Журнал "Биология внутренних вод"
№ 4 за 2014 год
Е.Б. Мельникова, Н.В. Лямина
Факторы, влияющие на изменение интенсивности поля биолюминесценции в темное время суток.
Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского, НАН Украины, 99011 г. Севастополь, проспект Нахимова, 2
e-mail: helena_melnikova@mail.ru
Исследовано изменение интенсивности поля биолюминесценции в темное время суток в западной части Черного моря. Показано отличие в динамике интенсивности поля биолюминесценции в верхнем (0–35 м) и глубоководном (>35 м) слоях. Методами многомерного статистического анализа выявлено, что биолюминесценты находятся в пространстве влияния нескольких факторов, среди которых выделены биотические и абиотические. Наибольшее влияние на периодичность нарастания и убывания интенсивности поля биолюминесценции в темное время суток влияют биотические факторы. Абиотические факторы менее значимы в циркадном ритме биолюминесцентов.
Ключевые слова: Чёрное море, поле биолюминесценции, водные слои, факторы, биолюминесценты.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Айвазян С.А., Бухштабер В.М., Енюков И.С. и др. Прикладная статистика: Классификация и снижение размерности. М.: Финансы и статистика, 1989. 607 c.
2. Битюков Э.П. Характеристика суточного ритма биолюминесценции Noctiluca miliaris в Черном море // Зоол. журн. 1968. Т. 47. № 1. С. 36–41.
3. Битюков Э.П., Василенко В.И., Серикова И.М. и др. Результаты и перспективы исследования биолюминесценции в Чёрном море // Экология моря. 1996. № 45. С. 19–25.
4. Бурмистрова Н.В., Жук В.Ф., Мельникова Е.Б. Связь интенсивности поля биолюминесценции с гидрологическими характеристиками среды на траверзе бухты Круглая // Вісн. ЗНУ. Біологічні науки. Запоріжжя. 2010. № 2. С. 84–92.
5. Бурмистрова Н.В., Токарев Ю.Н., Василенко В.И. и др. Современные проблемы морской инженерной экологии (изыскания, ОВОС, социально-экономические аспекты): Матер. междунар. науч. конф. Ростов-на-Дону, 2008. С. 59–62.
6. Грезе В.Н. Суточные изменения фитопланктона в Черном море // Основы биологической продуктивности Черного моря. Киев: Наук. думка, 1979. С. 79–85.
7. Делало Е.П. О суточном ритме в питании Pseudocalanus elongatus (Boeck) // Тр. Севастополь. биол. ст. АН УССР. 1961. Т. 15. С. 94–100.
8. Евстигнеев П.В., Битюков Э.П. Биолюминесценция морских копепод. Киев: Наук. думка, 1990. 144 с.
9. Ланская Л.А. Суточный ход деления некоторых видов планктонных водорослей Черного моря в культурах // Биология и распределение планктона южных морей. М.: Наука, 1967. С. 16–21.
10. Мандель И.Д. Кластерный анализ. М.: Финансы и статистика, 1988. 176 с.
11. Маштакова Г.П. Суточная динамика фитопланктона в Черном море // Тр. Азово-Черномор. ин-та рыб. хоз-ва и океаногр. 1968. Вып. 27. С. 60–72.
12. Павлова Е.В., Сорокин Ю.И. Бактериальное питание планктонного рачка Penilia avirostris Dana из Черного моря // Биология моря. 1970. Вып. 19. С. 182–199.
13. Пионтковский С.А., Петипа Т.С. Элективность в питании Acartia clausi (Giesbr.) // Биология моря. 1975. Вып. 33. С. 3–10.
14. Рузова А.И., Крупаткина Д.К. Использование метода главных компонент в экологии морского фитопланктона (обзор) // Экология моря. 1983. Вып. 13. С. 65–71.
15. Серикова И.М., Токарев Ю.Н., Загородняя Ю.А. и др. Биолюминесценция как показатель пространственных измерений планктонных полей // Екологічні проблеми Чорного моря: Междунар. науч.-практ. конф. Одесса, 2009. С. 207–209.
16. Токарев Ю.Н., Битюков Э.П., Василенко В.И. и др. Поле биолюминесценции – характерный показатель структуры планктонного сообщества Черного моря // Экология моря. 2000. № 53. С. 20–25.
17. Харман Г. Современный факторный анализ. М.: Статистика, 1972. 489 с.
18. Cattell R.B. The Scree Test for the Number of Factors // Multivariate Behavioral Res. 1966. № 1(2). Р. 245–276.
В.Б. Вербицкий, Т.И. Вербицкая, О.А. Малышева
Температурные реакции Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Müller, 1785) (Anomopoda) из литорали Рыбинского водохранилища.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: verb@ibiw.yaroslavl.ru
Проведены эксперименты по определению избираемых и избегаемых температур у ветвистоусого рака Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Müller, 1785) с использованием графического метода. В течение вегетационного сезона выявлены диапазон избираемых цериодафниями температур (17.4–26.5℃), соответствующий оптимальным температурам роста и развития раков в водоемах, температурная зона нормальной жизнедеятельности (13–27℃), диапазон избегаемых температур (6–13 и >27℃) и летальные температуры (<6 и >33℃). Обсуждаются возможные причины и механизмы температурных реакций вида.
Ключевые слова: Ceriodaphnia quadrangula, температурные градиенты, избираемые и избегаемые температуры.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Вербицкий В.Б., Вербицкая Т.И. Конечная избираемая температура партеногенетических самок Daphnia magna Straus (Crustacea, Cladocera), акклимированных к разным температурам // Изв. РАН. Сер. биол. 2011. № 5. С. 576–583.
2. Вербицкий В.Б., Вербицкая Т.И. Температурное избирание и избегание у ветвистоусых раков Daphnia magna Straus (Crustacea, Cladocera), акклимированных к постоянной температуре // Изв. РАН. Сер. биол. 2012. № 1. С. 109–114.
3. Вербицкий В.Б., Вербицкая Т.И., Малышева О.А. Влияние различных температурных режимов на динамику численности и теплоустойчивость ветвистоусых ракообразных Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Müller, 1785) // Биология внутр. вод. 2009. № 1. С. 70–75.
4. Козлова И.В. К биологии массовых видов ракообразных из разнотипных озер Среднего Урала // Тр. Уральск. отд. Сиб. НИИ рыб. хоз-ва. 1975. Т. 9. С. 65–74.
5. Любимова Т.С. К биологии массовых видов планктонных ракообразных горного озера Аракуль Южный Урал // Сб. науч. тр. Уральск. отд. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1979. Вып. 10. С. 125–137.
6. Мануйлова Е.Ф. К вопросу о значении численности бактерий в развитии ветвистоусых рачков в естественных условиях // ДАН СССР. 1958. Т. 120. № 5. С. 1129–1132.
7. Пидгайко М.Л. Зоопланктон водоемов Европейской части СССР. М.: Наука, 1984. 208 с.
8. Allan J.D. An analysis of seasonal dynamics of a mixed population of Daphnia, and the associated cladoceran community // Freshwater Biol. 1977. V. 7. P. 505–512.
9. Anderson D.H., Benke A.C. Growth and reproduction of the cladoceran Ceriodaphnia dubia from a forested floodplain swamp // Limnol., Oceanogr. 1994. V. 39. P. 1517–1527.
10. Angilletta M.J. Thermal Adaptation: A Theoretical and Empirical Synthesis. Oxford: Oxford Univ. Press, 2009. 289 p.
11. Beitinger T.L., Bennett W.A., McCauley R.W. Temperature tolerances of North American freshwater fishes exposed to dynamic changes in temperature // Environ. Biol. Fish. 2000. V. 58. P. 237–275.
12. Bennett A.F. The thermal dependence of lizard behavior // Anim. Behav. 1980. V. 28. Is. 4. P. 752–762.
13. Burgis M.J. A quantitative study of reproduction in some species of Ceriodaphnia (Crustacea: Cladocera) // J. Anim. Ecol. 1967. V. 36. P. 61–75.
14. Cowgill U.M., Keating K.I., Takahashi I.T. Fecundity and longevity of Ceriodaphnia dubia/affinis in relation to diet at different temperatures // J. Crust. Biol. 1985. V. 5. P. 420–429.
15. Dawson W. On the physiological significance of the preferred body temperatures of reptiles // Perspectives in Biophysical Ecology. N.Y.: Springer, 1975. P. 443–473.
16. Díaz F., Sierra E., Deniss A., Rodriguez L. Behavioural thermoregulation and critical thermal limits of Macrobrachium acanthurus (Wiegman) // J. Therm. Biol. 2002. V. 27. P. 423–428.
17. Hernandez R.M., Bückle R.L.F. Thermal preference area for Macrobrachium tenellum in the context of global climatic change // J. Therm. Biol. 1997. V. 22. Is. 4/5. P. 309–313.
18. Higgins F.A., Bates A.E., Lamare M.D. Heat tolerance, behavioural temperature selection and temperature-dependent respiration in larval Octopus huttoni // J. Therm. Biol. 2012. V. 37. P. 83–88.
19. Huey R.B. Temperature, physiology, and the ecology of reptiles // Biology of the Reptilia. Physiology. L.: Acad. Press, 1982. V. 12. P. 25–91.
20. Huey R.B., Bennett A.F. Phylogenetic studies of coadaptation: preferred temperatures versus optimal performance temperatures of lizards // Evolution. 1987. V. 41. P. 1098–1115.
21. Geller W., Mtiller H. The Filtration Apparatus of Cladocera: Filter Mesh-Sizes and their Implications on Food Selectivity // Oecologia. 1981. V. 49. P. 316–321.
22. Gulyas P. The effect of temperature on the most frequent Cladocera and Copepoda species in lake Velenge // Aquacultura Hungarica. 1980. V. 2. P. 55–70.
23. Jobling M. Temperature tolerance and the final preferendum – rapid methods for the assessment of optimum growth temperatures // J. Fish. Biol. 1981. V. 19. P. 439–455.
24. Kwick J.K., Carter J.C.H. Population dynamics of limnetic Cladocera in a beaver pond // J. Fish. Res. Board. Can. 1975. V. 32. P. 341–346.
25. Lagerspetz K.Y.H. Thermal avoidance and preference in Daphnia magna // J. Therm. Biol. 2000. V. 25. P. 405–410.
26. Lamkemeyer T., Zeis B., Paul R.J. Temperature acclimation influences temperature related behaviour as well as oxygen transport physiology and biochemistry in the water flea Daphnia magna // Can. J. Zool. 2003. V. 81. P. 237–249.
27. Mortensen A., Ugedal O., Lund F. Seasonal variation in the temperature preference of Arctic charr (Salvelinus alpinus) // J. Therm. Biol. 2007. V. 32. P. 314–332.
28. Novakova J. Development and growth of three species of the genus Ceriodaphnia // Rigor. Thesis. Prague, 1976. P. 46.
29. Poole G.C., Berman C.H. An ecological perspective on in-stream temperature: natural heat dynamics and mechanisms of human caused degradation // Environ. Manage. 2001. V. 27. P. 787–802.
30. Pulgar J., Bozinovic F., Ojeda F. Local distribution and thermal ecology of two intertidal fishes // Ecophysiology. 2005. V. 142. P. 511–520.
31. Reynolds W.W., Casterlin M.E. Behavioral thermoregulation and the “final preferendum” paradigm // Amer. Zool. 1979. V. 19. P. 211–224.
32. Sokolova I.M., Pörtner H.O. The role of thermal environment in stress adaptation and tolerance: Integration of multiple stressors // J. Therm. Biol. 2007. V. 32. P. 117–178.
33. Sunday J., Bates A.E., Dulvy N. Global analysis of thermal tolerance and latitude in ectotherms // Proc. Roy. Soc. London B. 2011. V. 278. P. 1823–1830.
В.С. Вишняков*, М.С. Куликовский*, С.И. Генкал*, Н.И. Дорофеюк**, Х. Ланге-Берталот***, И.В. Кузнецова*
Систематика и распространение диатомовых водорослей рода Epithemia Kützing в водоёмах Центральной Азии.
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 г. Москва, Ленинский проспект, 33
***Щецинский университет, 70-383 Щецин, ул. Мицкевича, 18, Польша
e-mail: aeonium25@mail.ru
Исследована морфология створок диатомовых водорослей рода Epithemia из водоёмов Центральной Азии (Россия и Монголия). Показано, что наряду с широко распространёнными голарктическими видами в некоторых водоёмах отмечаются таксоны с ограниченным распространением, в том числе эндемичным (оз. Байкал). Приведены оригинальные морфологические описания и иллюстрации 13 видов Epithemia. Описаны три новых для науки вида: E. compacta Kulikovskiy & Lange-Bertalot sp. nov. – из оз. Байкал, E. selengaensis Vishnjakov, Kulikovskiy & Genkal sp. nov. – из р. Селенга и E. perlongicornis Vishnjakov, Kulikovskiy & Genkal sp. nov. – из водоёмов Котловины Больших Озёр (Монголия).
Ключевые слова: диатомовые водоросли, Epithemia, новые виды, морфология, фитогеография, оз. Байкал, р. Селенга, Россия, Монголия.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Забелина М.М., Киселёв И.А., Прошкина-Лавренко А.И., Шешукова В.С. Диатомовые водоросли // Определитель пресноводных водорослей СССР. М.: Сов. наука, 1951. Вып. 4. 619 с.
2. Караева Н.И. Исследования диатомей Каспийского моря в сканирующем электронном микроскопе. II. Роды Epithemia, Rhopalodia // Ботaн. журн. 1981. Т. 66. № 4. С. 515–518.
3. Куликовский М.С., Кузнецова И.В. Биогеография пресноводных Bacillariophyta. Основные концепции и подходы // Альгология. 2014. Т. 24. № 2. C. 125–146.
4. Куликовский М.С., Ланге-Берталот Х., Хурсевич Г.К., Кузнецова И.В. Новые виды диатомовых рода Eolimna (Bacillariophyceae) из озера Байкал // Новости систем. низш. раст. 2012. Т. 46. С. 46–51.
5. Лимнология и палеолимнология Монголии // Биологические ресурсы и природные условия Монголии. М., 2013. Т. 60. 412 с.
6. Скабичевский А.П. Материалы по водорослям озера Духового // Изв. Биолого-геогр. науч.-иссл. ин-та при Иркутском гос. ун-те. 1942. Т. 9. Вып. 1–2. С. 49–72.
7. Скворцов Б.В. Материалы по изучению водорослей Приморской губернии. II. Диатомовые водоросли озера Ханка // Зап. Южно-Уссурийского отд. гос. Рус. геогр. о-ва. 1929. Вып. 3. С. 3–66.
8. Brébisson de A. Consideration sur les Diatomées et essai d' une classification des genres et des espêces appurtenant ā cette famile. Brée: Falaise, 1838. 22 p.
9. Brun J. Diatomées des Alpes et du Jura et de la region suisse et française des environs de Genève. Genève; Paris: Н. Georg, Masson, 1880. 146 p.
10. Carruthers W. The Diatomaceae // Handbook of British water-weeds or algae. L.: British Museum, 1864. P. 75–116.
11. Dorofeyuk N.I., Kulikovskiy M.S. Diatoms of Mongolia. M.: Inst. Ecol. and Evol. RAN, 2012. 367 p.
12. Foged N. Freshwater diatoms in Iceland // Bibliotheca Phycol. 1981. V. 15. P. 3–118.
13. Héribaud J. Les Diatomées d'Auvergne. Paris: Librairie Sci. Natur., 1893. P. 1–255.
14. Hofmann G., Werum M., Lange-Bertalot H. Diatomeen im Süßwasser-Benthos von Mitteleuropa. Bestimmungsflora Kieselalgen für die ökologische Praxis. Über 700 der häufigsten Arten und ihre Ökologie. Königstein: Koeltz Sci. Books, 2013. P. 1–908.
15. Hustedt F. Diatomeen aus der Umgebung von Abisko in Schwedisch-Lappland // Arch. Hydrobiol. 1942. Bd 39. H. 1. S. 87–174.
16. Hustedt F. Die Kieselalgen Deutschlands, Österreichs und der Schweiz unter Berücksichtigung der übrigen Länder Europas sowie der angrenzenden Meeresgebiete // Kryptogamen Flora von Deutschland, Österreich und der Schweiz. Leipzig: Akad. Verlagsgesellschaft, 1959. Bd 7. S. 737–845.
17. Kobayasi H., Kobayashi H. A study of Epithemia amphicephala (Östr.) comb. et stat. nov. and E. reticulata Kütz., with special reference to the areolar occlusion // Proc. 19 Int. Diat. Symp. Bristol. 1988. P. 459–468.
18. Kociolek J.P., Kulikovskiy M., Solak C.N. The diatom genus Gomphoneis Cleve (Bacillariophyceae) from Lake Baikal, Russia // Phytotaxa. 2013. V. 154. P. 1–37.
19. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. 2. Teil: Bacillariaceae, Epithemiaceae, Surirellaceae // Süsswasserflora von Mitteleuropa. Jena: VEB Gustav Fisher Verlag, 1988. Bd 2. H. 2. 596 S.
20. Kulikovskiy M.S., Lange-Bertalot H., Metzeltin D., Witkowski A. Lake Baikal: hotspot of endemic diatoms. I. // Iconographia Diatomol. 2012. V. 23. P. 7–608.
21. Kulikovskiy M.S., Lange-Bertalot H., Witkowski A., Khursevich G.K. Achnanthidium sibiricum (Bacillariophyta), a new species from bottom sediments in Lake Baikal // Algol. Stud. 2011. V. 136–137. P. 77–87.
22. Kützing F. Die Kieselschaligen Bacillarien oder Diatomeen. Nordhausen: W. Köhne, 1844. P. 1–152.
23. Lange-Bertalot H., Krammer K. Bacillariaceae, Epithemiaceae, Surirellaceae. Neue und wenig bekannte Taxa, neue Kombinationen und Synonyme sowie Bemerkungen und Ergänzungen zu den Naviculaceae // Bibliotheca Diatomol. 1987. V. 15. P. 1–289.
24. Lange-Bertalot H., Ruppel M., Sabater S. Conopeum-like structures in pennate diatoms // Ouvrage dedie a H. Germain. Königstein: Koeltz Sci. Books, 1990. P. 157–167.
25. Levkov Z. Amphora sensu lato // Diatoms of Europe: Diatoms of the European inland waters and comparable habitats. 2009. V. 5. P. 5–916.
26. Levkov Z., Krstic S., Metzeltin D., Nakov T. Diatoms of Lakes Prespa and Ohrid // Iconographia Diatomol. 2007. V. 16. P. 1–611.
27. Metzeltin D., Lange-Bertalot H., Soninkhishig N. Diatoms in Mongolia // Iconographia Diatomol. 2009. V. 20. P. 1–684.
28. Moser G., Lange-Bertalot H., Metzeltin D. Insel der Endemiten Geobotanisches Phänomen Neukaledonien (Island of endemics New Caledonia – a geobotanical phenomenon) // Bibliotheca Diatomol. 1998. V. 38. 464 p.
29. Østrup E. Beitrage zur Kenntniss der Diatomeenflora des Kossogolbeckens in der nordwestlichen Mongolei // Hedwigia. 1908. Bd 48. S. 74–102.
30. Patrick R., Reimer C.W. The diatoms of the United States: exclusive of Alaska and Hawaii. Entomoneidaceae, Cymbellaceae, Gomphonemaceae, Epithemiaceae. Philadelphia: Acad. Natur. Sci., 1975. V. 2/1. 213 p.
31. Round F.E., Crawford R.M., Mann D.G. The diatoms: Biology and morphology of the genera. Cambridge: Cambridge Univ. Press., 1990. 747 p.
32. Ruck E.C., Theriot E.C. Origin and evolution of the canal raphe system in diatoms // Protist. 2011. V. 162. P. 723–737.
33. Schmidt A., Schmidt M., Fricke F. Atlas der Diatomaceenkunde. Leipzig: O.R. Reisland, 1904. Taf. 247–256.
34. Sims P.A. A taxonomic study of the genus Epithemia with special reference to the type species E. turgida (Ehrenb.) Kütz // Bacillaria. 1983. V. 6. P. 211–235.
35. Skvortzow B.W. Subaerial diatoms from Shanghai // Philippine J. Sci. 1937. V. 64. Is. 4. P. 443–451.
36. Skvortzow B.W. Diatoms from Kenon Lake, Transbaikalia, Siberia // Philippine J. Sci. 1938. V. 65. Is. 4. P. 399–424.
37. Skvortzow B.W., Meyer K.I. A contribution to the diatoms of Lake Baikal // Proc. Sungaree River Biol. Stat. 1928. V. 1. Is. 5. Р. 1–55.
38. Smith W. Synopsis of British Diatomaceae. L.: John Van Voorst, 1856. P. 1–89.
39. You Q., Liu Y., Wang Y., Wang Q. Taxonomy and distribution of diatoms in the genera Epithemia and Rhopalodia from the Xinjiang Uygur Autonomous Region, China // Nova Hedwigia. 2009. V. 89. № 3–4. P. 397–430.
А.П. Мыльников, А.А. Мыльников
Строение жгутикового аппарата бактериотрофного жгутиконосца Histiona aroides Pascher, 1943 (Jakobida Excavata).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: mylnikov@ibiw.yaroslavl.ru
Рассмотрено строение жгутикового аппарата экскаватного жгутиконосца Histiona aroides Pascher, 1943. Два гладких гетеродинамичных жгутика отходят со дна вентральной бороздки. Проксимальная часть кинетосом содержит осмиофильную воронку. Задний более короткий жгутик несет продольный гребень, обращенный к клетке и содержащий исчерченный материал. Вблизи кинетосомы переднего жгутика начинается широкая дорзальная микротрубочковая лента, вблизи кинетосомы заднего жгутика – левая и правая ленты, каждая из которых далее разделена на две ленты, и одиночная микротрубочка. Эти ленты сопровождаются аморфными и исчерченными фибриллами. Левая наружная лента и многослойная структура (лента C) проходят в эпиподиум. Микротрубочковые ленты армируют дно вентральной бороздки и внешний край “паруса”. Кроме того, на срезах клетки заметны пузырьковидное ядро, экструсомы, сократительная вакуоль и митохондрий с трубчатыми кристами. Обсуждается сходство H. aroides с другими якобидами и экскаватами.
Ключевые слова: Histiona aroides, ультраструктура, жгутиковый аппарат, цитофаринкс, Jakobida, Excavata.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Мыльников А.П. Морфология и жизненный цикл Histiona aroides Pascher (Chrysophyta) // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1984. № 62. С. 16–19.
2. Мыльников А.П. Морфология бесцветного жгутиконосца Histiona aroides // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1988. № 80. С. 43–46.
3. Мыльников А.П. Тонкое строение и систематическое положение Histiona aroides (Bicoecales) // Ботан. журн. 1989. Т. 74. № 2. С. 184–189.
4. Arndt H., Dietrich D., Auer B. et al. Functional diversity of heterotrophic flagellates in aquatic ecosystems // The Flagellates. Unity, Diversity and Evolution. L.; N.Y: Taylor & Francis, 2000. P. 240–268.
5. Flavin M., O'Kelly C.J. Reclinomonas americana n.g., n.sp., a new freshwater heterotrophic flagellate // J. Eukaryot. Microbiol. 1993. V. 40. P. 172–179.
6. Lara E., Chatzinotas A., Simpson A.G.B. Andalicia (n.gen.) – the deepest branch within jakobids (Jakobida; Excavata), based on morphological and molecular study of a new flagellate from soil // J. Eukaryot. Microbiol. 2006. V. 53. P. 112–120.
7. O'Kelly C.J. The jakobid flagellates: structural features of Jakoba, Reclinomonas and Histiona and implications for the early diversification of eukaryotes // J. Eukaryot. Microbiol. 1993. V. 40. P. 627–636.
8. O'Kelly C.J. Ultrastructure of trophozoites, zoospores and cysts of Reclinomonas americana Flavin & Nerad, 1993 (Protista incertae sedis: Histionidae) // Eur. J. Protistol. 1997. V. 33. P. 337–348.
9. O'Kelly C.J., Nerad T.A. Malawimonas jakobiformis n.g., n.sp. (Malawimonadidae n. fam.): a Jakoba-like flagellate with discoidal mitochondrial cristae // J. Eukaryot. Microbiol. 1999. V. 46. P. 522–531.
10. Patterson D.J. Jakoba libera (Ruinen, 1938), a heterotrophic flagellate from deep oceanic sediments // J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 1990. V. 70. P. 381–393.
11. Simpson A.G.B. Cytoskeletal organization, phylogenetic affinities and systematics in the contentious taxon Exacavata (Eukaryota) // IJSEM. 2003. V. 53. P. 1759–1777.
12. Simpson A.G.B., Bernard C., Patterson D.J. The ultrastructure of Trimastix marina Kent, 1880 (Eukaryota), an excavate flagellate // Eur. J. Protistol. 2000. V. 36. P. 229–251.
13. Simpson A.G.B., Patterson D.J. The ultrastructure of Carpediemonas membranifera (Eukaryota) with reference to the “excavate hypothesis” // Eur. J. Protistol. 1999. V. 35. P. 353–370.
14. Simpson A.G.B., Patterson D.J. On core jakobids and excavate taxa: the ultrastructure of Jakoba incarcerate // J. Eukaryot. Microbiol. 2001. V. 48. P. 480–492.
15. Tikhonenkov D.V. Species diversity of heterotrophic flagellates in Rdeisky reserve wetlands // Protistology. 2007/2008. V. 5. P. 213–230.
В.Г. Гагарин*, Нгуен Динь Ты**
Два новых вида свободноживущих нематод (Nematoda, Chromadorea) из мангровых зарослей во Вьетнаме.
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт экологии и биологических ресурсов, Вьетнамская aкадемия наук и технологий, 18 Хоанг Куок Вьет, Ханой, Вьетнам
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru
Приведено описание и рисунки двух видов свободноживущих нематод, обнаруженных в грунте устья реки среди густых мангровых зарослей во Вьетнаме. Metachromadora (Metachromadoroides) orientalis sp. n. морфологически близка к М. (М.) zaixsi Pastor de Ward, 2004, но имеет более длинный и толстый хвост, более переднее положение вульвы, иную форму фовей амфидов, более крупный базальный бульбус пищевода, более длинные спикулы и иное вооружение хвоста самцов. Terschellingia lutosa sp. n. морфологически близка к T. elegans Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2003 и T. supplementata Tchesunov, 1978 и отличается от обеих менее стройным хвостом, более широким телом в области головных щетинок и более длинными спикулами. Приведен ключ для определения валидных видов Metachromadora (Metachromadoroides).
Ключевые слова: Вьетнам, мангровые заросли, свободноживущие нематоды, Metachromadora (Metachromadoroides) orientalis sp. n., Terschellingia lutosa sp.n..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань. Три новых вида свободноживущих нематод из водоемов Вьетнама // Зоол. журн. 2003. Т. 82. № 11. С. 1393–1401.
2. Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань. Три новых вида рода Hopperia (Nematode, Comesomatida) из мангровых зарослей в дельте реки Меконг // Зоол. журн. 2006. Т. 85. № 1. С. 18–27.
3. Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань. Свободноживущие нематоды дельты реки Меконг // Биология внутр. вод. 2007. № 3. С. 3–10.
4. Гагарин В.Г., Нгуен Ву Тхань. Три вида линхомеид (Nematoda, Linhomoeidae) из мангровых зарослей в дельте реки Меконг, Вьетнам // Зоол. журн. 2009. Т. 88. № 3. С. 263–271.
5. Гагарин В.Г., Нгуен Тхи Тху. Свободноживущие нематоды дельты реки Хоангха, Вьетнам // Биология внутр. вод. 2008. № 4. С. 12–17.
6. Филипьев И.Н. Свободноживущие морские нематоды окрестностей Севастополя // Тр. Особой зоол. лаборатории и Севастополь. биол. ст. РАН. 1918. Сер. 2. № 4. С. 1–350.
7. Чесунов А.В. Свободноживущие нематоды семейства Linhomoidae из Каспийского моря // Зоол. журн. 1978. Т. 57. Вып. 11. С. 1623–1631.
8. Armenteros M., Ruiz-Abierno A., Vinx M., Decraemer W. A morphometric analysis of the genus Terschellingia (Nematoda: Linhomoeidae) with redefinition of the genus and key to the species // J. Marine Biol. Ass. UK (JMBA). 2009. V. 89. № 6. P. 1237–1267.
9. Biologycatalog: Nematoda, Family Desmodoridae. Texas: Texas Univ., 2008. http:/insects.tamu.edu/research/collection/hallan/ Nematoda/Family/Desmodoridae.txt.
10. Biologycatalog: Nematoda, Family Linhomoeidae. Texas: Texas Univ., 2008. http: /insects.tamu.edu/research/collection/hallan/ Nematoda/Family Linhomoeidae.txt.
11. Gagarin V.G., Nguyen Vu Thanh. Two new species of free-living nematodes from the mouth of the Cam River, North Vietnam // Zoosystematica Rossica. 2006. V. 15. № 2. P. 215–220.
12. Gagarin V.G., Nguyen Vu Thanh. Two new species of the genus Terschellingia de Man, 1888 (Nematoda, Linhomoeidae) from the coast of Vietnam // Int. J. Nematol. 2010. V. 20. № 1. P. 13–18.
13. Nguyen Vu Thanh, Gagarin V.G. Two nematode species of the genus Terschellingia de Man, 1888 (Nematoda, Linhomoeidae) recognized as the first time in an estuaries and coast waters of Vietnam // J. Biol. (Hanoi). 2009. V. 31. № 2. P. 8–15.
14. Pastor de Ward. New species of Hopperia (Nematoda, Comesomatidae) and Metachromadora (Nematoda, Desmodoridae) from Patagonia, Chubut, Argentina // Zootaxa. 2004. № 542. P. 1–15.
15. Timm R.W. The marine nematodes of the bay of Bengal // Proc. Pakistan Acad. Sci. 1961. V. 1. № 1. P. 25–88.
16. Timm R.W. Marine nematodes of the family Linhomoeidae from the Arabian Sea at Karachi // Can. J. Zool. 1962. V. 40. P. 165–178.
А.И. Копылов*, Т.В. Иевлева**, А.В. Романенко*
Сезонные и межгодовые изменения численности вириопланктона в реках, протекающих через промышленный город (г. Череповец, Верхняя Волга).
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Череповецкий государственный университет, 162000 г. Череповец, Вологодская обл., проспект Луначарского, 5
e-mail: kopylov@ibiw.yaroslavl.ru
В двух малых реках и крупной р. Шексна в течение апреля–октября 2009–2011 гг. определена общая численность вириопланктона, а также общая численность и биомасса бактериопланктона. Между численностью планктонных вирусов и бактерий установлена высокая положительная связь. Количество планктонных вирусов в загрязненных малых реках значительно превышало таковое в р. Шексна. Во всех реках в 2010 г. (год с аномально высокой температурой воды летом), численность планктонных вирусов была существенно выше, чем в годы с температурным режимом, близким к норме.
Ключевые слова: вирусы, бактерии, реки.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Дзюбан А.Н., Крылова И.Н. Оценка состояния бактериопланктона и бактериобентоса Рыбинского водохранилища в районе г. Череповец (Вологодская обл.) // Биология внутр. вод. 2000. № 4. С. 68–78.
2. Стройнов Я.В., Романенко А.В., Масленникова Т.С., Копылов А.И. Вирио- и бактериопланктон малой реки: влияние вирусов на смертность гетеротрофных бактерий // Биология внутр. вод. 2011. № 3. С. 22–29.
3. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос.-техн. ун-та, 2001. 427 с.
4. Murray A.G., Jackson G.A. Viral dynamics: a model of the effects of single-celled planktonic organisms and other particles // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1992. V. 89. P. 103–116.
5. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green for rapid epifluorescence count of marine viruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. P. 113–118.
6. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
7. Slováčova H., Marsálek B. Virioplankton and microbial communities on two Czech rivers (Svratka and Morava River) // Aquat. Sci. 2008. V. 70. P. 282–291.
8. Weinbauer M.G. Ecology of prokaryotic viruses // FEMS Microbiol. Rev. 2004. V. 28. № 2. P. 127–181.
9. Wommack K.E., Colvell R.R. Viruses in aquatic ecosystems // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000. V. 64. P. 69–114.
Л.И. Копырина
Макрофиты и видовое разнообразие эпифитона в озерах долины Туймаада (Средняя Лена).
Институт биологических проблем криолитозоны СО РАН, 667980 г. Якутск, проспект Ленина, 41
e-mail: l.i.kopyrina@mail.ru
Приведены результаты изучения эпифитона в озерах долины Туймаада (Средняя Лена). Выявлен видовой состав и разнообразие эпифитона на 20 видах высших водных растений, относящихся к разным экологическим группам.
Ключевые слова: эпифитон, видовой состав, высшие водные растения, экологические группы, озера долины Туймаада.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бекетов В.К., Изюменко С.А. Физико-географические условия местоположения города // Климат Якутска. Л.: Гидрометеоиздат, 1982. С. 217–230.
2. Водоросли: Справочник. Киев: Наук. думка, 1989. 608 с.
3. Голлербах М.М., Полянский В.И. Пресноводные водоросли и их изучение. М.: Сов. наука, 1951. Вып. 1. 178 с.
4. Метелёва Н.Ю. Структура и продуктивность фитоперифитона водоёмов бассейна Верхней Волги: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Борок, 2013. 22 с.
5. Протасов А.А. Пресноводный перифитон. Киев: Наук. думка, 1994. 307 с.
6. Разнообразие растительного мира Якутии. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2005. 328 с.
7. Распопов И.М. Высшая водная растительность и ее роль в экосистемах больших озер: Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Киев, 1986. 43 с.
8. Руководство по гидробиологическому мониторингу поверхностных экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 318 с.
9. Флора Якутии: Географический и экологический аспекты. Новосибирск: Наука, 2010. 192 с.
10. Черепанов С.К. Сосудистые растения России и сопредельных государств (в пределах бывшего СССР). СПб.: Мир и семья, 1995. 992 с.
11. Эколого-лимнологические исследования озер г. Якутска: Отчет науч.-исслед. работ биол.-геогр. факультета Якутск. гос. ун-та. Якутск, 1991. 72 с.
12. Algae. Flora of Yakutia: Composition and Ecological Structure. Dordrecht; Heidelberg; L.; N.Y.: Springer, 2010. V. 3. 390 p.
13. Sörensen T. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content. Kongelige Danske Videnskabernes Selskab. Biol. Krifter. 1948. Bd 5. Н. 4. S. 1–34.
А.А. Максимов, С.М. Голубков, В.А. Петухов
Распределение потока энергии через донное сообщество между разными размерными группировками зообентоса (на примере Невской губы).
Зоологический институт РАН, 199034 Санкт-Петербург, Университетская набережная, 1
e-mail: alexeymaximov@mail.ru
На примере Невской губы оценена роль трех размерных группировок многоклеточных животных (мейо-, макро- и мегабентосa) в донных сообществах. В период исследования (2010, 2011 гг.) по численности преобладали представители мейобентоса, по биомассе – мегабентоса (крупные моллюски сем. Unionidae и Viviparidae). По функциональным показателям (продукция, траты на обмен и поток энергии) доминировали животные макробентоса, определявшие ~3/4 суммарного потока энергии через донное сообщество губы. Соотношение обилия размерных группировок непостоянно во времени. При этом более крупные животные (макро- и мегабентос) отличаются и более значительной по сравнению с мейобентосом многолетней изменчивостью численности и биомассы. Обоснована целесообразность выделения мегабентоса (>1 см) в качестве полноправной размерной категории пресноводных донных животных, как это имеет место в морской биологии.
Ключевые слова: мейобентос, макробентос, мегабентос, пресноводные сообщества, Unionidae.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алимов А.Ф. Функциональная экология пресноводных двустворчатых моллюсков. Л.: Наука, 1981. 248 c.
2. Алимов А.Ф. Введение в продукционную гидробиологию. Л.: Гидрометеоиздат, 1989. 152 c.
3. Балушкина Е.В. Функциональное значение личинок хирономид в континентальных водоемах. Л.: Наука, 1987. 179 c.
4. Беляков В.П. Многолетние изменения зообентоса // Многолетние изменения биологических сообществ мезотрофного озера в условиях климатических флуктуаций и эвтрофирования. СПб.: Лема, 2008. С. 167–184.
5. Винберг Г.Г. Зависимость энергетического обмена от массы тела у водных пойкилотермных животных // Журн. oбщ. биологии. 1976. Т. 37. № 1. С. 56–70.
6. Гальцова В.В. Мейобентос в морских экосистемах на примере свободноживущих нематод. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1991. 241 c.
7. Голиков А.Н. Проблемы изучения экосистем шельфов // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1984. Вып. 223. С. 123–130.
8. Голубков С.М. Функциональная экология личинок амфибиотических насекомых. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2000. 294 c.
9. Жадин В.И. Моллюски. Т. 4. Вып. 1: Сем. Unionidae. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1938. 170 c.
10. Зуев Ю.А. Мегабентос верхней сублиторали Кольского залива Баренцева моря: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Мурманск, 2012. 26 c.
11. Камлюк Л.В. Энергетический обмен у свободноживущих плоских и кольчатых червей и факторы его определяющие // Журн. общ. биологии. 1974. Т. 35. № 6. С. 874–885.
12. Коколия Т.Г. Бентос Невской губы // Санитарное состояние Невской губы. Л., 1963. С. 95–110.
13. Курашов Е.А. Мейобентос как компонент озерной экосистемы. СПб.: Алга-Фонд, 1994. 224 c.
14. Курашов Е.А. Мейобентос в пресноводных экосистемах. Его роль и перспективы исследования // Актуальные вопросы изучения микро-, мейозообентоса и фауны зарослей пресноводных водоемов. Нижний Новгород: Вектор ТиС, 2007. С. 36–71.
15. Лаврентьева Г.М., Мещерякова С.В., Мицкевич О.И. и др. Гидробиологическая характеристика Выборгского залива, пролива Бьеркезунд, бухты Батарейной и Лужской губы (восточная часть Финского залива) // Финский залив в условиях антропогенного воздействия. СПб.: Ин-т озероведения РАН, 1999. С. 211–242.
16. Любин П.А., Анисимова Н.А., Йоргенсен Л.Л. и др. Мегабентос Баренцева моря // Комплексные исследования природы Шпицбергена. М.: ГЕОС, 2010. Вып. 10. С. 192–199.
17. Максимов А.А. Многолетние изменения макрозообентоса Невской губы // Биология внутр. вод. 2004. № 3. С. 84–92.
18. Максимов А.А., Петухов В.А. Роль макро- и мейобентоса в донных сообществах вершины Финского залива // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2011. Т. 315. № 3. С. 289–310.
19. Материалы к изучению бентоса Невской губы // Уч. зап. Ленинград. ун-та. Сер. биол. наук. 1949. Вып. 21. С. 107–141.
20. Мокиевский В.О. Экология морского мейобентоса. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2009. 286 c.
21. Невская губа: Гидробиологические исследования. Л.: Наука, 1987. 216 c.
22. Раколовство и раководство на водоемах европейской части России (справочник). СПб.: Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 2006. 207 c.
23. Рижинашвили А.Л. Рост, функциональное и биоиндикационное значение популяций перловиц (Bivalvia, Unionidae) в экосистемах водоемов Европейской части России и сопредельных территорий: Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб., 2009. 22 с.
24. Салазкин А.А. Донная фауна Невской губы и некоторые особенности ее распределения // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1982. Вып. 192. С. 70–77.
25. Силина А.В. Мегабентос сублиторали приустьевой зоны реки Раздольной // Изв. ТИНРО. 2009. Т. 157. С. 95–106.
26. Смирнова Н.Ф. Рост и продукция унионод (Mollusca, Unionidae) в районе Костромской ГРЭС // Экология организмов водохранилищ-охладителей. Л.: Наука, 1975. С. 272–286.
27. Сущеня Л.М. Интенсивность дыхания ракообразных. Киев: Наук. думка, 1972. 195 c.
28. Финогенова Н.П., Слепухина Т.Д., Голубков С.М. и др. Состав и количественные показатели донных беспозвоночных // Финский залив в условиях антропогенного воздействия. СПб.: Ин-т озероведения РАН, 1999. С. 189–211.
29. Шереметевский А.М. Роль мейобентоса в биоценозах шельфа южного Сахалина, восточной Камчатки и Новосибирского мелководья. Л.: Наука, 1987. 135 c.
30. Экосистема эстуария реки Невы: биологическое разнообразие и экологические проблемы. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2008. 477 c.
31. Ecology and Evolution of the Freshwater Mussels Unionoida. Berlin; Heidelberg: Springer-Verlag, 2001. 396 S.
32. Elmgren R. Structure and dynamics of Baltic benthic communities, with particular references to the relationship between macro- and meiofauna // Kiel. Meeresforsch. 1978. Bd 4. S. 1–22.
33. Elmgren R., Rosenberg R., Andersin A.-B. et al. Benthic macro- and meiofauna in the Gulf of Bothnia (Northern Baltic) // Finnish Mar. Res. 1984. V. 250. P. 3–18.
34. Galeron J., Sibuet M., Mahaut M.-L. et al. Variation in structure and biomass of the benthic communities at three contrasting sites in the tropical Northeast Atlantic // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2000. V. 197. P. 121–137.
35. Golubkov S., Alimov A. Ecosystem changes in the Neva Estuary (Baltic Sea): Natural dynamics or response to anthropogenic impacts? // Mar. Pol. Bull. 2010. V. 61. P. 198–204.
36. Kurashov E.A. The role of meiobenthos in lake ecosystems // Aquat. Ecol. 2002. V. 36. P. 447–463.
37. Lampitt R.S., Billett D.S.M., Rice A.L. Biomass of the invertebrate megabenthos from 500 to 4100 m in the northeast Atlantic Ocean // Mar. Biol. 1986. V. 93. P. 69–81.
38. Mare M.F. A study of a marine benthic community with special reference to the micro-organisms // J. Mar. Biol. Soc. U. K. 1942. V. 25. P. 517–554.
39. Poff N.L., Palmer M.A., Angermeier P.L. et al. Size structure of the metazoan community in a Piedmont stream // Oecologia. 1993. V. 95. P. 202–209.
40. Rex M.A., Etter R.J., Morris J.S. et al. Global bathymetric patterns of standing stock and body size in the deep-sea benthos // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2006. V. 317. P. 1–8.
41. Schwinghamer P. Characteristic size distributions of integral benthic communities // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1981. V. 38. P. 1255–1263.
42. Strayer D. The size structure of a lacustrine zoobenthic community // Oecologia. 1986. V. 69. P. 513–516.
43. Vaughn C.C., Hakenkamp C.C. The functional role of burrowing bivalves in freshwater ecosystems // Freshwater Biol. 2001. V. 46. № 11. P. 1431–1446.
44. Warwick R.M. Species size distributions in marine benthic communities // Oecologia. 1984. V. 61. P. 32–41.
Р.Р. Сайфуллин*, Ф.М. Шакирова**
Возрастная структура и скорость линейного роста популяции язя Leuciscus idus (Linnaeus, 1758) Куйбышевского водохранилища в 2004 и 2005 гг.
*Казанский федеральный университет, Институт фундаментальной медицины и биологии, 420008 г. Казань, ул. Кремлевская, д. 18
**Татарское отделение Гос. НИИ озерного и речного рыбного хозяйства, 420111 г. Казань, ул. Т. Гиззата, д. 4
e-mail: saifullin1955@mail.ru
Впервые за последние 50 лет проанализирован размерный состав, возрастная структура и линейный рост популяции язя Куйбышевского водохранилища. Установлено улучшение роста язя у более молодых особей по сравнению с таковым в речных условиях и на начальном этапе существования водохранилища.
Ключевые слова: Куйбышевское водохранилище, язь, размерный состав, возрастная структура, линейный рост, промысел.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Аутко Б.Ф. Некоторые данные по росту язя Куйбышевского водохранилища // Тр. Татар. отд. ВНИОРХ. 1958. Вып. 8. С. 263–267.
2. Головко В.И. Биология язя бассейна реки Турухтан // Вопросы ботаники, зоологии и почвоведения. 1973. Вып. 1. С. 88–94.
3. Гундризер А.Н. Биология и промысел язя Западной Сибири // Изв. ВНИОРХ. 1958. Т. 44. С. 49–60.
4. Зиновьев Е.А. Язь Камского водохранилища // Уч. зап. Пермск. ун-та. 1965. Вып. 125. С. 45–60.
5. Кузнецов В.А. Процесс формирования экосистемы Куйбышевского водохранилища // Проблемы охраны вод и рыбных ресурсов. Казань: Изд-во Казанск. гос. ун-та, 1991. С. 23–29.
6. Кузнецов В.А. Изменение экосистемы Куйбышевского водохранилища в процессе его формирования // Вод. ресурсы. 1997. Т. 24. № 2. С. 228–233.
7. Кузнецов В.А. Изменение в рыбном сообществе Куйбышевского водохранилища, связанное с переходом его экосистемы в фазу дестабилизации // Тез. докл. VIII съезда Гидробиол. о-ва РАН. Калининград, 2001. Т. 1. С. 114–115.
8. Кузнецов В.А. Рыбы Волжско-Камского края. Казань: Идел-пресс, 2005. 208 с.
9. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
10. Лапицкий И.И. О формировании ихтиофауны Цимлянского водохранилища в первые два года и рыбоводно-охранные мероприятия на 1954–1955 гг. // Рыб. хоз-во. 1954. № 9. С. 39–43.
11. Лукин А.В. Некоторые данные о биологии промысловых рыб бассейна реки Волги в пределах ТАССР // Уч. зап. Казан. ун-та. 1934. Т. 94. Кн. 4. Вып. 2. С. 174–189.
12. Меньшиков М.И., Букирев А.И. Рыбы и рыболовство верховьев реки Камы // Тр. биол. н.-и. ин-та при Пермск. гос. ун-те. 1934. Т. 6. Вып. 1–2. С. 1–99.
13. Платонова О.П. Язь Нижней Камы и Средней Волги // Уч. зап. Казан. ун-та. 1958. Т. 118. Кн. 1. С. 257–318.
14. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1966. 376 с.
15. Фатхуллин Ш.Г., Фатхуллина Л.Н. Состояние любительского рыболовства в бассейне Средней Волги // Изв. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1978. Т. 138. С. 116–128.
16. Шмальгаузен И.И. Определение основных понятий и методика исследования животных // Рост животных. М.: Биомедгиз, 1935. С. 8–60.
С.Ш. Сулейманов*, С.Н. Надиров**, Ю.В. Герасимов***
Распределение личинок и локализация нерeстовых стад саринской сельди Alosa braschnikowi sarensis (Michailowskaja, 1941) в Юго-Западном Каспии.
*Институт зоологии НАН Азербайджана, Az1073 Азербайджан, г. Баку, ул. А. Аббасзаде, проезд 1128, квартал 504
**Азербайджанский Институт рыбного хозяйства, Az1073 Азербайджан, г. Баку, ул. Демирчизаде, 16
***Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: salamat1964@mail.ru
По материалам ихтиопланктонных сьемок, проведенных в июле–августе 2010–2012 гг., проанализированы особенности распределения личинок саринской сельди Alosa braschnikowi sarensis (Michailowskaja) в прибрежных и открытых районах Юго-Западного Каспия. В пределах юго-западной части Каспия из года в год наблюдались три разобщенных скопления личинок: одно в районе п-ова Сара и Куринской косы, второе у островов Бакинского архипелага и м. Пирсагат, третье в Ленкоранском районе. Предполагается, что эти скопления – следствие нереста трех самостоятельных группировок саринской сельди в обособленных друг от друга районах Юго-Западного Каспия.
Ключевые слова: саринская сельдь, личинки, распределение, численность, популяционная структура.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ветчанин В.И. Биология и популяционная структура бражниковской сельди в Юго-Восточном Каспии: Aвтореф. дис. … канд. биол. наук. М., 1988. 20 с.
2. Казанчеев Е.Н. Рыбы Каспийского моря. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1981. 168 с.
3. Коблицкая А.Ф. Определитель молоди пресноводных рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1981. 208 с.
4. Кулиев З.М. Новые данные о сельдях азербайджанского прибрежья Каспия // Проблемы изучения и рационального использования природных ресурсов морей: Матер. Междунар. конф. Астрахань, 2001. С. 112–117.
5. Кулиев З.М., Сулейманов С.Ш. Современное экологическое состояние сельдей (Alosa) в Азербайджанском секторе Южного Каспия // Изв. НАН Азербайджана. Сер. Наука о земле. 2010. № 4. С. 132–137.
6. Михайловская А.А. О формообразовании у каспийской морской сельди Caspialosa braschnikovi (Borodin) // ДАН СССР. 1941. Т. 30. № 6. С. 559–561.
7. Рагимов Д.Б., Сулейманов С.Ш. Биоэкологическая характеристика саринской сельди в районе островов Бакинского архипелага Каспийского моря // Современные проблемы биологических ресурсов Каспийского моря: Матер. Междунар. конф. Баку, 2003. С. 73–75.
8. Световидов А.Н. Фауна СССР. Сельдевые (Clupeidae). М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1952. Т. 2. Вып. 1. 331 с.
9. Смирнов А.Н. Бражниковские сельди Каспийского моря. Баку: Изд-во АН Азерб. ССР, 1952. 245 с.
10. Смирнов А.Н. Систематика бражниковских сельдей Каспийского моря // Тр. Ин-та зоологии АН Азерб. ССР. Баку, 1954. Т. 17. С. 113–195.
11. Сулейманов С.Ш. Биоэкологическая характеристика сельди прибрежных зон Апшеронского полуострова // Тр. Ин-та зоологии НАН Азерб. Республики. 2006. Т. 28. С. 828–836.
12. Сулейманов С.Ш. Биоэкологическое состояние саринской сельди (Alosa braschnikowi sarensis) в Каспийском море // Тр. Азерб. о-ва зоологов. 2008. Т. 1. С. 561–569.
13. Сулейманов С.Ш. Ревизия сельдей Alosa braschnikowi (Borodin, 1904) Азербайджанского сектора Южного Каспия // Тр. Азерб. о-ва зоологов. 2010. Т. 2. С. 655–661.
В.И. Мартемьянов
Динамика содержания натрия и калия в плазме, эритроцитах и мышцах пресноводных рыб при продолжительном комбинированном стрессе.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: martem@ibiw.yaroslavl.ru
В начальный период острого стресса концентрация Na в плазме крови у плотвы и леща существенно снижалась в течение нескольких часов соответственно на 30 и 27%, создавая перепад осмотической концентрации между внутри- и внеклеточной жидкостью. В ответ на это активизировались защитные системы, которые выводили ионы Na и K против электрохимического градиента из клетки. В результате содержание Na и K в эритроцитах и мышцах рыб снижалось до минимальных значений. В ходе акклимации рыб к новым условиям концентрация ионов в плазме, эритроцитах и мышцах достигала исходных значений, а в ряде случаев стабилизировалась на пониженных уровнях, отражая физиологическое состояние организма в неволе. Предполагается, что противодействие гипонатремии и гипоосмии осуществлялось за счет усиления активности Na⁺-K⁺-2Cl⁻-котранспортера.
Ключевые слова: плотва, лещ, плазма, эритроциты, мышцы, натрий, калий.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Виноградов Г.А., Клерман А.К. Ионный обмен пресноводных рыб при стрессе // Вопр. ихтиологии. 1987. Т. 27. № 3. С. 307–312.
2. Мартемьянов В.И. Динамика концентрации электролитов у пресноводных рыб при стрессе // Пресноводные гидробионты и их биология. Л.: Наука, 1983. С. 237–248.
3. Мартемьянов В.И. Содержание катионов в плазме, эритроцитах и мышечной ткани рыб Волжского плеса Рыбинского водохранилища // Журн. эвол. биохимии и физиологии. 1992. Т. 28. № 5. С. 576–581.
4. Мартемьянов В.И. Содержание катионов в плазме, эритроцитах, мышцах и гонадах плотвы Rutilus rutilus из природной среды и акклимированной к лабораторным условиям // Вопр. ихтиологии. 1999. Т. 39. № 2. С. 278–281.
5. Мартемьянов В.И. Проявление гипонатремии у водных и наземных позвоночных животных как критерий неблагополучного физиологического состояния организмов при действии неблагоприятных факторов среды // Организмы, популяции, экосистемы: проблемы и пути сохранения биоразнообразия. Вологда: Центр оперативной полиграфии “Коперник”, 2008. С. 67–71.
6. Наточин Ю.В., Шахматова Е.И., Лаврова Е.А. и др. Волюморегуляция клеток некоторых органов и тканей у пресноводных и проходных рыб при изменении осмоляльности и ионного состава сыворотки крови // Журн. эвол. биохимии и физиологии. 1991. Т. 27. № 2. С. 159–166.
7. Arieff A.I. Hyponatremia, convulsions, respiratory arrest, and permanent brain damage after elective surgery in healthy women // New Engl. J. Med. 1986. V. 314. P. 1529–1535.
8. Barton B.A., Haukenes A.H., Parsons B.G., Reed J.R. Plasma cortisol and chloride stress responses in juvenile walleyes during capture, transport, and stocking procedures // N. Amer. J. Aquaculture. 2003. V. 65. P. 210–219.
9. Cutler C.P., Cramb G. Two isoforms of the Na+/K+/2Cl- cotransporter are expressed in the European eel (Anguilla anguilla) // Biochim. Biophys. Acta. 2002. V. 1566. P. 92–103.
10. Guizouarn H., Motais R. Swelling activation of transport pathways in erythrocytes: effects of Cl-, ionic strength, and volume changes // Amer. J. Physiol. Cell Physiol. 1999. V. 276. P. 210–220.
11. Haas M. The Na-K-Cl cotransporters // Amer. J. Physiol. Cell Physiol. 1994. V. 267. P. 869–885.
12. Hoffmann E.K., Lambert I.H., Pedersen S.F. Physiology of cell volume regulation in vertebrates // Physiol. Rev. 2009. V. 89. № 1. P. 193–277.
13. Horng J.L., Lin L.Y. Expression of the Na-K-2Cl cotransporter in branchial mitochondrion-rich cells of Mozambique Tilapia (Oreochromis mossambicus) subjected to varying chloride conditions // Zool. Studies. 2008. V. 47. № 6. P. 733–740.
14. McCormick S.D., Sundell K., Björnsson B.T. et al. Influence of salinity on the localization of Na+/K+-ATPase, Na+/K+/2Cl--cotransporter (NKCC) and CFTR anion channel in chloride cells of the Hawaiian goby (Stenogobius hawaiiensis) // J. Exp. Biol. 2003. V. 206. P. 4575–4583.
15. Postlethwaite E.K., McDonald D.G. Mechanisms of Na+ and Cl- regulation in freshwater – adapted rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during exercise and stress // J. Exp. Biol. 1995. V. 198. P. 295–304.
И.М. Камшилов, Р.А. Запруднова, Ю.П. Чалов
функциональные свойства гемоглобина окуня (Perca fluviatilis L.).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: kim@ibiw.yaroslavl.ru
Изучено сродство гемоглобина к кислороду и эффект Бора у речного окуня Perca fluviatilis L. Рыбинского водохранилища. С буферными и дыхательными особенностями гемоглобиновой системы связывается повышенная устойчивость данного вида рыб к закислению воды и недостатку в ней кислорода.
Ключевые слова: окунь, гемоглобин, буферные и дыхательные свойства, устойчивость.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Балашов Д.А., Рекубратский А.В. Отношение гибридов карпа Cуprinus carpio и серебряного карася Carassius auratus к дефициту кислорода // Вопр. ихтиологии. 2011. Т. 51. № 5. С. 665–669.
2. Виноградов Г.А. Процессы ионной регуляции у пресноводных рыб и беспозвоночных. М.: Наука, 2000. 216 с.
3. Иржак Л.И. Гемоглобины и их свойства. М.: Наука, 1975. 240 с.
4. Камшилов И.М. Функциональные характеристики гемоглобинов проходных осетровых рыб // Вопр. ихтиологии. 2000. Т. 40. № 6. С. 832–841.
5. Камшилов И.М. Методика определения функциональных свойств гемоглобина у рыб (влияние метгемоглобина и АТФ) // Биология внутр. вод. 2001. № 1. С. 96–101.
6. Комов В.Т. Причины и последствия антропогенного закисления озер. Нижний Новгород: Вектор-ТиС, 2007. 112 с.
7. Лукьяненко В.И. Экологические аспекты ихтиотоксикологии. М.: Агропромиздат, 1987. 240 с.
8. Лукьяненко В.И., Васильев А.С., Камшилов И.М. Гемоглобины рыб: спектральные характеристики и функциональные свойства. Ярославль: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 2000. 174 с.
9. Clark T.D., Seymour R.S., Wells R.M.G. et al. Thermal effects on the blood respiratory properties of southern bluefin tuna, Thunnus maccoyii // Comp. Biochem. and Physiol. Part A. 2008. V. 150. P. 239–246.
10. Rasmussen J.R., Wells R.M.G., Henty K. et al. Characterization of the hemoglobins of the Australian lungfish Neoceratodus forsteri (Krefft) // Comp. Biochem. and Physiol. Part A. 2009. V. 152. P. 162–167.
Д.В. Микряков, В.Р. Микряков, Н.И. Силкина
Влияние дексаметазона на окислительные процессы в иммунокомпетентных органах стерляди Acipenser ruthenus L.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: daniil@ibiw.yaroslavl.ru
Приведены результаты исследований влияния дексаметазона на окислительные процессы в иммунокомпетентных органах (печени, почке и селезенке) стерляди Acipenser ruthenus L. Рыбы на действие гормона стресса реагировали активацией перекисного окисления липидов и снижением общей антиоксидантной активности. Показана зависимость изменения исследуемых показателей от особенностей структурно-функциональной организации органов и времени отбора проб после инъекции гормона.
Ключевые слова: стерлядь, дексаметазон, иммунокомпетентные органы, перекисное окисление липидов, антиокислительная активность.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андреева А.И., Кожемякин Н.А., Кишкун А.А. Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой // Лаб. дело. 1988. № 11. С. 41–43.
2. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2002. Т. 1. 379 с.
3. Барабой В.А., Брехман И.И., Голотин В.Г. и др. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. 148 с.
4. Бахмани М., Орян Ш., Пурьказеми М., Васуги Г. Изучение физиолого-биохимических индикаторов стресса у производителей самок персидского осетра Acipenser persicus Borodin, выловленных на южном побережье Каспийского моря // Осетровые на рубеже XXI века: Тез. докл. междунар. конф. Астрахань, 2000. С. 122.
5. Баюнова Л.В., Баранникова И.А., Дюбин В.П., Семенкова Т.Б. Гормональные характеристики осетровых в условиях стресса // Осетровые на рубеже XXI века: Тез. докл. междунар. конф. Астрахань, 2000. С. 122–123.
6. Валова В.Н., Воропаев В.М. Оценка физиологического состояния двухлетков осетровых рыб при садковом выращивании в условиях тепловодного хозяйства // Тепловодная аквакультура и биологическая продуктивность водоемов аридного климата: Матер. междунар. симп. Астрахань, 2007. С. 442–444.
7. Виноградов В.К., Мельченков Е.А. Биотехника товарного осетроводства // Аквакультура начала XXI века: истоки, состояние, стратегия развития: Матep. междунар. науч.-практ. конф. М., 2002. С. 81–87.
8. Головин П.П. Проблема стресса у рыб в пресноводной аквакультуре: способы диагностики и коррекции // Болезни рыб: Сб. науч. тр. М.: Компания Спутник, 2004. Вып. 79. С. 54–61.
9. Грубинко В.В., Леус Ю.В., Арсан О.М. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная защита у рыб (обзор) // Гидробиол. журн. 2001. Т. 37. № 1. С. 64–78.
10. Грушко М.П., Ложниченко О.В., Федорова Н.Н. Гемопоэз у осетровых рыб. Астрахань: Триада, 2009. 190 с.
11. Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К., Ланкин В.З. и др. Окислительный стресс: Патологические состояния и заболевания. Новосибирск: АРТА, 2008. 284 с.
12. Микряков В.Р. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 1991. 153 c.
13. Микряков В.Р., Балабанова Л.В., Заботкина Е.А. и др. Реакция иммунной системы рыб на загрязнение воды токсикантами и закисление воды. М.: Наука, 2001. 126 с.
14. Микряков В.Р., Балабанова Л.В., Микряков Д.В. Влияние кортизона на морфофункциональное состояние иммунной системы карпа Cyprinus carpio L. // Вопр. рыболовства. 2006. № 4 (28). С. 618–632.
15. Микряков В.Р., Силкина Н.И., Микряков Д.В. Влияние антропогенного загрязнения на иммунологические и биохимические механизмы поддержания гомеостаза у рыб Черного моря // Биология моря. 2011. Т. 37. № 2. С. 142–148.
16. Микряков Д.В., Микряков В.Р., Силкина Н.И. Изменение морфофизиологических показателей иммунокомпетентных органов карпа Cyprinus carpio под влиянием гормона стресса // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. № 3. С. 418–424.
17. Микряков Д.В., Силкина Н.И., Микряков В.Р. Влияние дексаметазон-фосфата на морфофункциональное состояние иммунокомпетентных органов карася (Carassius carassius L.) // Вопр. ихтиологии. 2004. Т. 44. № 6. С. 842–846.
18. Наумова А.М., Валедская О.М., Ларцева Л.В. и др. Ихтиологический контроль на осетровых рыбоводных заводах // Осетровые на рубеже XXI века: Тез. докл. междунар. конф. Астрахань, 2000. С. 268–269.
19. Обухова О.В., Ларцева Л.В., Земский А.А. Встречаемость аэромонад в гидроэкосистемах дельты Волги // Тепловодная аквакультура и биологическая продуктивность водоемов аридного климата: Матер. Междунар. симп. Астрахань, 2007. С. 499–500.
20. Подушка С.Б. Некоторые вопросы культивирования стерляди // Осетровые на рубеже XXI века: Тез. докл. междунар. конф. Астрахань, 2000. С. 269–271.
21. Розен В.Б. Основы эндокринологии. М.: Изд-во МГУ, 1994. 384 с.
22. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме. М.: Медгиз, 1960. 254 с.
23. Семенов В.Л., Ярош А.М. Метод определения антиокислительной активности биологического материала // Укр. биохим. журн. 1985. Т. 57. № 3. C. 50–52.
24. Силкина Н.И., Микряков Д.В., Микряков В.Р. Влияние антропогенного загрязнения на окислительные процессы в печени рыб Рыбинского водохранилища // Экология. 2012. № 5. С. 361–365.
25. Fiho W.D. Fish antioxidant defences – A comparative approach // Braz. J. Med. and Biol. Res. 1996. V. 29. № 12. P. 1735–1742.
26. Rudneva I.I., Kuzminova N.S. Effect of chronic pollution on hepatic antioxidant system of Black Sea fish species // Int. J. Sci. and Nature. 2011. Т. 2. № 2. P. 279–286.
27. Van Muiswinkel W., Vervoorn-Van Der Wal B. The immune system of fish // Fish diseases and disorders. 2006. V. 1. P. 678–701.
28. Wendelaar Bonga S.E. The stress response in fish // Physiol. Rev. 1997. V. 77. № 3. P. 591–625.
29. Winston G.W. Oxidants and antioxidants in aquatic animals // Comp. Biochem. and Physiol. 1991. V. 100. № 1–2. P. 173–176.
30. Zapata A.G., Chiba A., Varas A. Cells and tissues of the immune system of fish. L.: Acad. Press, 1996. P. 1–62.
Н.В. Чукина, Г.Г. Борисова, М.Г. Малева
Антиоксидантный статус гидрофитов с различной аккумулятивной способностью (на примере Potamogeton alpinus Balb. и Batrachium trichophyllum (Chaix) Bosch.
Уральский федеральный университет им. первого Президента России Б.Н. Ельцина, 620000 г. Екатеринбург, ул. Ленина, 51
e-mail: nady_dicusar@mail.ru
Изучена антиоксидантная активность двух широко распространенных видов высших водных растений (Batrachium trichophyllum (Chaix) Bosch. и Potamogeton alpinus Balb.) c различной “аккумулятивной стратегией”. Показано, что листья Batrachium trichophyllum накапливали металлы в больших количествах и отличались более высокой интенсивностью про- и антиоксидантных процессов по сравнению с Potamogeton alpinus.
Ключевые слова: высшие водные растения, тяжелые металлы, аккумулятивная способность, антиоксидантный статус.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бараненко В.В. Супероксиддисмутаза в клетках растений // Цитология. 2006. Т. 48. № 6. С. 465–474.
2. Власов Б.П., Гигевич Г.С. Использование высших водных растений для оценки и контроля за состоянием водной среды: Методические рекомендации. Минск: Белорус. гос. ун-т, 2002. 84 с.
3. Водные ресурсы Свердловской области. Екатеринбург: Изд-во АМБ, 2004. 432 с.
4. Деви С.Р., Прасад М.Н. Антиокислительная активность Brassica juncea, подвергнутых действию высоких концентраций меди // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 2. С. 233–237.
5. Ермаченко Л.А., Ермаченко В.М. Атомно-абсорбционный анализ с графитовой печью. М.: Изд-во ПАИМС, 1999. 220 с.
6. Ипатова В.И. Адаптация водных растений к стрессовым абиотическим факторам среды. М.: Графикон-принт, 2005. 224 с.
7. Кокин К.А. Экология высших водных растений. М.: Изд-во МГУ, 1982. 158 с.
8. Куриленко В.В., Осмоловская Н.Г. Эколого-биогеохимическая роль макрофитов в водных экосистемах урбанизированных территорий (на примере малых водоемов Санкт-Петербурга) // Экология. 2006. № 3. С. 163–167.
9. Лукина Л.Ф., Смирнова Н.Н. Физиология высших водных растений. Киев: Наук. думка, 1988. 186 с.
10. Макурина О.А., Удиванкин А.В. Некоторые биохимические показатели Potamogeton perfoliatus L. как индикаторы антропогенного загрязнения Саратовского водохранилища тяжелыми металлами // Вестн. Самар. гос. ун-та. Естеств.-науч. сер. 2006. № 7. С. 134–138.
11. Малева М.Г., Некрасова Г.Ф., Борисова Г.Г. и др. Влияние тяжелых металлов на фотосинтетический аппарат и антиоксидантный статус элодеи // Физиология растений. 2012. № 2. С. 216–224.
12. Рогожин В.В. Практикум по биологической химии. СПб.: Изд-во Лань, 2006. 256 с.
13. Холодова В.П., Волков К.С., Кузнецов В.В. Адаптация к высоким концентрациям солей меди и цинка растений хрустальной травки и возможность их использования в целях фиторемедиации // Физиология растений. 2000. Т. 52. № 6. С. 848–858.
14. Чиркова Т.В. Физиологические основы устойчивости растений. СПб.: Изд-во С.-Петербург. ун-та, 2002. 244 с.
15. Чукина Н.В., Борисова Г.Г. Структурно-функциональные показатели высших водных растений из местообитаний с разным уровнем антропогенного воздействия // Биология внутр. вод. 2010. № 1. С. 49–56.
16. Чукина Н.В., Малева М.Г., Борисова Г.Г. Роль SH-соединений в детоксикации тяжелых металлов и их значение для биоиндикации загрязнения водных экосистем // Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем II. СПб.: Любавич, 2011. С. 36–41.
17. Чупахина Г.Н. Физиологические и биохимические методы анализа растений. Калининград: Изд-во Калинингр. ун-та, 2000. 59 с.
18. Шашуловская Е.А. О накоплении тяжёлых металлов в высшей водной растительности Волгоградского водохранилища // Поволж. экол. журн. 2009. № 4. С. 357–360.
19. Baker A.J.M. Accumulators and excluders-strategies in response of plants to heavy metals // J. Plant Nutr. 1981. V. 3. P. 643–654.
20. Bates L.S. Rapid determination of free proline for water stress studies // Plant Soil. 1973. V. 39. P. 205–207.
21. Beauchamp C., Fridovich I. Superoxide dismutase: Improved assays and an assay applicable to acrylamide gels // Anal. Biochem. 1971. V. 44. P. 276–287.
22. Chance B., Maehly A.C. Assay catalase and peroxidase. Methods in Enzymology. N.Y.: Acad. Press, 1955. P. 764–775.
23. Shakterle T.R., Pollack R.L. A simplified method for the quantities assay of small amounts of protein in biological material // Anal. Biochem. 1973. V. 51. № 2. P. 654–655.
24. Uchiyama M., Mihara M. Determination of malonaldehyde precursor in tissues by thiobarbituric acid test // Anal. Biochem. 1978. V. 86. P. 287–297.
