизни в условиях океанической солености. Вероятно, что современные потамодромные осетровые образовались вследствие возврата анадромных форм к обитанию в пресной воде.
Ключевые слова: антигены, белки крови, трансферрины, иммуноэлектрофорез, осетровые, онтогенез, эволюция.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Белчева Р.Г., Христов Д.И. Сравнительное электрофоретическое и иммуноэлектрофоретическое исследование сывороточных белков костистых рыб // Зоол. журн. 1972. Т. 51. № 5. С. 682–687.
2. Гераскин П.П. Видоспецифичность фракционного состава гемоглобина крови осетровых рыб и динамика его формирования в раннем онтогенезе: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Севастополь, 1978. 20 с.
3. Краюшкина Л.С., Семенова О.Г. Осмотическая и ионная регуляция у различных видов осетровых (Acipenseriformes, Acipenseridae) // Вопр. ихтиологии. 2006. Т. 46. №. 1. С. 113–124.
4. Лукьяненко В.И., Васильев А.С., Камшилов И.М. Гемоглобины рыб: Спектральные характеристики и функциональные свойства. Ярославль: ВВО РЭА, 2000. 187 с.
5. Лукьяненко В.И., Васильев А.С., Лукьяненко В.В. Гетерогенность и полиморфизм гемоглобина рыб. СПб.: Наука, 1991. 392 c.
6. Лукьяненко В.И., Касимов Р.Ю., Кокоза А.А. Возрастно-весовой стандарт заводской молоди каспийских осетровых. Волгоград: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1984. 228 c.
7. Лукьяненко В.И., Лукьяненко В.В., Хабаров М.В. Гетерогенность и полиморфизм функционально специализированных белков крови проходных рыб на примере русского осетра северокаспийской популяции в морской и речной периоды жизни. II. Гемоглобины // Изв. РАН. Сер. биол. 2002. № 4. С. 494–500.
8. Лукьяненко В.И., Седов С.И., Гераскин П.П. Физиолого-биохимические особенности двух популяций осетровых Каспия // Гидробиол. журн. 1966. Т. 2. № 6. С. 43–47.
9. Лукьяненко В.И., Умеров Ж.Г. Особенности антигенного состава сывороточных белков трех аллопатрических популяций русского осетра // Журн. общ. биол. 1971. Т. 32. № 4. С. 467–479.
10. Лукьяненко В.И., Умеров Ж.Г., Алтуфьев Ю.В. Антигенные особенности сывороточных белков трех видов рода Acipenser // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1970. № 1. С. 148–150.
11. Попов А.В. Фракционный состав сывороточных белков каспийских осетровых и динамика его формирования в раннем онтогенезе: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 1983. 24 с.
12. Седов С.И. Сравнительный иммунохимический анализ белков сыворотки крови рыб на примере осетровых и карповых: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Ростов-на-Дону, 1973. 25 с.
13. Субботкин М.Ф. Антигенный состав сывороточных белков веслоноса // Формирование запасов осетровых в условиях комплексного использования водных ресурсов: Тез. докл. Всесоюз. совещ. Астрахань, 1986. С. 333–334.
14. Субботкин М.Ф. Сравнительный иммунохимический анализ межвидовых и внутривидовых особенностей сывороточных белков трех видов осетровых рода Acipenser // Вопр. ихтиологии. 1987. Т. 27. Вып. 5. С. 794–800.
15. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Видовые особенности антигенов сывороточных белков севрюги Acipenser stellatus Pallas // Биология внутренних вод: Информ. бюл. СПб., 1996. № 100. С. 57–62.
16. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Внутривидовая иммунохимическая дифференциация стерляди Acipenser ruthenus бассейна реки Волги // Вопр. ихтиологии. 1998. Т. 38. № 4. C. 509–516.
17. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Внутривидовая дифференциация сибирского осетра Acipenser baerii по антигенам сывороточных белков // Вопр. ихтиологии. 1999. Т. 39. № 3. С. 347–354.
18. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Специфичность антигенов сывороточных белков русского осетра Acipenser gueldenstaedtii // Вопр. ихтиологии. 2000. Т. 40. № 1. С. 133–138.
19. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Изучение родственных отношений четырех видов осетров рода Acipenser по антигенам сывороточных белков // Вопр. ихтиологии. 2001. Т. 41. № 5. С. 656–664.
20. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Сравнительный анализ антигенов сывороточных белков стерляди Acipenser ruthenus, шипа A. nudiventris и севрюги A. stellatus // Вопр. ихтиологии. 2001. Т. 41. № 3. С. 399–407.
21. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Изучение родственных отношений амурского Acipenser schrencki и зеленого A. medirostris осетров по антигенам их сывороточных белков // Вопр. ихтиологии. 2002. Т. 42. № 3. С. 395–401.
22. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Сравнительное иммуноэлектрофоретическое исследование сывороточных белков большого амударьинского лопатоноса Pseudoscaphirhynchus kaufmanni // Вопр. ихтиологии. 2003. Т. 43. № 2. С. 254–261.
23. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Возрастная изменчивость антигенных свойств белков осетров (Acipenseridae, Acipenseriformes) // Онтогенез. 2004. Т. 35. № 5. С. 359–365.
24. Субботкин М.Ф., Субботкина Т.А. Онтогенетическая изменчивость белков крови и эволюция поведения осетровых рыб // Поведение рыб: Матер. докл. IV Всерос. конф. М., 2010. С. 401–406.
25. Тлеуов Р.Т., Сагитов Н.И. Осетровые рыбы Амударьи. Ташкент: Фан, 1973. 156 с.
26. Чихачев А.С., Цветненко Ю.Б. Исследования белков крови азовский осетровых при их искусственном воспроизводстве // Тр. Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр. 1979. Т. 133. С. 104–121.
27. Яковлев В.Н. Филогенез осетрообразных. Очерки по филогении и систематике ископаемых рыб и бесчелюстных. М.: Наука, 1977. С. 116–144.
28. Aisen P. The transferrins (siderophilins) // Inorganic biochemistry. Amsterdam; L.; N.Y.: Elsevier scientific publ. company, 1973. P. 280–303.
29. Artyukhin E.N., Vecsei P., Peterson D.L. Morphology and ecology of Pacific sturgeons // Environ. Biol. Fish. 2007. V. 79. P. 369–381.
30. Bai Y.J. 1983, цит. по Bemis W.E., Kynard B. Sturgeon rivers: an introduction to acipenseriform biogeography and life history // Environ. Biol. Fish. 1997. V. 48. P. 167–183.
31. Bemis W.E., Findeis E.K., Grande L. An overview of Acipenseriformes // Environ. Biol. Fish. 1997. V. 48. P. 25–71.
32. Bemis W.E., Kynard B. Sturgeon rivers: an introduction to acipenseriform biogeography and life history // Environ. Biol. Fish. 1997. V. 48. P. 167–183.
33. Choudhury A., Dick T.A. The historical biogeography of sturgeon (Osteichthyes: Acipenseridae): a synthesis of phylogenetics, palaeontology and palaeogeography // J. Biogeogr. 1998. V. 25. P. 623–640.
34. Filosa M.F., Sargent P.A., Younson J.H. An electrophoretic and immunoelectrophoretic study of serum proteins during the life cycle of the lamprey Petromyzon marinus L. // Comp. Biochem. Physiol. 1986. V. 83B. № 1. P. 143–149.
35. Findeis E.K. Osteology and phylogenetic interrelationships of sturgeons (Acipenseridae) // Environ. Biol. Fish. 1997. V. 48. P. 73–126.
36. Keyvanfar A. Etude comparative des proteines seriques of cellulaires de quatre especes d’esturgeons anadromes de la mer caspienne // Ann. Inst. Oceanogr. 1988. V. 64. № 1. P. 25–64.
37. Krieger J., Fuerst P.A. Evidence for a slowed rate of molecular evolution in the order Acipenseriformes // Mol. Biol. Evol. 2002. V. 19. P. 891–897.
38. Marneux M. Etude de l’isotipie et de l’allotypie de la transferrine chez Ictalurus melas // Ann. embryol. et morphogen. 1972. V. 5. № 3. P. 227–245.
39. Pavlov D.S., Ruban G.I., Sokolov L.I. On types of spawning migration in sturgeon fishes (Acipenseriformes) of the world fauna // J. Ichthyol. 2001. V. 41. Supl. 2. P. 225–236.
40. Subbotkin M.F., Subbotkina T.A. Ontogenetic variation patterns of serum protein antigens of the large Amu-Darya shovelnose sturgeon, Pseudoscaphirhynchus kaufmanni (Acipenseridae) // J. Appl. Ichthyol. 2011. V. 27. P. 213–218.
И. И. Томилина*, Л. П. Гребенюк*, Н. В. Лобус**, В. Т. Комов*
Биологические эффекты действия загрязненных донных отложений на гидробионтов в водоемах Центрального и Южного Вьетнама.
* Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт океанологии им. П.П. Ширшова РАН, 117997 Москва, Нахимовский проспект, 36
e-mail: tomil@ibiw.yaroslavl.ru
Определены уровни содержания металлов и токсичность в донных отложениях водоемов Центрального и Южного Вьетнама. Отмечено, что содержание металлов (As, Cr, Cu, Hg, Ni, Pb, Zn) превышало значение кларка элементов земной коры, что может быть связано с геохимическими особенностями провинции. На всех исследованных водоемах не зарегистрировано острой токсичности водной вытяжки грунтов для цериодафний и цельного нативного грунта – для личинок хирономид. Для большинства водных объектов отмечено увеличение относительной численности личинок Chironomus riparius с деформациями структур ротового аппарата по сравнению с контролем. Наибольшей величины этот показатель достигает на р. Кхе (провинция Кантхо). В патоморфологических нарушениях преобладают аномалии антенн.
Ключевые слова: донные отложения, токсичность, тяжелые металлы, Вьетнам.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бакаева Е.Н., Никаноров А.М., Игнатова Н.А. Место биотестирования донных отложений в мониторинге поверхностных вод суши // Вестн. Юж. науч. центра. 2009. Т. 5. № 2. С. 86–92.
2. Виноградов А.П. Средние содержания химических элементов в главных типах изверженных горных пород земной коры // Геохимия. 1962. № 7. С. 555–571.
3. Гапеева М.В., Гусев Е.С., Долотов А.В., Ле Ти Винь. Уровни содержания тяжелых, в том числе редкоземельных, элементов в реках и водохранилищах Среднего Вьетнама и их взаимосвязи с продукционными характеристиками водоемов // Водоочистка. Водоподготовка. Водоснабжение. 2010. № 3. С. 64–71.
4. Гребенюк Л.П., Томилина И.И. Изменение физиологических и морфологических показателей личинок Chironomus riparius Meigen (Diptera: Chironomidae) при действии токсических веществ различной природы // Биология внутр. вод. 2006. № 3. С. 81–90.
5. Гремячих В.А., Томилина И.И., Гребенюк Л.П. Влияние хлорида ртути на морфофункциональные показатели личинок Chironomus riparius Meigen (Diptera, Chironomidae) // Биология внутр. вод. 2009. № 1. С. 94–101.
6. Ильяшук Б.П., Ильяшук Е.А. Палеоэкологический анализ сообществ хирономид горного озера как информационный источник для биомониторинга // Экология. 2000. Т. 31. № 5. С. 384–389.
7. Лобус Н.В. Содержание ртути в донных отложениях водоемов Южного Вьетнама // Токсикол. вестн. 2012. № 2. С. 41–43.
8. Лобус Н.В., Комов В.Т., Нгуен Тхи Хай Тхань. Содержание ртути в компонентах экосистем водоемов и водотоков провинции Кхань Хоа (Центральный Вьетнам) // Вод. ресурсы. 2011. Т. 38. № 6. С. 733–739.
9. Назарова Л.Б. Морфологические деформации личинок комаров-звонцов (Diptera, Chironomidae) в гидробиологических исследованиях // Успехи соврем. биологии. 2002. Т. 122. № 5. С. 505–512.
10. Павлов Д.С., Зворыкин Д.Д., Комов В.Т., Нгуен Тхи Хай Тхань. Введение // Экология внутренних вод Вьетнама. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. С. 6–9.
11. Савенко В.С. Химический состав взвешенных наносов рек мира. М.: ГЕОС, 2006. 175 с.
12. Cтепанова Н.Ю., Латыпова В.З., Яковлев В.А. Экология Куйбышевского водохранилища: донные отложения, бентос и бентосоядные рыбы. Казань: Изд-во АН Республики Татарстан, 2004. 228 с.
13. Филенко О.Ф., Исакова Е.Ф. Компенсаторные изменения в ответе дафний на летальные воздействия // Реакции гидробионтов на загрязнение. М.: Наука, 1983. С. 135–139.
14. Щербань Э.П., Арсан О.М, Шаповал Т.Н. и др. Методика получения водных вытяжек из донных отложений для их биотестирования // Гидробиол. журн. 1994. Т. 31. № 4. С. 100–111.
15. Экология внутренних вод Вьетнама. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 435 с.
16. Bhattacharyay G., Mazumdar A., Sadhu A.K., Chaudhupi P.K. Antennal deformities of Chironomid larvae and their use in biomonitoring of heavy metal pollutants in the river Damodar of West Bengal, India // Environ. Monitoring and Assessment. 2005. V. 108. P. 67–84.
17. Burton G.A. Assessment of freshwater sediments toxicity // Environ. Toxicol. Chem. 1991. V. 10. P. 1585–1627.
18. Carvalho F.P., Villeneuve J.P., Cattini C. et al. Agrochemical and polychlorobyphenyl (PCB) residues in the Mekong River delta, Vietnam // Mar. Pollut. Bull. 2008. V. 56. P. 1476–1485.
19. Chapman P.M., Wang F., Janssen C. et al. Ecotoxicology of metals in aquatic sediments: binding and release, bioavаilability, risk assessment, and remediation // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1998. V. 55. P. 2221–2243.
20. Deckere E., De Cooman W., Leloup V. et al. Development of sediment quality guidelines for freshwater ecosystems // J. Soils Sediments. 2011. V. 11. P. 504–517.
21. Hieu Ho H., Swennen R., Cappuyns V. et al. Speciation and Mobility of Selected Trace Metals (As, Cu, Mn, Pb and Zn) in Sediment with Depth in Cam River-Mouth, Haiphong, Vietnam // Aquat. Geochem. 2013. V. 19. P. 57–75.
22. Ingersoll C.G., Nelson M.K. Testing sediment toxicity with Hyalella azteca (Amphipoda) and Chironomus riparius (Diptera) // Aquat. Toxicol. and Risk Assessment. Philadelphia: Amer. Soc. Test. and Mater. 1990. V. 13. P. 93–109.
23. Islam Md.R., Lahermo P., Salminen R. et al. Lake and reservoir water quality affected by metals leaching from tropical soils, Bangladesh // Environ. Geol. 2000. V. 39. № 10. P. 1083–1089.
24. Kikuchi T., Furuichi T., Hai H.T., Tanaka S. Assessment of Heavy Metal Pollution in River Water of Hanoi, Vietnam Using Multivariate Analyses // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2009. V. 83. P. 575–582.
25. Li W., Ahlf W. Evidence from whole-sediment, porewater, and elutriate testing in toxicity assessment of contaminated sediments // Ecotoxicol. Environ. Saf. 1997. V. 199. № 2. P. 140–147.
26. MacDonald D.D., Ingersoll C.G., Berger T.A. Development and Evaluation of Consensus-Based Quality Guidelines for Freshwater Ecosystem // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2000. V. 39. Р. 20–32.
27. Mount D.I., Norberg T.J. A seven-day life-cycle cladoceran toxicity test // Environ. Toxicol. Chem. 1984. V. 3. Р. 425–434.
28. Servia M.J., Perry A.R.R., Heidorf M. et al. Effects of copper on energy metabolism and larval development in the midge Chironomus riparius // Ecotoxicology. 2006. V. 15. P. 229–240.
29. Sokal R.R., Rohlf F.J. Biometry: the principles and practice of statistics in biological research. N.Y.: W.H. Freeman and Comp., 1995. 887 p.
30. Warwick W.F. Morphological abnormalities in Chironomidae (Diptera) larvae as measures of toxic stress in freshwater ecosystems: indexing antennal deformities in Chironomus Meigen // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1985. V. 42. № 12. P. 1881–1914.
31. Wiederholm T. Incidence of deformed chironomid larvae (Diptera: Chironomidae) in Swedish lakes // Hydrobiologia. 1984. V. 109. P. 243–249.
Э. В. Ивантер, Н. В. Медведев
Чайковые птицы Карелии в условиях глобального загрязнения водоемов хлорорганическими соединениями.
Петрозаводский государственный университет, 185910 Петрозаводск, пр. Ленина, 33
e-mail: nmedvedev@petrsu.ru, nmedvedev@list.ru
Исследовано влияние хлорорганических пестицидов (ДДЕ и линдана) на чайковых птиц Карелии. Полученные методом газовой хроматографии данные о содержании поллютантов в яйцах изученных видов птиц выявили хотя и статистически значимый, но в целом невысокий уровень антропогенного загрязнения. Это связано с ограниченным применением названных пестицидов в сельском хозяйстве и с сокращением аграрной деятельности в северных регионах страны.
Ключевые слова: чайковые птицы, хлорорганические соединения, пестициды, яйца птиц, толщина скорлупы, уровень загрязнения.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Афанасьев М.Н., Денисова А.К., Погодина О.В. Методика определения хлорорганических пестицидов и полихлорбифенилов в тканях животных // Проблемы экологического мониторинга и моделирования экосистем. 1985. Т. 7. С. 50–57.
2. Зимин В.Б., Сазонов С.В., Лапшин Н.В. и др. Орнитофауна Карелии. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 1993. 220 с.
3. Ивантер Э.В., Медведев Н.В. Экологическая токсикология природных популяций птиц и млекопитающих Севера. М.: Наука, 2007. 229 с.
4. Кумачев А.И., Кузьменок Н.М. Глобальная экология и химия. Минск: Университетское, 1991. 184 с.
5. Мельников Н.Н. Пестициды. М.: Мир, 1987. 712 с.
6. Эйхлер В. Яды в нашей пище. М.: Мир, 1993. 189 с. (Eichler W. Gift in unserer Nahrung. Greven: Kilda-Verlag, 1982. 175 S.)
7. Becker P.H. Seabirds as monitor organisms of contaminants along the German North Sea Coasts // Helgoland. Meeresuntersuch. 1989. V. 43. P. 395–403.
8. Bogan J.A., Newton I. Redistribution of DDE in sparrowhawks during starvation // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. 1977. V. 18. № 3. P. 317–321.
9. Custer T.W., Erwin R.M., Stafford C. Organochlorine residues in Common Tern eggs from nine Atlantic coast colonies, 1980 // Colonial Waterbirds. 1983. V. 6. P. 197–204.
10. Fasola M., Vecchio I., Caccialanza G. et al. Trends of organochlorine residues in eggs of birds from Italy 1977 to 1985 // Environ. Pollut. A. 1987. V. 48. P. 35–36.
11. Henny C.J. An evaluation of blood plasma for monitoring DDE in birds of prey // Environ. Pollut. A. 1981. V. 25. P. 270–282.
12. Holz R., Starke W. Fremdstoffbelastung in Eiern mecklenburgisher Lachmowen (Larus ridibundus) von 1975 bis 1986 // Arch. Nat. Schutz Landsch. Forsch. 1990. V. 30. P. 177–194.
13. Karlin A., Rantamaki P., Lemmetynen R. Residues of DDT and PCBs in the eggs of the herring gull Larus argentatus in the archipelago of southwestern Finland // Ornis fenn. 1985. V. 62. P. 168–170.
14. Koivussaari J., Nuuja I., Palokongas R., Finnlund M. Relationships between productivity, eggshell thickness and pollutant contents of addled eggs in the population of white-tailed eagles Haliaetus albicilla L. in Finland during 1969–1978 // Environ. Pollut. A. 1980. V. 23. P. 41–52.
15. Linden H., Nygard T., Wikman M. On the eggshell thickness and reproduction of peregrine falcon Falco peregrinus in Finland // Ornis fenn. 1984. V. 61. P. 116–120.
16. Mc Ewen L.C., Stafford C.G., Hensler G.L. Organochlorine residues in eggs of black-crowned night-heron from Colorado and Wyoming // Environ. Toxicol. and Chem. 1984. V. 3. P. 367–376.
17. Medvedev N., Markova L. Residues of chlorinated pesticides in the eggs of Karelian birds // Environ. Pollut. 1995. V. 87. P. 65–70.
18. Mora M.A. Organochlorine and Breeding Success in Cattle Egrets from the Mexican Valley, Baja California, Mexico // Colon. Waterbirds. 1991. V. 14. P. 127–132.
19. Mora M.A. Organochlorines and trace elements in four colonial waterbird species nesting in the Lower Laguna Madre, Texas // Arch. Environ. Contam. and Toxicol. 1996. V. 31. P. 533–537.
20. Nisbet C., Reynolds L.M. Organochlorine residues in common terns and associated estuarine organisms, Massachusetts, USA, 1971–1981 // Mar. Environ. Res. 1984. V. 11. P. 33–66.
21. Paasivirta J., Sarkka J., Pellinen J., Humppi T. Completion of a food chain enrichment study for DDT, PCB and Hg // Chemosphere. 1981. V. 10. № 7. P. 787–794.
22. Peakall D.B., Gilman A.P. Limitations of expressing organochlorines levels in eggs on a lipid – weight basis // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. 1979. V. 23. № 3. P. 287–290.
23. Pellantova J., Hudec K., Kredl F. et al. Organochlorine pesticides, PCB and heavy metals residues in the eggs of the Black-headed Gull, Larus ridibundus, in Czechoslovakia // Folia Zool. 1989. V. 38. P. 79–86.
24. Ratclife D.A. Decrease in eggshell weight in certain birds of prey // Nature. 1967. V. 215. P. 208–210.
25. Rumbold D.G., Bruner M.C., Mihalik M.B. et al. Organochlorine pesticides in anhingas, white ibises, and apple snails collected in Florida, 1989–1991 // Arch. Environ. Contam. and Toxicol. 1996. V. 30. P. 379–383.
26. Switzer B., Levin B., Wolf E.H. DDE and reproductive success in some Alberta common terns // Can. J. Zool. 1973. V. 51. P. 1081–1086.
27. Tanabe S., Subramanian A.N., Hidaka H. et al. Transfer rates and pattern of PSB isomers and congeners and p,p,-DDE from mother to eggs in Adelie penguin (Pygoscelis adeliae) // Chemosphere. 1986. V. 15. № 3. P. 343–351.
28. White D.H. Nationwide residues of organochlorine compounds in wings of adult mallards and black ducks, 1976–1977 // Ibid. 1979. V. 13. № 1. P. 12–16.
Ю. В. Кодухова, Е. А. Боровикова, Д. П. Карабанов
Первая находка звёздчатой пуголовки Benthophilus stellatus (Sauvage, 1874) (Actinopterygii: Gobiidae) в Рыбинском водохранилище.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: dk@ibiw.yaroslavl.ru
Приведены данные о первой находке звёздчатой пуголовки в августе 2014 г. в Волжском плёсе Рыбинского водохранилища.
Ключевые слова: звёздчатая пуголовка, Benthophilus stellatus, чужеродные виды, Рыбинское водохранилище, ДНК-баркодинг.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2003. Т. 2. 253 с.
2. Берг Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. Т. 3. С. 926–1382.
3. Гавлена Ф.К. Звёздчатая пуголовка Benthophilus stellatus (Sauvage) в Куйбышевском водохранилище // Вопр. ихтиологии. 1973. Т. 13. № 1. С. 174–175.
4. Евланов И.А., Козловский С.И., Антонов П.И. Кадастр рыб Самарской области. Тольятти: Ин-т экологии волжск. бассейна РАН, 1998. 222 с.
5. Клевакин А.А., Блинов Ю.В., Минин А.Е. и др. Рыболовство в Нижегородской области. Нижний Новгород: Чебоксарская типография № 1, 2005. 96 с.
6. Цыплаков Э.П. Расширение ареалов некоторых видов рыб в связи с гидростроительством на Волге и акклиматизационными работами // Вопр. ихтиологии. 1974. Т. 14. № 3. С. 396–405.
7. Boldyrev V.S., Bogutskaya N.G. Description of two new species of tadpole-gobies (Teleostei: Gobiidae: Benthophilus) // Zoosystematica Rossica. 2004. V. 13. № 1. P. 129–135.
8. Kasyanov A.N., Klevakin A.A. Stellate tadpole-goby Benthophilus stellatus (Sauvage, 1874) in the Cheboksary Reservoir // Rus. J. Biol. Invas. 2011. V. 2. № 4. P. 242–244. DOI: 10.1134/S2075111711040047.
9. Makhrov A.A., Artamonova V.S., Karabanov D.P. Finding of topmouth gudgeon Pseudorasbora parva (Temminck et Schlegel) (Actinopterygii: Cyprinidae) in the Brahmaputra River basin (Tibetan Plateau, China) // Rus. J. Biol. Invas. 2013. V. 4. № 3. P. 174–179. DOI: 10.1134/S2075111713030089.
10. Neilson M.E., Stepien C.A. Escape from the Ponto-Caspian: evolution and biogeography of an endemic goby species flock (Benthophilinae: Gobiidae: Teleostei) // Mol. Phylogen. and Evol. 2009. V. 52. № 1. P. 84–102. DOI: 10.1016/j.ympev.2008.12.023.
